Summary

Undersøgelse af Xenobiotics Metabolisme I Salix alba Blade via Massespektrometri Imaging

Published: June 15, 2020
doi:

Summary

Denne metode bruger massespektrometribilleddannelse (MSI) til at forstå metaboliske processer i S. alba blade, når de udsættes for xenobiotika. Metoden gør det muligt at lokalisere forbindelser af interesse og deres forudsagte metabolitter inden for specifikke, intakte væv.

Abstract

Den fremlagte metode anvender massespektrometribilleddannelse (MSI) til at fastslå den metaboliske profil af S. alba blade, når de udsættes for xenobiotika. Ved hjælp af en ikke-målrettet tilgang identificeres og lokaliseres plantemetabolitter og xenobiotika i plantevæv for at afdække specifikke distributionsmønstre. Derefter udføres der i silicoforudsigelse af potentielle metabolitter (dvs. katabolitter og konjugatter) fra de identificerede xenobiotika. Når en xenobiotisk metabolit er placeret i vævet, registreres den type enzym, der er involveret i dens ændring af planten. Disse resultater blev brugt til at beskrive forskellige typer af biologiske reaktioner, der forekommer i S. alba blade som reaktion på xenobiotisk akkumulering i bladene. Metabolitterne blev forudsagt i to generationer, hvilket gjorde det muligt at dokumentere successive biologiske reaktioner for at omdanne xenobiotika i bladvævet.

Introduction

Xenobiotics er bredt fordelt over hele verden på grund af menneskelige aktiviteter. Nogle af disse forbindelser er vandopløselige og absorberes af jord1og kommer ind i fødekæden , når de akkumuleres i plantevæv2,3,4. Planterne spises af insekter og planteædere, som er bytte for andre organismer. Indtagelsen af nogle xenobiotika og deres indvirkning på en plantes sundhed er blevet beskrevet5,6,7,8, men først for nylig på vævsniveau9. Derfor er det stadig uklart, hvor eller hvordan metabolismen af xenobiotika opstår, eller hvis specifikke plantemetabolitter er korreleret med xenobiotisk akkumulering i specifikke væv10. Desuden har de fleste forskning overset metabolismen af xenobiotika og deres metabolitter i planter, så lidt er kendt om disse reaktioner i plantevæv.

Foreslået her er en metode til at undersøge enzymatiske reaktioner i biologiske prøver, der kan være forbundet med væv lokalisering af substrater og produkter af reaktionerne. Metoden kan tegne den komplette metaboliske profil af en biologisk prøve i et forsøg, da analysen ikke er målrettet og kan undersøges ved hjælp af brugerdefinerede lister over analysater af interesse. Forudsat er en liste over kandidater spores i det oprindelige datasæt. Hvis der noteres en eller flere analysater af interesse i prøven, kan den specifikke vævslokalisering give vigtige oplysninger om de relaterede biologiske processer. De pågældende analysikater kan derefter ændres i silico ved hjælp af relevante biologiske love for at søge efter mulige produkter /metabolitter. Listen over opnåede metabolitter bruges derefter til at analysere de oprindelige data ved at identificere de involverede enzymer og lokalisere reaktionerne i vævene og dermed hjælpe med at forstå de forekommende metaboliske processer. Ingen anden metode giver oplysninger om de typer reaktioner, der forekommer i de biologiske prøver, lokaliseringen af de forbindelser af interesse, og deres relaterede metabolitter. Denne metode kan anvendes på enhver form for biologisk materiale, når friske og intakte væv er tilgængelige, og de forbindelser af interesse kan ioniseres. Den foreslåede protokol blev offentliggjort i Villette et al.12 og er her beskrevet til brug for det videnskabelige samfund.

Protocol

1. Prøveforberedelse Den biologiske prøve udtages, og den skal enten holdes frisk og intakt (f.eks. må den ikke tvinges ind i et rør) eller fryses. Den foreslåede protokol gælder for enhver form for fast biologisk prøve (dvs. plante-, dyre- eller humane væv) for at lokalisere forbindelser i specifikke væv. Afkøl en kryokrotom til -20 °C. Opbevar prøveholderen og klingen ved samme temperatur. Om nødvendigt skal du integrere objektet i M1-indlejringsmediet for at bevare det under…

Representative Results

Denne protokol blev anvendt på friske blade udtaget fra en S. alba træ udsat for xenobiotika i miljøet. Processen er afbildet i figur 1. Det første skridt er at forberede tynde skiver af prøven af interesse. Planteprøver er ofte vanskeligere at skære end dyreprøver, da vævene er heterogene og kan indeholde vand og / eller luft. Denne vanskelighed håndteres ved hjælp af indlejringsmediet, som danner en homogen blok omkring prøven. Matrixaflejringen lettes ved brug af en r…

Discussion

Den kritiske del af denne protokol er prøveforberedelsen: Prøven skal være blød og intakt. Skæring er den sværeste del, da prøvens temperatur og tykkelse kan variere afhængigt af den undersøgte type prøve. Dyrevæv er normalt homogene og lettere at skære. Planteprøver indeholder ofte forskellige strukturer og er derfor vanskeligere at holde intakte, da bladet støder på blødt, hårdt eller tomt vaskulært væv. Det anbefales stærkt at bruge frisk væv, når du arbejder med planteprøver for at undgå danne…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Charles Pineau, Mélanie Lagarrigue og Régis Lavigne for deres tips og tricks vedrørende prøveforberedelse til MALDI-billeddannelse af planteprøver.

Materials

Cover slips Bruker Daltonics 267942
Cryomicrotome Thermo Scientific
Excel Microsoft corporation
flexImaging Bruker Daltonics
ftmsControl Bruker Daltonics
GTX primescan GX Microscopes
HCCA MALDI matrix Bruker Daltonics 8201344
ImagePrep Bruker Daltonics
ITO-coated slides Bruker Daltonics 237001
M1-embedding matrix ThermoScientific 1310
Metabolite Predict Bruker Daltonics
Metaboscape Bruker Daltonics
Methanol Fisher Chemicals No specific reference needed
MX 35 Ultra blades Thermo Scientific 15835682
Plastic molds No specific reference needed
SCiLS Lab Bruker Daltonics
SolariX XR 7Tesla Bruker Daltonics The method proposed is not limited to this instrument
Spray sheets for ImagePrep Bruker Daltonics 8261614
TFA Sigma Aldrich No specific reference needed

References

  1. Zhang, D., Gersberg, R. M., Ng, W. J., Tan, S. K. Removal of pharmaceuticals and personal care products in aquatic plant-based systems: A review. Environmental Pollution. 184, 620-639 (2014).
  2. Adeel, M., Song, X., Wang, Y., Francis, D., Yang, Y. Environmental impact of estrogens on human, animal and plant life: A critical review. Environment International. 99, 107-119 (2017).
  3. Prosser, R. S., Sibley, P. K. Human health risk assessment of pharmaceuticals and personal care products in plant tissue due to biosolids and manure amendments, and wastewater irrigation. Environment International. 75, 223-233 (2015).
  4. Wang, J., et al. Application of biochar to soils may result in plant contamination and human cancer risk due to exposure of polycyclic aromatic hydrocarbons. Environment International. 121, 169-177 (2018).
  5. Marsik, P., et al. Metabolism of ibuprofen in higher plants: A model Arabidopsis thaliana cell suspension culture system. Environmental Pollution. 220, 383-392 (2017).
  6. He, Y., et al. Metabolism of ibuprofen by Phragmites australis: uptake and phytodegradation. Environmental Science and Technology. 51 (8), 4576-4584 (2017).
  7. Huber, C., Bartha, B., Harpaintner, R., Schröder, P. Metabolism of acetaminophen (paracetamol) in plants-two independent pathways result in the formation of a glutathione and a glucose conjugate. Environmental Science and Pollution Research. 16 (2), 206-213 (2009).
  8. Thomas, F., Cébron, A. Short-term rhizosphere effect on available carbon sources, phenanthrene degradation, and active microbiome in an aged-contaminated industrial soil. Frontiers in Microbiology. 7, 1-15 (2016).
  9. Villette, C., et al. In situ localization of micropollutants and associated stress response in Populus nigra leaves. Environment International. 126, 523-532 (2019).
  10. Sandermann, H. Plant metabolism of organic xenobiotics. Status and prospects of the ‘Green Liver’ concept. Plant Biotechnology and In Vitro Biology in the 21st Century. , 321-328 (1999).
  11. Sula, B., Deveci, E., Özevren, H., Ekinci, C., Elbey, B. Immunohistochemical and histopathological changes in the skin of rats after administration of lead acetate. International Journal of Morphology. 34 (3), 918-922 (2016).
  12. Villette, C., Maurer, L., Wanko, A., Heintz, D. Xenobiotics metabolization in Salix alba leaves uncovered by mass spectrometry imaging. Metabolomics. 15, 122 (2019).
  13. Khatib-Shahidi, S., Andersson, M., Herman, J. L., Gillespie, T. A., Caprioli, R. M. Direct Molecular Analysis of Whole-Body Animal Tissue Sections by Imaging MALDI Mass Spectrometry. Analytical Chemistry. 78 (18), 6448-6456 (2006).

Play Video

Citer Cet Article
Villette, C., Maurer, L., Heintz, D. Investigation of Xenobiotics Metabolism In Salix alba Leaves via Mass Spectrometry Imaging. J. Vis. Exp. (160), e61011, doi:10.3791/61011 (2020).

View Video