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Article de méthode

Conjugués de BODIPY conventionnels pour la microscopie à super-résolution à cellules vives et le suivi à molécule unique

8K vues

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DOI :

10.3791/60950

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8 juin 2020

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Les conjugués conventionnels de BODIPY peuvent être employés pour la microscopie de localisation à cellule unique vivante (SMLM) par l’exploitation de leurs dimers terrestres de formation transitoire et à miettes rouges. Nous présentons un protocole SMLM optimisé pour suivre et résoudre les lipides neutres subcellulaires et les acides gras dans les cellules vivantes de mammifères et de levure à l’échelle de longueur nanoscopique.

Résumé

Les techniques de microscopie de localisation à molécule unique (SMLM) surmontent la limite de diffraction optique de la microscopie conventionnelle de fluorescence et peuvent résoudre les structures intracellulaires et la dynamique des biomolécules avec une précision de 20 nm. Une condition préalable pour SMLM sont les fluorophores qui passent d’un état sombre à un état fluorescent afin d’éviter le chevauchement spatio-temporel de leurs fonctions de propagation de points dans chacun des milliers de cadres d’acquisition de données. Les BODIPY sont des colorants bien établis avec de nombreux conjugués utilisés dans la microscopie conventionnelle. La formation transitoire de dimers d’état au sol BODIPY (DII)à l’origine d’une seule molécule brillante permet une microscopie de localisation à une seule molécule (SMLM). Ici, nous présentons un protocole simple mais polyvalent pour SMLM avec des conjugués conventionnels BODIPY dans la levure vivante et les cellules de mammifères. Cette procédure peut être utilisée pour acquérir des images super-résolution et pour suivre les états seuls de BODIPY-DII pour extraire des informations spatio-temporelles des conjugués de BODIPY. Nous appliquons cette procédure pour résoudre les gouttelettes lipidiques (LD), les acides gras et les lysosomes dans la levure vivante et les cellules de mammifères à l’échelle de longueur nanoscopique. En outre, nous démontrons la capacité d’imagerie multi-couleurs avec des colorants BODIPY lorsqu’ils sont utilisés en conjonction avec d’autres sondes fluorescentes. Nos résultats représentatifs montrent la répartition spatiale différentielle et la mobilité des acides gras BODIPY et des lipides neutres dans la levure dans des conditions nourries et jeûnées. Ce protocole optimisé pour SMLM peut être utilisé avec des centaines de conjugués BODIPY disponibles dans le commerce et est une ressource utile pour étudier les processus biologiques à l’échelle nanométrique bien au-delà des applications de ce travail.

Introduction

Les techniques de microscopie de localisation à molécule unique (SMLM) telles que la microscopie de reconstruction optique stochastique (STORM) et la microscopie localisée activée par photo (PALM) sont apparues comme des méthodes pour générer des images super-résolution avec des informations au-delà de la limite de diffraction optique d’Abbe1,2 et pour suivre la dynamique des biomoléculesuniques 3,4. L’une des exigences pour les sondes compatibles avec SMLM est la capacité de contrôler le nombre de fluorophores actifs à tout moment pour éviter le cheva....

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Protocole

REMARQUE: Pour le clonage de levure et le marquage endogène s’il vous plaît se référer à notre publication récente10.

1. Préparation d’échantillons de cellules de levure pour l’imagerie

  1. Préparer une culture liquide du jour au lendemain d’une souche de levure w303. À l’aide d’un bâton en bois stérile, apercevrez une petite quantité de cellules de levure d’une plaque d’agar contenant de l’extrait de levure-peptone-dextrose dans un tube de culture avec 2 ml de milieu synthétique de dextrose complète (SCD). Incuber le tube pendant la nuit dans un incubateur secouant à 270 tr/min et 30 oC.
  2. Effectuer un....

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Résultats

Ici, nous présentons une procédure optimisée de préparation d’échantillons, d’acquisition et d’analyse de données pour SMLM à l’aide de conjugués BODIPY basés sur le protocole ci-dessus(figure 1A). Pour montrer un exemple du flux de travail pour l’acquisition et l’analyse des données SMLM, nous employons BODIPY (493/503) dans la levure pour résoudre les LD en dessous de la limite de diffraction optique(figure 1B-F). Des exemples des différents m.......

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Discussion

Dans ce protocole, nous avons démontré comment les conjugués conventionnels DE BODIPY peuvent être utilisés pour obtenir des images SMLM avec un ordre d’amélioration de grandeur dans la résolution spatiale. Cette méthode est basée sur l’exploitation précédemment rapportée, rouge-décalé DII états des colorants conventionnels BODIPY, qui se forment transitoirement par des rencontres bi-moléculaires. Ces états peuvent être spécifiquement excités et détectés avec des longueurs d’onde red-shifted et sont clairsemés.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.

Remerciements

La recherche rapportée dans cette publication a été soutenue par l’Institut national des sciences médicales générales des National Institutes of Health sous le numéro d’attribution R21GM127965.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
BODIPY C12ThermoFisherD3822Analogue d’acide gras vert
BODIPY C12 RougeThermoFisherD3835Analogue d’acide gras rouge
BODIPY(493/503)ThermoFisherD3922Marqueur lipidique neutre
Concanavalin ASigma-AldrichC2010Immobilisation cellulaire sur surface en verre
Drop-out Mix Complete sans base d’azoteUS BiologicalD9515Acides aminés pour SCD
DextroseSigma-AldrichG7021Source de carbone pour SCD
Huit puitsCellvisC8-1.58-NLunettes de protection à huit puits
, Lb-Tek IISigma-AldrichLunettes de protection à chambre
ET525/50ChromaFiltre passe-bande
ET595/50ChromaFiltre passe-bande
ET610/75ChromaFiltre passe-bande
Sérum de veau fœtal (FBS)Gibco26140079Sérum
FF652SemrockSéparateur de faisceau
FF731/137SemrockFiltre passe-bande
FluoroBrite DMEMThermoFisherA1896701Milieu
de culture cellulaireHal4000Zhuang Lab, Université deLogiciel d’acquisition de données
Ixon89Ultra DU-897UCaméra AndorEMCCD pour la détection de photons
Laser 405, 488, 561, 640 nmLasers CW-OBISpour l’excitation
Insight3Zhuang Lab, UniversitéLogiciel de localisation de molécule unique
L-GlutamineGibco25030-081Acide aminé requis pour la culture cellulaire
Solution d’imagerie de cellules vivantesThermoFisherA14291DJTampon d’imagerie
Lysotracker GreenThermoFisherL7526Marqueur de lysosome basé sur Bodipy
Cellules de mammifères ATCC U2OS (Manassas, VA)Dr. Jochen Mueller (Université du Minnesota)
Nikon-CFI Apo 100 1.49 N.ANikonImmersion dans l’huile objectif
Pénicilline streptomycineGibco15140-122Antibiotiques
Pyruvate de sodiumGibco11360-070Supplément pour la culture cellulaire
T562lpxrChromaBeam splitter
Trypsin-EDTAGibco15400-054Dissociation de la cellule adhérente
W303 Souche MATaHorizon-DharmaconYSC1058Souche de levure parentale
Base azotée de levureSigma-AldrichY1250Base azotée sans acides aminés
zt405/488/561/640rdcChromaQuadband miroir dichroïque
Harvard de Harvard

Références

  1. Rust, M. J., Bates, M., Zhuang, X. Sub-diffraction-limit imaging by stochastic optical reconstruction microscopy (STORM). Nature Methods. 3 (10), 793-796 (2006).
  2. Betzig, E., et al. Imaging intracellular fluorescent proteins at nanometer resolution.

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Réimpressions et autorisations

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