Summary

Um sistema gnotobiótico para estudar a montagem do microbioma na Fistofera e na Fermentação Vegetal

Published: June 03, 2020
doi:

Summary

Foi desenvolvido um método de cultivo de repolhos Napa sem germes que permite aos pesquisadores avaliar como espécies microbianas únicas ou comunidades microbianas multiespécies interagem em superfícies de folhas de repolho. Também é apresentado um extrato vegetal estéril que pode ser usado para medir mudanças na composição da comunidade durante a fermentação vegetal.

Abstract

A filosfera, a porção acima do solo da planta que pode ser colonizada por micróbios, é um sistema modelo útil para identificar processos de montagem comunitária microbiana. Este protocolo descreve um sistema para estudar a dinâmica da comunidade microbiana na filosfera das plantas de repolho Napa. Descreve como cultivar plantas livres de germes em tubos de ensaio com um substrato de argila calcinada e caldo de nutrientes. A inoculação de plantas livres de germes com culturas microbianas específicas oferece oportunidades para medir o crescimento microbiano e a dinâmica comunitária na filosfera. Através do uso de extrato vegetal estéril produzido a partir de repolhos, também podem ser avaliados os deslocamentos em comunidades microbianas que ocorrem durante a fermentação. Este sistema é relativamente simples e barato de ser criado em laboratório e pode ser usado para abordar questões ecológicas importantes na montagem da comunidade microbiana. Também oferece oportunidades para entender como a composição da comunidade da filosfera pode impactar a diversidade microbiana e a qualidade das fermentações vegetais. Essa abordagem para o desenvolvimento de comunidades de filosfera de repolho gnotobiótico poderia ser aplicada a outras espécies de plantas selvagens e agrícolas.

Introduction

A diversidade microbiana da fisfera desempenha um papel importante na manutenção da saúde vegetal e também pode influenciar a capacidade das plantas de suportar o estresse ambiental1,,2,3,4,,5. Por sua vez, a saúde das culturas impacta diretamente na segurança alimentar e na qualidade6,7. As plantas desempenham um papel no funcionamento do ecossistema e seus microbiomas associados afetam tanto a capacidade das plantas de realizar essas atividades como influenciam diretamente o meio ambiente8. Embora os cientistas tenham começado a decifrar a função e a composição da filosfera, os processos ecológicos que influenciam a montagem da comunidade microbiana da filosfera não são totalmente compreendidos9,,10. O microbioma da fisfera é um excelente sistema experimental para estudar a ecologia dos microbiomas11. Essas comunidades são relativamente simples e muitos dos membros da comunidade podem ser cultivados em mídia de laboratório padrão10,,12,,13.

Vegetais fermentados são um sistema onde a estrutura comunitária da filosfera tem consequências importantes. Tanto no chucrute quanto no kimchi, os micróbios que ocorrem naturalmente nas folhas vegetais (a filosfera da espécie Brassica) servem como o inóculo para a fermentação14,15. As bactérias do ácido láctico (LAB) são consideradas membros onipresentes de microbiomas vegetais, porém podem estar em baixa abundância na fisfera16. Uma forte seleção abiótica durante a fermentação impulsiona uma mudança na composição da comunidade microbiana, permitindo que as bactérias do ácido láctico aumentem em abundância. À medida que o LAB cresce, eles produzem ácido láctico que cria o ambiente ácido de produtos vegetais fermentados17. A ligação entre a fisfera e o fermento proporciona uma oportunidade de usar vegetais como modelo para entender como os microbiomas são estruturados.

Desenvolvemos métodos para cultivar repolhos Napa sem germes e inocula-los com comunidades microbianas específicas usando garrafas de spray. Trata-se de um método barato e confiável de inocular uniformemente o repolho com micróbios individuais ou comunidades mistas. Um extrato vegetal estéril (SVE) também foi desenvolvido a partir de três tipos/variedades diferentes de repolho: repolho vermelho e verde(Brassica oleracea) e repolho Napa (B. rapa). A adição de sal a essas PMEs replica o ambiente de fermentação e permite estudos experimentais de pequena escala e relativamente de alto rendimento da montagem de microbioma de fermentação. Esses métodos podem ser usados para estudar a montagem da comunidade microbiana na filosfera e como a dinâmica da comunidade microbiana na filosfera pode estar ligada ao sucesso da fermentação vegetal.

Protocol

1. Repolhos sem germes Preparando equipamentos para o cultivo de repolhos sem germes Limpeza da argila calcinada para remover partículas de poeira fina Enxágüe argila calcinada(Tabela de Materiais) pelo menos 3x com água da torneira; drenar água.ATENÇÃO: A argila calcinada produz pó muito fino e recomenda-se usar uma máscara protetora(Tabela de Materiais)durante a lavagem. Espalhe argila calcinada como uma camada fina (~4 cm) em uma band…

Representative Results

Taxas de crescimento de repolhos NapaO método de esterilização de sementes foi testado com vários repolhos Napa diferentes (B. rapa var pekinese; Figura Suplementar 1) de vários fornecedores diferentes e todos cresceram consistentemente com taxas de crescimento semelhantes. No entanto, testando os métodos com diferentes espécies de Brassica (B. rapa: Turnip Purple Top; B. oleracea: Cairo Hybrid, Híbrido Giga…

Discussion

As plantas de repolho Napa livres de germes têm sido usadas para estudar a limitação dispersa de bactérias de ácido láctico na fisfera de repolho napa17. Repolhos Napa sem germes também podem ser usados para testar o crescimento individual ou par-wise na fisfera (Figura 1). Métodos para a fabricação de extrato vegetal estéril foram testados para três variedades diferentes de repolho: vermelho, verde e napa. Cada uma dessas SVEs atuam como uma mídia de cre…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pela subvenção do USDA-NIFA: 2017-67013-26520. Tracy Debenport e Claire Fogan forneceram suporte técnico e Ruby Ye e Casey Cosetta fornecem comentários úteis sobre as primeiras versões deste manuscrito.

Materials

1.5 mL microcentrifuge tubes VWR 20170-650
15 mL conical tubes Falcon 352096
7-way tray tray Sigma Magenta T8654
Amber Round Boston Glass Bottle GPS 712OZSPPK12BR Ordered on Amazon.com from various suppliers
Basket coffee filters If you care (unbleached paper) Purchased from Wholefoods
Bleach (mercury-free) Austin's 50-010-45
Borosilicate Glass tubes VWR 47729-586
Calcined clay Turface MVP Ordered on Amazon.com from Root Naturally 6 Quart Bags. Particle size approximately 3-5 mm
Cuisinart blender Cuisinart Cuisinart Mini-Prep Plus Food Processor, 3-Cup
Dissection scissors 7-389-A American Educational Products Ordered on Amazon.com
Ethanol VWR 89125-172
Forceps Aven 18434 Ordered on Amazon.com
Glycerol Fisher Scientific 56-81-5
KleenGuard M10 Kimberley-Clark 64240
Large plastic container Rubbermaid Ordered on Amazon.com
Light racks Gardner's Supply 39-357 full-spectrum T5 fluorescent bulbs
Magenta tm 2-way caps Millipore Sigma C1934
Man, Rogosa, and Sharpe Fisher Scientific DF0881-17-5 This media is for broth and 15 g of agar is added to make plates
Micro pH probe Thermo Scientific 8220BNWP
Micropestle Carolina 215828 Also called Pellet Pestle
MS nutrient broth Millipore Sigma M5519 Murashige and Skoog Basal Medium
NaCl Sigma Aldrich S9888
Napa cabbage seeds Johnny's Select Seeds 2814G B. rapa var pekinensis (Bilko)
Petri dish 100 mm x 15 mm Fisher FB0875712 Used to make agar plates
Phosphate buffer saline Fisher Scientific 50-842-941 Teknova
Plant tissue culture box Sigma Magenta GA-7
Serologial pipettes VWR 89130-900
Sterile dowel Puritan 10805-018 Autoclave before use to sterilize
Sterilizing 0.2 µm filter Nalgene 974103
Tryptic soy agar Fisher Scientific DF0370-17-3 This media is for broth and 15 g of agar is added to make plates
Wide orifice pipette tips Rainin 17007102
Yeast, peptone and dextrose Fisher Scientific DF0428-17-5 This media is suitable but media can also be made using yeast, peptone and dextrose, add 15 g of agar when making plates

References

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Citer Cet Article
Miller, E. R., O’Mara Schwartz, J., Cox, G., Wolfe, B. E. A Gnotobiotic System for Studying Microbiome Assembly in the Phyllosphere and in Vegetable Fermentation. J. Vis. Exp. (160), e61149, doi:10.3791/61149 (2020).

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