Summary

小鼠完全转型脊髓损伤的诱导

Published: May 06, 2020
doi:

Summary

该协议描述了如何创建精确的拉明切除术,在小鼠模型中诱导稳定的转节型脊髓损伤,为脊髓损伤研究提供最小的附带损伤。

Abstract

脊髓损伤 (SCI) 在很大程度上导致不可逆转和永久性的功能丧失,最常见的是创伤的结果。正在研究一些治疗方案,如细胞移植方法,以克服SCI引起的使人衰弱的残疾。大多数临床前动物试验是在SCI的啮齿动物模型中进行的。虽然SCI的老鼠模型已经被广泛使用,但老鼠模型受到的关注较少,尽管老鼠模型比老鼠模型有显著的优势。老鼠体积小,比老鼠低动物维护成本,许多转基因小鼠模型的提供对许多类型的研究都有利。诱导动物的可重复和精确伤害是SCI研究的主要挑战,在小型啮齿动物中,需要高精度手术。过去十年来,转切型损伤模型一直是移植治疗研究中常用的损伤模型,但不存在诱导小鼠完全转切型损伤的标准化方法。我们开发了一种手术方案,用于诱导胸椎10级(T10)的C57BL/6小鼠出现完全转切型损伤。该程序使用小尖端钻头代替角膜来精确去除层,之后使用带圆切刃的薄刀片诱导脊髓转液。这种方法导致小啮齿动物的可重复转切型损伤,具有最小的附带肌肉和骨骼损伤,因此最大限度地减少混淆因素,特别是在行为功能结果分析的地方。

Introduction

脊髓损伤 (SCI) 是一个复杂的医疗问题,导致健康和生活方式的急剧变化。SCI没有治愈的方法,SCI的病理生理学也没有被彻底理解。动物SCI模型,特别是啮齿动物模型,为试验新疗法提供了宝贵的工具,并已被用于探索SCI几十年。迄今为止,超过72%的临床前SCI研究采用了老鼠模型,而只有16%的人使用过小鼠1。虽然大鼠由于体型较大,而且倾向于形成类似于人类SCI的蛀牙,传统上是研究新疗法的首选模型动物,但老鼠(包括许多转基因小鼠模型)现在正更频繁地用于研究SCI 2的细胞和分子机制。小鼠模型在比大鼠更容易处理、更快的生殖速率和更低的成本方面提供了额外的好处;小鼠也表现出高度的基因组相似性与人类1,2,3。小鼠模型的主要缺点是尺寸明显缩小,这给创建和治疗脊髓损伤外科手术带来了挑战

现有文献中存在差距,突出表明需要一种坚固且可重复的手术方案,以在小鼠模型中诱导稳定的 SCI。因此,我们提供了一种新颖和精确的手术方法,以克服这些限制。该协议提供了深入的指南,以诱导小鼠的转切型损伤,因为这种损伤类型已被确认为最合适的研究再生和退行性的变化后,伤害6,以及神经可塑性,神经电路和组织工程方法7。我们选择诱导损伤在较低的胸腔区域,因为胸腔水平SCI是最常用的文献1。

Protocol

所有程序都是根据澳大利亚国家健康和医学研究理事会的指导方针,经格里菲斯大学动物伦理委员会(ESK/04/16 AEC 和 MSC/04/18 AEC)的批准进行的。 1. 手术的动物设置程序 麻醉和稳定动物。 使用8~10周大的雌性C57BL/6只小鼠。在 1 L/min 氧气中使用 5% 异氟兰进行麻醉诱导。为了维持麻醉,在1升/分钟氧气中使用1.5~2%异氟。通过确定尾部和后爪缺乏疼痛反射,确认适当的…

Representative Results

图 1中描述的方法涉及小鼠的充分稳定(图 1A)和脊柱和准视组织(图1B) 的可视化。旋转过程和层压可以清楚地可视化与最小的肌肉解剖和失血(图1C,高亮区)。精细尖端钻孔按图 1D所示执行,以创建如矩形所示的拉明切除术窗口。由此产生的拉明切除术窗口是明确的,并允许直接…

Discussion

这种方法在小鼠T10椎位诱发完全转切型损伤,导致动物完全截瘫,低于损伤水平。总体而言,此方法可导致最小出血、可忽略不计的附带损害和稳定的可重复伤害。与之前公布的无兰胺切除术10的转治方法相比,该方法在直接可视化方面提供了好处,无需操纵脊柱的曲率,更好地控制损伤的完成,增强了控制出血和实现止血的能力。这种方法的优点是,该协议可以修改,用于任?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作得到了格里菲斯大学国际学生(PhD)津贴的R,佩里交叉基金会赠款JE和JSJ,克莱姆琼斯基金会赠款JSJ和JE,昆士兰州汽车事故保险委员会赠款JSJ和JE的支持。

Materials

Baytril injectable 50 mg/mL, 50 mL Provet BAYT I Post-operative care drug
Betadine 500 mL Provet BETA AS Consumable
Castroviejo needle holder, locking ProSciTech T149C Reusable
Ceramic zirconia blade, round with sharp sides, single edge, angled ProSciTech TXD101A-X Reusable
Cotton swabs (5pcs) Multigate 21-893 Consumable
Dremel Micro DREMEL 8050-N/18 Cordless rotary tool
Dressing forceps fine Multigate 06-306 Single use disposable
Drill bits Kemmer Präzision SM 32 M 0550 070 Reusable
Dumont #7b forceps Fine Science Tools 11270-20 Reusable
Dumont tweezers, style 5 ProSciTech T05-822 Reusable
Fur trimmer WAHL WA9884-312 Zero Overlap Hair Trimmer
Iris scissors, Ti, sharp tips, straight, 90mm ProSciTech TY-3032 Reusable
Isoflurane isothesia NXT 250 Provet ISOF 00 HS Anaesthetic agent
Colibri Retractor – 4cm Fine Science Tools 17000-04 Reusable
Scalpel handle ProSciTech T133 Reusable
Signature latex surgical gloves size 7.5 Medline MSG5475 Consumable
Sodium Chloride 0.9% STS PHA19042005 Consumable
Sterile Dressing Pack Multigate 08-709 Single use disposable
Sterile Fluid Impervious Drape 60×60 cm Multigate 29-220 Single use disposable
Surgical spirit 100 mL Provet # SURG SP Consumable
Suture Material – SILK BLK 45CM 5/0 FS-2 Johnson & Johnson Medical 682G Silk Suture
Suture Material – Vicryl 70CM 5-0 S/A FS-2 Johnson & Johnson Medical VCP421H Vicryl Suture
Temgesic 0.3 mg in 1 mL, x 5 ampoules (class S8 drug) Provet TEMG I Post-operative care drug

References

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  4. Talac, R., et al. Animal models of spinal cord injury for evaluation of tissue engineering treatment strategies. Biomaterials. 25 (9), 1505-1510 (2004).
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Citer Cet Article
Reshamwala, R., Eindorf, T., Shah, M., Smyth, G., Shelper, T., St. John, J., Ekberg, J. Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice. J. Vis. Exp. (159), e61131, doi:10.3791/61131 (2020).

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