Summary

En forbedret protokoll for å rense og direkte mono-bio-biotinylate rekombinant BDNF i et rør for cellulære trafficking studier i nevroner

Published: July 11, 2020
doi:

Summary

Rekombinant BDNF som inneholder en Avi-sekvens (BDNFAvi) produseres i HEK293-celler på en kostnadseffektiv måte og renses av affinitetkromatografi. BDNFavi blir deretter direkte mono-biotinylert med enzymet BirA i et rør. BDNFavi og mono-biotinylated BDNFavi beholder sin biologiske aktivitet sammenlignet med kommersielt tilgjengelig BDNF.

Abstract

Rekombinant BDNF som inneholder en Avi-sekvens (BDNFAvi) produseres i HEK293-celler og deretter kostnadseffektivt renset av affinitetkromatografi. En reproduserbar protokoll ble utviklet for å direkte mono-bio-tinylate BDNFAvi med enzymet BirA i et rør. I denne reaksjonen beholder mono-biotinylert BDNFAvi sin biologiske aktivitet.

Neurotrophins er målavledede vekstfaktorer som spiller en rolle i nevronal utvikling og vedlikehold. De krever raske transportmekanismer langs den endokytiske veien for å tillate langdistansesignal mellom forskjellige nevronale rom. Utviklingen av molekylære verktøy for å studere smugling av neurotrophins har gjort det mulig for nøyaktig sporing av disse proteinene i cellen ved hjelp av in vivo-opptak. I denne protokollen utviklet vi en optimalisert og kostnadseffektiv prosedyre for produksjon av mono-biotinylated BDNF. En rekombinant BDNF-variant som inneholder en biotinylable avi-sekvens (BDNFAvi) produseres i HEK293-celler i mikrogramområdet og deretter renses i en lett skalerbar prosedyre ved hjelp av affinitetkromatografi. Den rensede BDNF kan deretter homogent være mono-biotinylated av en direkte in vitro reaksjon med enzymet BirA i et rør. Den biologiske aktiviteten til den mono-biotinylated BDNF (mbtBDNF) kan konjugeres til streptavidin-konjugert til forskjellige fluorofofag. BDNFAvi og mbtBDNF beholder sin biologiske aktivitet demonstrert gjennom påvisning av nedstrøms fosforylerte mål ved hjelp av henholdsvis vestlig blot og aktivering av transkripsjonsfaktoren CREB. Ved hjelp av streptavidin-quantum prikker, var vi i stand til å visualisere mbtBDNF internalisering samtidig med aktivering av CREB, som ble oppdaget med et fosfo-CREB spesifikt antistoff. I tillegg var mbtBDNF konjugert til streptavidin-quantum prikker egnet for retrograd transportanalyse i kortikale nevroner dyrket i mikrofluidiske kamre. Dermed, i rør produsert mbtBDNF er et pålitelig verktøy for å studere fysiologisk signalisering endosome dynamikk og menneskehandel i nevroner.

Introduction

Nevroner er de funksjonelle enhetene i nervesystemet som har en kompleks og spesialisert morfologi som tillater synaptisk kommunikasjon, og dermed generering av koordinert og kompleks oppførsel som svar på ulike stimuli. Nevronale projeksjoner som dendritter og aksoner er kritiske strukturelle egenskaper involvert i nevronal kommunikasjon, og neurotrophins er avgjørende aktører i å bestemme deres morfologi og funksjon1. Neurotrophins er en familie av utskilte vekstfaktorer som inkluderer NGF, NT-3, NT-4, og hjerne-avledet nevrotrofisk faktor (BDNF)2. I sentralnervesystemet (CNS) deltar BDNF i ulike biologiske prosesser, inkludert nevrotransmisjon, dendrittisk arborisering, modning av dendrittiske spines, langsiktig potensering, blant annet3,4. Derfor spiller BDNF en kritisk rolle i å regulere nevronal funksjon.

Ulike cellulære prosesser regulerer BDNF-dynamikken og funksjonen. På den nevronale overflaten binder BDNF tropomyosinreseptorkinase B (TrkB) og/eller p75 neurotrophinreseptoren (p75). BDNF-TrkB og BDNF-p75 komplekser er endokytosed og sortert i forskjellige endokytiske organeller5,,6,,7,,8. Korrekt intracellulær smugling av BDNF/TrkB-komplekset er nødvendig for riktig BDNF-signalering i forskjellige nevronale kretser9,,10,,11. Av denne grunn er en dyp forståelse av BDNF trafficking dynamikk og dens endringer som finnes i patofysiologiske prosesser avgjørende for å forstå BDNF signalering i helse og sykdom. Utviklingen av nye og spesifikke molekylære verktøy for å overvåke denne prosessen vil bidra til å drive dette feltet fremover og tillate en bedre forståelse av de regulatoriske mekanismene som er involvert.

Det finnes flere verktøy tilgjengelig for studiet av BDNF smugling i nevroner. En vanlig metodikk innebærer transfeksjon av rekombinant BDNF merket med fluorescerende molekyler som grønt fluorescerende protein (GFP) eller den monomeriske fluorescerende rødforskjøvet variant av GFP mCherry12,13. Imidlertid er en stor mangel på BDNF overuttrykk at det eliminerer muligheten for å levere kjente konsentrasjoner av denne nevrotrophin. Det kan også føre til cellulær toksisitet, som skjuler tolkningen av resultatene14. En alternativ strategi er transfeksjon av en epitop-merket TrkB, for eksempel Flag-TrkB. Denne metodikken gjør det mulig å studere TrkB internaliseringsdynamikk15, men det innebærer også transfeksjon, noe som kan resultere i endret TrkB-funksjon og cellulær toksisitet. For å overvinne disse metodiske hindringer, rekombinant varianter av NGF og BDNF inneholder en Avi sekvens (BDNFAvi), som kan være mono-biotinylated av biotin-ligase enzymet BirA, ble utviklet16,17. Biotinylert rekombinant BDNF kan kobles til forskjellige streptavidin-bundne verktøy, som inkluderer fluorofos, perler, paramagnetiske nanopartikler blant annet for deteksjon. Når det gjelder levende celleavbildning, har kvanteprikker (QD) blitt ofte brukt fluoroforeer, da de har ønskelige egenskaper for enkeltpartikkelsporing, for eksempel økt lysstyrke og motstand mot fotobleking sammenlignet med små molekylfluorophores18.

Produksjonen av mono-biotinylert BDNF (mbtBDNF) ved hjelp av BDNFAvi er oppnådd ved samtidig transfeksjon av plasmider som driver uttrykket av BDNFAvi og BirA, etterfulgt av rensing av rekombinant protein ved affinitet kromatografi med et utbytte på 1-2 μg BDNF per 20 ml HEK293-condition kultur media17. Her foreslår vi en endring av denne protokollen som gjør det mulig for BDNFAvi rensing fra 500 ml HEK293-conditioned media, som søker å maksimere protein utvinning i en kromatografi-kolonne basert protokoll for enkel manipulering. Det brukte transfeksjonsmidlet, polyetylenimin (PEI), sikrer en kostnadseffektiv metode uten å ofre transfeksjonsutbytte. Mono-biotinylation trinnet har blitt tilpasset en in vitro reaksjon for å unngå komplikasjoner forbundet med co-transfections og for å sikre homogen merking av BDNF. Den biologiske aktiviteten til mbtBDNF ble demonstrert av vestlige blot- og fluorescensmikroskopieksperimenter, inkludert aktivering av pCREB og levende celleavbildning for å studere retrograd aksonal transport av BDNF i mikrofluidiske kamre. Bruken av denne protokollen muliggjør optimalisert, høykapasitetsproduksjon av homogen mono-biotinylert og biologisk aktiv BDNF.

Protocol

Alle eksperimenter ble utført i samsvar med de godkjente retningslinjene til CONICYT (Chilean National Commission for Scientific and Technological Research). Protokollene som ble brukt i denne studien ble godkjent av Biosecurity og Bioethical and Animal Welfare Committees av Pontificia Universidad Católica de Chile. Eksperimenter med virveldyr ble godkjent av bioetisk og dyrevelferdskomiteen ved Pontificia Universidad Católica de Chile. MERK: Følgende protokoll ble utformet for å rense BD…

Representative Results

Bruken av en kromatografisk kolonnebasert protokoll gjør det mulig å behandle betydelige volumer av HEK293-kondisjonerte medier. I figur 1vises resultatene av rensingen av BDNFAvi fra 500 ml kondisjonert medier. Påfølgende elutasjoner av BDNFAvi fra Ni-NTA agarose perler gir avtagende konsentrasjoner av BDNFAvi (Figur 1A). Etter fire påfølgende elutions (hver varer 15 min), er flertallet av BDNF fanget av perlene gjenopprettet. Konsentrasjonene av eluatene…

Discussion

I denne artikkelen er en optimalisert metodikk for produksjon og rensing av mbtBDNF i en affinitet kromatografi-basert prosedyre beskrevet, basert på arbeidet til Sung og samarbeidspartnere17. Optimaliseringene inkluderer bruk av en kostnadseffektiv transfeksjonsreagens (PEI) samtidig som effektiviteten av dyrere transfeksjonsmetoder som lipofectamin opprettholdes. Denne optimaliseringen oversettes til en betydelig kostnadsreduksjon i protokollen, noe som muliggjør skalerbarhet samtidig som den …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne anerkjenner takknemlig økonomisk støtte fra Fondecyt (1171137) (FCB), Basal Center of Excellence in Science and Technology (AFB 170005) (FCB), Millenium-Nucleus (P07/011-F) (FCB), Wellcome Trust Senior Investigator Award (107116/Z/15/Z) (GS) og en UK Dementia Research Institute Foundation award (GS). Dette arbeidet ble støttet av Unidad de Microscopía Avanzada UC (UMA UC).

Materials

2 way stopcock BioRad 7328102 Chromatography apparatus component
2-mercaptoethanol Sigma M6250 BDNF elution buffer
Acrylamide/Bisacrylamide BioRad 1610154 SDS-PAGE gel preparation
Amicon Ultra-15 10K Millipore UFC901024 BDNF concentration
Ammonium Persulfate Sigma A9164 SDS-PAGE gel preparation
anti B-III-Tubulin antibody Sigma T8578 Western blot assays for BDNF biological activity detection
anti BDNF antibody Alomone AGP-021 Western blot assays for BDNF quantification
anti BDNF antibody Alomone ANT-010 Western blot assays for BDNF quantification
Anti ERK antibody Cell Signaling 9102 Western blot assays for BDNF biological activity detection
anti pCREB antibody (S133) Cell Signaling 9198 Western blot assays for BDNF biological activity detection
anti pERK antibody (T202, Y204) Cell Signaling 4370 Western blot assays for BDNF biological activity detection
anti pTrkB antibody (Y515) Abcam ab109684 Western blot assays for BDNF biological activity detection
Antibiotic/Antimycotic Gibco 15240-062 HEK293 maintenance
ATP Sigma A26209 BDNF monobiotinylation buffer
B-27 Supplement Gibco 17504-044 Neuron maintenance
Bicine Sigma B3876 BDNF monobiotinylation buffer
BirA-GST BPS Bioscience 70031 Enzyme for BDNF AviTag monobiotinylation
Bovine Fetal Serum HyClone HC.SH30396.02 HEK293 maintenance
Bovine Serum Albumin Jackson ImmunoResearch 001-000-162 BDNF buffer modification component, blocking buffer for western blot and immunofluorescence
D-Biotin Sigma B4639 BDNF monobiotinylation buffer
Dithiothreitol Invitrogen 15508-013
DMEM High Glucose Medium Gibco 11965-092 Neuron seeding
DMEM Medium Gibco 11995-081 HEK293 maintenance
Econo Column Funnel BioRad 7310003 Chromatography apparatus component
EDTA Merck 108418
EZ-ECL Kit Biological Industries 1633664 Protein detection by western blotting
Glutamax Gibco 35050-061 Neuron and HEK293 maintenance
Glycerol Merck 104094 BDNF elution buffer, lysis buffer for western blot assays
Hettich Rotina 46R Centrifuge Hettich Discontinued Centrifuge used for clearing the medium of debris
Hettich Universal 32R Centrifuge Hettich Discontinued Centrifuge used for protein concentrator centrifugation
Horse Serum Gibco 16050-122 Neuron seeding
ImageQuant LAS 500 GE Healthcare Life Sciences 29005063 Western blot image acquisition
Imidazole Sigma I55513 BDNF buffer modification component
KCl Winkler BM-1370 PBS component
KH2PO4 Merck 104873 PBS component
Laminin Invitrogen 23017-015 Cover coating for compartmentalized neurons
Luer Tubing Adaptor BioRad 7323245 Chromatography apparatus component
Luminata™ Forte Western HRP Substrate Millipore WBLUF0100 Protein detection by western blotting
Mg(CH3COO)2 Merck 105819 BDNF monobiotinylation buffer
Mowiol 4-88 Calbiochem 475904 Mounting reagent for immunofluorescence assays
MyOne C1 Streptavidin Magnetic Beads Invitrogen 65001 Biotinylation verification
Na2HPO4 Merck 106586 BDNF buffer modification component
NaCl Winkler BM-1630 PBS component, BDNF buffer modification component
NaH2PO4 Merck 106346 BDNF buffer modification component
Neurobasal Medium Gibco 21103-049 Neuron maintenance
Ni-NTA Agarose Beads Qiagen 30210 BDNF AviTag purification
Nikon Ti2-E Nikon Microscope for fluorescence imaging
Nitrocellulose Membrane BioRad 1620115 Protein transfer for western blotting
ORCA-Flash4.0 V3 Digital CMOS camera Hamamatsu C13440-20CU Camera for epifluorescence imaging
P8340 Protease Inhibitor Cocktail Sigma P8340 BDNF buffer modification component
Paraformaldehyde Merck 104005 Fixative for immunofluorescence assays
Penicillin/Streptomycin Gibco 15140-122 Neuron maintenance
Poli-D-Lysine Corning DLW354210 Cover coating for compartmentalized neurons
Poli-L-Lysine Millipore P2363 Cover coating for non-compartmentalized neurons
Poly-Prep Chromatography Column BioRad 7311550 Chromatography apparatus component
Polyethyleneimine 25K Polysciences Inc. PLY-0296 HEK293 transfection
Quantum Dots 655 streptavidin conjugate Invitrogen Q10121MP Monobiotinylated BDNF AviTag label for live and fixed cell experiments
Saponin Sigma S4521 Detergent for immunofluorescence assays
Sucrose Merck 107687
Syldgard 184 silicone elastomer base Poirot 4019862 Microfluidic chamber preparation
TEMED Sigma T9281 SDS-PAGE gel preparation
Tris Winkler BM-2000 Lysis buffer component
Triton X100 Merck 108603 Cell permeabilization in immunofluorescence and western blot assays
Trypsin-EDTA 0.5% Gibco 15400-054 HEK293 passaging

References

  1. Huang, E., Reichardt, L. Neurotrophins: Roles in Neuronal Development and Function. Annual Review of Neuroscience. 24, 677-736 (2001).
  2. Skaper, S. D. The neurotrophin family of neurotrophic factors: an overview. Methods in Mollecular Biology. 846, 1-12 (2012).
  3. Gonzalez, A., Moya-Alvarado, G., Gonzalez-Billault, C., Bronfman, F. C. Cellular and molecular mechanism regulating neuronal growth by brain-derived neurotrophic factor. Cytoskeleton. 73 (10), 612-628 (2016).
  4. Cunha, C., Brambilla, R., Thomas, K. A simple role for BDNF in learning and memory. Frontiers in Mollecular Neuroscience. 3, 1 (2010).
  5. Bronfman, F. C., Lazo, O. M., Flores, C., Escudero, C. A., Lewin, G., Carter, B. Spatiotemporal intracelular dynamics of neurotrophin and its receptors. Implications for neurotrophin signaling and neuronal function. Neurotrophic Factor. Handbook of Experimental Pharmacology. 220, (2014).
  6. Ascano, M., Bodmer, D., Kuruvilla, R. Endocytic trafficking of neurotrophins in neural development. Trends in Cell Biology. 22 (5), 266-273 (2012).
  7. Deinhardt, K., Salinas, S., Verastegui, C., Watson, R., Worth, D., Hanrahan, S., Bucci, C., Schiavo, G. Rab5 and Rab7 control endocytic sorting along the axonal retrograde transport pathway. Neuron. 52 (2), 293 (2006).
  8. Escudero, C. A., et al. c-Jun N-terminal kinase (JNK)-dependent internalization and Rab5-dependent endocytic sorting medaited long-distance retrograde neuronal death induced by axonal BDNF-p75 signaling. Scientific Reports. 9, 6070 (2019).
  9. Vrabec, J. P., Levin, L. A. The neurobiology of cell death in glaucoma. Eye. 21, 11-14 (2007).
  10. Liot, G., Zala, D., Pla, P., Mottet, G., Piel, M., Saudou, F. Mutant huntingtin alters retrograde transport of TrkB receptors in striatal dendrites. Journal of Neuroscience. 33 (15), 6298-6309 (2013).
  11. Zhou, B., Cai, Q., Xie, Y., Sheng, Z. H. Snapin recruits dynein to BDNF-TrkB signaling endosomes for retrograde axonal transport and is essential for dendrite growth of cortical neurons. Cell Reports. 2 (1), 42-51 (2012).
  12. Haubensak, W., Narz, F., Heumann, R., Lessmann, V. BDNF-GFP containing secretory granules are localized in the vicinity of synaptic junctions of cultured cortical neurons. Journal of Cell Science. 111 (11), 1483-1493 (1998).
  13. Adachi, N., et al. Glucocorticoid affects dendritic transport of BDNF-containing vesicles. Scientific Reports. 5, 12684 (2015).
  14. Biocompare: The Buyer’s Guide for Life Scientists. Mirus Bio. Cellular Toxicity Caused by Transfection: Why is it important Available from: https://www.biocompare.com/Bench-Tips/121111-Cellular-Toxicity-Caused-by-Transfection-Why-is-it-important/ (2012)
  15. Zhao, L., et al. Mechanism underlying activity-dependent insertion of TrkB into the neuronal surface. Journal of Cell Science. 122 (17), 3123-3136 (2009).
  16. Zhao, X., Zhou, Y., Weissmiller, A., Pearn, M., Mobley, W., Wu, C. Real-time imaging of axonal transport of quantum dot-labeled BDNF in primary neurons. Journal of Visualized Experiments. 91, 51899 (2014).
  17. Sung, K., Maloney, M., Yang, J., Wu, C. A novel method for producing mono-biotinylated, biologically active neurotrophic factors: an essential reagent for single molecule study of axonal transport. Journal of Neuroscience Methods. 200 (2), 121-128 (2011).
  18. Deerinck, T. The application of fluorescent quantum dots to confocal, multiphoton and electron microscopic imaging. Toxicologic Pathology. 36 (1), 112-116 (2008).
  19. Unsain, N., Nuñez, N., Anastasia, A., Mascó, D. H. Status epilepticus induces a TrkB to p75 neurotrophin receptor switch and increases brain-derived neurotrophic factor interaction with p75 neurotrophon receptor: an initial event in neuronal injury induction. Neurosciences. 154 (3), 978-993 (2008).
  20. Walker, J. M. The bicinchoninic acid (BCA) assay for protein quantitation. Methods Mol Biol. 32, 5-8 (1994).
  21. Moya-Alvarado, G., Gonzalez, A., Stuardo, N., Bronfman, F. C. Brain-derived neurotrophic factor (BDNF) regulates Rab5-positive early endosomes in hippocampal neurons to induce dendritic branching. Frontiers in Cellular Neuroscience. 12, 493 (2018).
  22. Sasi, M., Vignoli, B., Canossa, M., Blum, R. Neurobiology of local and intercellular BDNF signaling. Pflugers Archiv European Journal of Physiology. 469 (5), 593-610 (2017).
  23. . The Rab5-Rab11 endosomal pathway is required for BDNF-induced CREB transcriptional regulation in neurons Available from: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/844720v1 (2019)
  24. Mowla, , et al. Biosynthesis and post-translational processing of the precursor to brain-derived neurotrophic factor. Journal of Biological Chemistry. 276 (16), 12660-12666 (2001).
  25. Longo, P., Kavran, J., Kim, M. S., Leahy, D. Transient Mammalian Cell Transfection with Polyethyleneimine (PEI). Methods in Enzymology. 529, 227-240 (2013).
  26. Raymond, C., Tom, R., Perret, S., Moussouami, P., L’Abbé, D., St-Laurent, G., Durocher, Y. A simplified polyethyleneimine-mediated transfection process for large-scale and high-throughput applications. Methods. 55 (1), 44-51 (2011).
  27. Dalton, A., Barton, W. Over-expression of secreted proteins from mammalian cell lines. Protein Science. 23 (5), 517-525 (2014).
  28. Hunter, M., Yuan, P., Vavilala, D., Fox, M. Optimization of protein expression in mammalian cells. Current Protocols in Protein Science. 95 (1), 77 (2019).
  29. Stepanenko, A. A., Heng, H. H. Transient and stable vector transfection: Pitfalls, off-target effects, artifacts. Mutation Research. 773, 91-103 (2017).
  30. Guerzoni, L. P., Nicolas, V., Angelova, A. In vitro modulation of TrkB receptor signaling upon sequential delivery of curcumin-DHA loaded carriers towards promoting neuronal survival. Pharmaceutical Research. 34 (2), 492-505 (2017).
  31. Angelova, A., Angelov, B. Dual and multi-drug delivery nanoparticles towards neuronal survival and synaptic repair. Neural Regeneration Research. 12 (6), 886-889 (2017).
check_url/fr/61262?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Stuardo, N., Moya-Alvarado, G., Ramírez, C., Schiavo, G., Bronfman, F. C. An Improved Protocol to Purify and Directly Mono-Biotinylate Recombinant BDNF in a Tube for Cellular Trafficking Studies in Neurons. J. Vis. Exp. (161), e61262, doi:10.3791/61262 (2020).

View Video