Summary

कैप-डिपेंडेंट ट्रांसल काइनेटिक्स के विश्लेषण के लिए इन विट्रो सिंगल-अणु इमेजिंग परख

Published: September 15, 2020
doi:

Summary

व्यक्तिगत अनुवाद घटनाओं पर नज़र रखने कैप-निर्भर अनुवाद तंत्र के उच्च संकल्प गतिज अध्ययन के लिए अनुमति देता है। यहां हम फ्लोरोसेंटली लेबल एंटीबॉडी और एपिटोप-टैग नवजात पेप्टाइड्स के बीच इमेजिंग इंटरैक्शन के आधार पर एक इन विट्रो एकल-अणु परख प्रदर्शित करते हैं। यह विधि सक्रिय इन विट्रो कैप-डिपेंडल अनुवाद के दौरान दीक्षा और पेप्टाइड विस्तार गतिज के एकल अणु लक्षण वर्णन को सक्षम बनाती है।

Abstract

कैप-डिपेंडेंट प्रोटीन संश्लेषण यूकेरियोटिक कोशिकाओं में प्रमुख अनुवाद मार्ग है। जबकि विभिन्न जैव रासायनिक और आनुवंशिक दृष्टिकोणों ने कैप-निर्भर अनुवाद और इसके विनियमन के व्यापक अध्ययन की अनुमति दी है, इस अनुवाद मार्ग के उच्च संकल्प गतिज लक्षण वर्णन अभी भी कमी है। हाल ही में, हमने एकल-अणु संकल्प के साथ कैप-निर्भर अनुवाद काइनेटिक्स को मापने के लिए एक इन विट्रो परख विकसित की। परख फ्लोरोसेंटी लेबल एंटीबॉडी पर आधारित है जो नवजात एपिटोप-टैग किए गए पॉलीपेप्टाइड के लिए बाध्यकारी है। नवजात पेप्टाइड-राइबोसोम-एमआरएनए परिसरों से एंटीबॉडी के बाध्यकारी और वियोजन को इमेजिंग करके, व्यक्तिगत mRNAs पर अनुवाद प्रगति को ट्रैक किया जा सकता है। यहां, हम इस परख को स्थापित करने के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं, जिसमें एमआरएनए और पेग्यालेटेड स्लाइड तैयारी, अनुवाद की वास्तविक समय इमेजिंग और एकल अणु प्रक्षेप पथ का विश्लेषण शामिल है। यह परख व्यक्तिगत टोपी पर निर्भर अनुवाद घटनाओं की ट्रैकिंग में सक्षम बनाता है और इस तरह के दीक्षा और विस्तार दरों के रूप में प्रमुख अनुवाद काइनेटिक्स, हल करता है । परख व्यापक रूप से अलग अनुवाद प्रणालियों के लिए लागू किया जा सकता है और मोटे तौर पर टोपी पर निर्भर अनुवाद गतिज और अनुवाद नियंत्रण तंत्र के विट्रो अध्ययन में लाभ होना चाहिए ।

Introduction

यूकेरियोटिक सिस्टम में अनुवाद मुख्य रूप से 7-मिथाइलगुआनोसिन (एम 7 जी) कैप-निर्भररास्ते1के माध्यम से होता है। अध्ययनों से पता चलता है कि यूकेरियोटिक अनुवाद का दीक्षा कदम दर-सीमित हैऔर विनियमन2,3,4के लिए एक आम लक्ष्य है। कैप-निर्भर अनुवाद के तंत्र का आनुवंशिक5,जैव रासायनिक6,7,8,संरचनात्मक9,और जीनोमिक10 थोक दृष्टिकोणों का उपयोग करके बड़े पैमाने पर अध्ययन किया गया है। यद्यपि इन तरीकों ने विविध तंत्रों की पहचान की है जो कैप-निर्भर दीक्षा को विनियमित करते हैं, उनका संकल्प उन्हें विषम और अतुलित दीक्षा घटनाओं से संकेतों के औसत के कलाकारों की टुकड़ी तक सीमित करता है। हाल ही में, वीवो अनुवाद घटनाओं में व्यक्तिगत तरीकों से कल्पना की गई है जो फ्लोरोसेंट एंटीबॉडी को नवजात पॉलीपेप्टिड्स11, 12,13,14पर एपिटोप करने के लिए बाध्यकारी उपाय करते हैं। हालांकि, ये नए दृष्टिकोण व्यक्तिगत दीक्षा घटनाओं को हल करने की क्षमता में भी सीमित हैं क्योंकि कई फ्लोरोसेंट एंटीबॉडी को एक प्रारंभिक पेप्टाइड को बांधना चाहिए ताकि एकल अनुवाद घटनाओं को उच्च इंट्रासेलुलर फ्लोरेसेंस पृष्ठभूमि से हल किया जा सके। कई जैविक बातचीत में, हल किए गए व्यक्तिगत गतिज घटनाओं ने जटिल मल्टीस्टेप और दोहराव वाली जैविक प्रक्रियाओं को समझने में महत्वपूर्ण अंतर्दृष्टि प्रदान की है जो आणविक स्तर पर सिंक्रोनाइज़ करना संभव नहीं है। नए तरीके जो व्यक्तिगत अनुवाद घटनाओं की गतिशीलता को ट्रैक कर सकते हैं, कैप-निर्भर दीक्षा और विनियमन की बेहतर समझ के लिए आवश्यक हैं।

हमने हाल ही में एक इन विट्रो परख विकसित की है जो एकल-अणु संकल्प15के साथ कैप-निर्भर दीक्षा काइनेटिक्स को मापता है। इस दीक्षा मार्ग 3,16में शामिल ज्ञात और अज्ञात प्रोटीन कारकों की बड़ी संख्या को ध्यान में रखतेहुए,एकल अणु परख को मौजूदा इन विट्रो सेल-मुक्त अनुवाद प्रणालियों के साथ संगत करने के लिए विकसित किया गया था ताकि सेलुलरकारकों के संरक्षण और मजबूत अनुवाद गतिविधि17, 18,19,20, 21,22, 23,24,25के संरक्षण से लाभ हो सके । इसके अलावा, सेल-मुक्त अनुवाद प्रणालियों का उपयोग एकल-अणु टिप्पणियों और पिछले थोक परिणामों के बीच अधिक संगत तुलना की अनुमति देता है। यह दृष्टिकोण कैप-निर्भर दीक्षा के मौजूदा यंत्रवादी ढांचे में नए एकल-अणु गतिज अंतर्दृष्टि का सीधा-आगे एकीकरण प्रदान करता है। एकल अणु परख स्थापित करने के लिए, पारंपरिक सेल-मुक्त अनुवाद प्रणाली को तीन तरीकों से संशोधित किया जाता है: एक रिपोर्टर एमआरएनए के खुले रीडिंग फ्रेम (ओआरएफ) की शुरुआत में एक एपिटोप-एन्कोडिंग अनुक्रम डाला जाता है; रिपोर्टर एमआरएनए का 3 ‘अंत एकल-अणु का पता लगाने की सतह पर एमआरएनए एंड-टेदरिंग की सुविधा के लिए बायोटिनिलेटेड है; और फ्लोरोसेंटली-लेबल वाले एंटीबॉडी को अनुवाद निकालने के लिए पूरक किया जाता है। इन संशोधनों के लिए केवल बुनियादी आणविक जीव विज्ञान तकनीकों और आमतौर पर उपलब्ध अभिकर्षकों की आवश्यकता होती है। इसके अलावा, ये संशोधन और एकल-अणु इमेजिंग स्थितियां थोक सेल-मुक्त अनुवाद प्रतिक्रियाओं15के अनुवाद काइनेटिक्स को संरक्षित करती हैं।

इस परख में(चित्रा 1),5′-अंत छाया हुआ और 3′-अंत बायोटिनेलेटेड रिपोर्टर एमआरएनए को प्रवाह कक्ष में एक स्ट्रेप्टाविडिन-लेपित डिटेक्शन सतह पर स्थिर किया जाता है। प्रवाह कक्ष तो फ्लोरोसेंटी लेबल एंटीबॉडी के साथ पूरक एक सेल मुक्त अनुवाद मिश्रण से भर जाता है । एमआरएनए अनुवाद के बाद एपिटोप अनुक्रम26, 27के लगभग 30-40 कोडन डाउनस्ट्रीम के लिए हुआहै,एपिटोप राइबोसोम निकास सुरंग से उभरता है और फ्लोरोसेंटली-लेबल एंटीबॉडी के साथ बातचीत करने के लिए सुलभ हो जाता है। यह बातचीत तेजी से होती है और एकल-अणु फ्लोरेसेंस इमेजिंग तकनीकों द्वारा इसका पता लगाने से सक्रिय सेल-मुक्त अनुवाद के दौरान एकल-अणु संकल्प के साथ अनुवाद काइनेटिक्स की ट्रैकिंग में सक्षम होता है। इस परख मोटे तौर पर टोपी पर निर्भर अनुवाद गतिज और उसके विनियमन के विट्रो अध्ययन में लाभ होना चाहिए, विशेष रूप से विट्रो परख में एक काम थोक के साथ प्रणालियों के लिए ।

इस एकल अणु परख की स्थापना के लिए एक शर्त एक काम थोक सेल मुक्त अनुवाद परख है, जो अनुवाद निकालने का उपयोग कर प्राप्त किया जा सकता है कि या तो व्यावसायिक रूप से उपलब्ध है या पहले वर्णित तरीकों के बाद तैयार28। यूकेरियोटिक अनुवाद अर्क को विभिन्न कोशिकाओं से प्राप्त किया जा सकता है, जिसमें फंगल, स्तनधारी और पौधे28शामिल हैं। इमेजिंग के लिए, इस परख के लिए एक TIRF माइक्रोस्कोप की आवश्यकता होती है जो ट्यूनेबल लेजर तीव्रता और घटना कोण, एक मोटराइज्ड नमूना चरण, एक मोटराइज्ड फ्लूइडिक्स सिस्टम और नमूना तापमान नियंत्रण उपकरण से लैस है। ऐसी आवश्यकताएं आधुनिक इन विट्रो एकल-अणु टीआईआरएफ प्रयोगों के लिए सामान्य हैं और इन्हें अलग ढंग से हासिल किया जा सकता है । यहां प्रस्तुत प्रयोग एक उद्देश्य प्रकार TIRF प्रणाली का उपयोग करता है जो व्यावसायिक रूप से उपलब्ध माइक्रोस्कोप, सॉफ्टवेयर और सहायक उपकरणों से बना है जो सभी सामग्री की तालिकामें सूचीबद्ध है ।

Protocol

1. रिपोर्टर एमआरएनए की पीढ़ी एक डीएनए ट्रांसक्रिप्शन टेम्पलेट को संशोधित करें जो एक “टैग” रिपोर्टर एमआरएनए(चित्रा 2 ए)के लिए डीएनए ट्रांसक्रिप्शन टेम्पलेट उत्पन्न करने के लिए एन-टर्मिनस …

Representative Results

वर्णित प्रोटोकॉल के बाद 3 ‘ अंत-सीमित रिपोर्टर एमआरएनए(चित्रा 1)के सक्रिय सेल-मुक्त अनुवाद के दौरान एकल अणु संकल्प के साथ नवजात एन-टर्मिनल-टैग किए गए पॉलीपेप्टाइड्स के साथ व्यक्तिगत एंटीबॉडी…

Discussion

विशिष्ट इन विट्रो टीआईआरएफ एकल-अणु प्रयोगों की तुलना में, यहां वर्णित परख के साथ एकल-अणु इमेजिंग सेल एक्सट्रैक्ट के उपयोग और फ्लोरोसेंटली लेबल एंटीबॉडी की उच्च एकाग्रता के कारण अतिरिक्त रूप से जट?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम को राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान [R01GM121847] द्वारा समर्थित किया गया था; मेमोरियल स्लोन केटरिंग कैंसर सेंटर (MSKCC) समर्थन अनुदान/कोर ग्रांट (P30 CA008748); और एमएसकेसीसी कार्यात्मक जीनोमिक्स पहल।

Materials

100X oil objective, N.A. 1.49 Olympus UAPON 100XOTIRF
Acryamide/bis (40%, 19:1) Bio-Rad 161-0144
Alkaline liquid detergent Decon 5332
Aminosilane (N-(2-Aminoethyl)-3-Aminopropyltrimethoxysilane) UCT Specialties, LLC A0700
Andor ixon Ultra DU 897V EMCCD Andor DU-897U-CSO-#BV
Andor Solis software Andor For controlling the Andor EMCCD
Band-pass filter Chroma 532/640/25
Band-pass filter Chroma NF03-405/488/532/635E-25
Biotin-PEG-SVA Laysan Bio Inc Biotin-PEG-SVA
Coenzyme A free acid Prolume 309-250
Coolterm software For controlling the syringe pump
Desktop computer Dell For controlling the microscope, camera, stage, and pump.
Dichroic mirror Semrock R405/488/532/635
Direct-zol RNA microprep 50RNX Fisher Scientific NC1139450
Dual-Luciferase Reporter Assay System Promega E1910
Epoxy Devcon 14250
Firefly luciferin D-Luciferin free acid Prolume 306-250
Glacial acetic acid Fisher Scientific BP1185500
Hydrogen perioxide Sigma-Aldrich 216763-500ML
Immersion oil Olympus Z-81226A Low auto-fluorescence
Luciferase Assay System Promega E1500
MEGASCRIPT T7 Transcription Kit Thermo fisher AM1334
Methanol Fisher Scientific MMX04751
Microscope Olympus IX83
Microscope slide Thermo Scientific 3048
Monoclonal anti-FLAG M2-Cy3 Sigma-Aldrich A9594
mPEG-SVA Laysan Bio Inc mPEG-SVA-5000
MS(PEG)4 Thermo Scientific 22341
NaCl (5M) Thermo Scientific AM9760G
No 1.5 microscope Cover glass Fisherband 12-544-C
Olympus Laser, 532nm 100mM Olympus digital Laser system CMR-LAS 532nm 100mW
Olympus TirfCtrl software Olympus For controlling the laser intensity and incident angle
Optical table TMC vibration control 63-563 With vibration isolation
Phenol chloroform isoamyl alcohol mix Sigma-Aldrich 77617-100ml
Pierce RNA 3' End Biotinylation Kit Thermo Scientific 20160
Potassium hydroxide pellets Sigma-Aldrich P1767-500G
Prior motorized XY translation stage Prior PS3J100
Prior PriorTest software Prior For controlling the Prior motorized stage
Recombinant RNasin RNase Inhibitor Promega N2515
Stage top Incubator In vivo scientific (world precision Instruments) 98710-1 With a custom built acrylic cage
Staining jar Fisher Scientific 08-817
Streptavidin Thermo Scientific 43-4301
Sulfuric acid Fisher Scientific A300212
SYBR green II Fisher Scientific S7564
Syringe Hamilton 1725RN
Syringe pump Harvard apparatus 55-3333
Tris (1M), pH = 7.0 Thermo Scientific AM9850G
Ultrasonic Bath Branson CPX1800H
Urea Sigma-Aldrich U5378-500G
Vaccinia Capping system New England Biolabs M2080S
Zymo-Spin IC Columns Zymo Research C1004

References

  1. Hinnebusch, A. G. The scanning mechanism of eukaryotic translation initiation. Annual Review of Biochemistry. 83, 779-812 (2014).
  2. Gebauer, F., Hentze, M. W. Molecular mechanisms of translational control. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 5, 827-835 (2004).
  3. Jackson, R. J., Hellen, C. U., Pestova, T. V. The mechanism of eukaryotic translation initiation and principles of its regulation. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 11, 113-127 (2010).
  4. Silvera, D., Formenti, S. C., Schneider, R. J. Translational control in cancer. Nature Reviews Cancer. 10, 254-266 (2010).
  5. Saini, A. K., Nanda, J. S., Lorsch, J. R., Hinnebusch, A. G. Regulatory elements in eIF1A control the fidelity of start codon selection by modulating tRNA(i)(Met) binding to the ribosome. Genes and Development. 24, 97-110 (2010).
  6. Algire, M. A., et al. Development and characterization of a reconstituted yeast translation initiation system. RNA. 8, 382-397 (2002).
  7. Amrani, N., Ghosh, S., Mangus, D. A., Jacobson, A. Translation factors promote the formation of two states of the closed-loop mRNP. Nature. 453, 1276-1280 (2008).
  8. Pisarev, A. V., Unbehaun, A., Hellen, C. U., Pestova, T. V. Assembly and analysis of eukaryotic translation initiation complexes. Methods in Enzymology. 430, 147-177 (2007).
  9. Hinnebusch, A. G. Structural insights into the mechanism of scanning and start codon recognition in eukaryotic translation initiation. Trends in Biochemical Sciences. 42, 589-611 (2017).
  10. Iwasaki, S., Ingolia, N. T. The growing toolbox for protein synthesis studies. Trends in Biochemical Sciences. 42, 612-624 (2017).
  11. Morisaki, T., et al. Real-time quantification of single RNA translation dynamics in living cells. Science. 352, 1425-1429 (2016).
  12. Wang, C., Han, B., Zhou, R., Zhuang, X. Real-time imaging of translation on single mRNA transcripts in live cells. Cell. 165, 990-1001 (2016).
  13. Wu, B., Eliscovich, C., Yoon, Y. J., Singer, R. H. Translation dynamics of single mRNAs in live cells and neurons. Science. 352, 1430-1435 (2016).
  14. Yan, X., Hoek, T. A., Vale, R. D., Tanenbaum, M. E. Dynamics of translation of single mRNA molecules in vivo. Cell. 165, 976-989 (2016).
  15. Wang, H., Sun, L., Gaba, A., Qu, X. An in vitro single-molecule assay for eukaryotic cap-dependent translation initiation kinetics. Nucleic Acids Research. 48, 6 (2020).
  16. Aitken, C. E., Lorsch, J. R. A mechanistic overview of translation initiation in eukaryotes. Nature Structural & Molecular Biology. 19, 568-576 (2012).
  17. Anderson, C. W., Straus, J. W., Dudock, B. S. Preparation of a cell-free protein-synthesizing system from wheat germ. Methods in Enzymology. 101, 635-644 (1983).
  18. Erickson, A. H., Blobel, G. Cell-free translation of messenger RNA in a wheat germ system. Methods in Enzymology. 96, 38-50 (1983).
  19. Iizuka, N., Najita, L., Franzusoff, A., Sarnow, P. Cap-dependent and cap-independent translation by internal initiation of mRNAs in cell extracts prepared from Saccharomyces cerevisiae. Molecular and Cellular Biology. 14, 7322-7330 (1994).
  20. Iizuka, N., Sarnow, P. Translation-competent extracts from Saccharomyces cerevisiae: effects of L-A RNA, 5′ cap, and 3′ poly(A) tail on translational efficiency of mRNAs. Methods. 11, 353-360 (1997).
  21. Jackson, R. J., Hunt, T. Preparation and use of nuclease-treated rabbit reticulocyte lysates for the translation of eukaryotic messenger RNA. Methods in Enzymology. 96, 50-74 (1983).
  22. Sachs, M. S., et al. Toeprint analysis of the positioning of translation apparatus components at initiation and termination codons of fungal mRNAs. Methods. 26, 105-114 (2002).
  23. Tarun, S. Z., Sachs, A. B. A common function for mRNA 5′ and 3′ ends in translation initiation in yeast. Genes and Development. 9, 2997-3007 (1995).
  24. Wang, Z., Sachs, M. S. Ribosome stalling is responsible for arginine-specific translational attenuation in Neurospora crassa. Molecular and Cellular Biology. 17, 4904-4913 (1997).
  25. Wang, Z., Sachs, M. S. Arginine-specific regulation mediated by the Neurospora crassa arg-2 upstream open reading frame in a homologous, cell-free in vitro translation system. Journal of Biological Chemistry. 272, 255-261 (1997).
  26. Fedyukina, D. V., Cavagnero, S. Protein folding at the exit tunnel. Annual Review of Biophysics. 40, 337-359 (2011).
  27. Jha, S., Komar, A. A. Birth, life and death of nascent polypeptide chains. Biotechnology Journal. 6, 623-640 (2011).
  28. Gregorio, N. E., Levine, M. Z., Oza, J. P. A user’s guide to cell-free protein synthesis. Methods and Protocols. 2, 24 (2019).
  29. Zhovmer, A., Qu, X. Proximal disruptor aided ligation (ProDAL) of kilobase-long RNAs. RNA Biology. 13, 613-621 (2016).
  30. Wu, C., Sachs, M. S. Preparation of a Saccharomyces cerevisiae cell-free extract for in vitro translation. Methods in Enzymology. 539, 17-28 (2014).
  31. Zhao, R., Rueda, D. RNA folding dynamics by single-molecule fluorescence resonance energy transfer. Methods. 49, 112-117 (2009).
  32. Chandradoss, S. D., et al. Surface passivation for single-molecule protein studies. Journal of Visualized Experiments. (86), e50549 (2014).
  33. Deindl, S., Zhuang, X. Monitoring conformational dynamics with single-molecule fluorescence energy transfer: applications in nucleosome remodeling. Methods in Enzymology. 513, 59-86 (2012).
  34. Greene, E. C., Wind, S., Fazio, T., Gorman, J., Visnapuu, M. L. DNA curtains for high-throughput single-molecule optical imaging. Methods in Enzymology. 472, 293-315 (2010).
  35. Gaba, A., Wang, Z., Krishnamoorthy, T., Hinnebusch, A. G., Sachs, M. S. Physical evidence for distinct mechanisms of translational control by upstream open reading frames. The EMBO Journal. 20, 6453-6463 (2001).
  36. Schaffer, B., Grogger, W., Kothleitner, G. Automated spatial drift correction for EFTEM image series. Ultramicroscopy. 102, 27-36 (2004).
  37. Wang, Y., et al. Localization events-based sample drift correction for localization microscopy with redundant cross-correlation algorithm. Optics Express. 22, 15982-15991 (2014).
  38. Sugar, J. D., Cummings, A. W., Jacobs, B. W., Robinson, B. D. A free Matlab script for spacial drift correction. Microscopy Today. 22, 40-47 (2014).
  39. Chenouard, N., et al. Objective comparison of particle tracking methods. Nature Methods. 11, 281-289 (2014).
  40. Meijering, E., Dzyubachyk, O., Smal, I. Methods for cell and particle tracking. Methods in Enzymology. 504, 183-200 (2012).
  41. Chung, S. H., Kennedy, R. A. Forward-backward non-linear filtering technique for extracting small biological signals from noise. Journal of Neuroscience Methods. 40, 71-86 (1991).
  42. Ensign, D. L., Pande, V. S. Bayesian detection of intensity changes in single molecule and molecular dynamics trajectories. Journal of Physical Chemistry B. 114, 280-292 (2010).
  43. Blanco, M., Walter, N. G. Analysis of complex single-molecule FRET time trajectories. Methods in Enzymology. 472, 153-178 (2010).
  44. Shuang, B., et al. Fast step transition and state identification (STaSI) for discrete single-molecule data analysis. The Journal of Physical Chemistry Letters. 5, 3157-3161 (2014).
  45. White, D. S., Goldschen-Ohm, M. P., Goldsmith, R. H., Chanda, B. Top-down machine learning approach for high-throughput single-molecule analysis. Elife. 9, 53357 (2020).
  46. Vassilenko, K. S., Alekhina, O. M., Dmitriev, S. E., Shatsky, I. N., Spirin, A. S. Unidirectional constant rate motion of the ribosomal scanning particle during eukaryotic translation initiation. Nucleic Acids Research. 39, 5555-5567 (2011).
  47. Zheng, Q., et al. Ultra-stable organic fluorophores for single-molecule research. Chemical Society Review. 43, 1044-1056 (2014).
  48. Aitken, C. E., Marshall, R. A., Puglisi, J. D. An oxygen scavenging system for improvement of dye stability in single-molecule fluorescence experiments. Biophysical Journal. 94, 1826-1835 (2008).
  49. Shi, X., Lim, J., Ha, T. Acidification of the oxygen scavenging system in single-molecule fluorescence studies: in situ sensing with a ratiometric dual-emission probe. Analytical Chemistry. 82, 6132-6138 (2010).
  50. Berthelot, K., Muldoon, M., Rajkowitsch, L., Hughes, J., McCarthy, J. E. Dynamics and processivity of 40S ribosome scanning on mRNA in yeast. Molecular Microbiology. 51, 987-1001 (2004).
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Citer Cet Article
Gaba, A., Wang, H., Qu, X. An In Vitro Single-Molecule Imaging Assay for the Analysis of Cap-Dependent Translation Kinetics. J. Vis. Exp. (163), e61648, doi:10.3791/61648 (2020).

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