Summary

Intravitreal injektion och kvantisering av infektionsparametrar i en mus modell av bakteriell endoftalmit

Published: February 06, 2021
doi:

Summary

Vi beskriver här en metod för intravitreal injektion och efterföljande bakteriell kvantifiering i mus modell av bakteriell endophthalmitis. Detta protokoll kan utökas för mätning av värd immunsvar och bakterie- och värdgenuttryck.

Abstract

Intraokulära bakterieinfektioner är en fara för synen. Forskare använder djurmodeller för att undersöka värd- och bakteriefaktorer och immunsvarsvägar i samband med infektion för att identifiera livskraftiga terapeutiska mål och för att testa läkemedel för att förhindra blindhet. Den intravitreal injektion tekniken används för att injicera organismer, droger, eller andra ämnen direkt i glaskroppen hålighet i det bakre segmentet av ögat. Här visade vi denna injektion teknik för att inleda infektion i mus öga och tekniken för kvantifiera intraokulära bakterier. Bacillus cereus odlades i hjärnan hjärta infusion flytande media för 18 timmar och resuspended till en koncentration 100 koloni bildar enheter (CFU)/0.5 μL. En C57BL/6J mus var sövda med hjälp av en kombination av ketamin och xylazine. Med hjälp av en picoliter mikroinjektor och glas kapillär nålar, 0,5 μL av Bacillus suspensionen injicerades i mitten glaskroppen av musögat. Det kontralaterala kontrollögat injicerades antingen med sterila medier (kirurgisk kontroll) eller injicerades inte (absolut kontroll). Vid 10 timmar efter infektion, möss avlivades, och ögon skördades med sterila kirurgiska pincett och placeras i ett rör som innehåller 400 μL steril PBS och 1 mm sterila glaspärlor. För ELISAs eller myeloperoxidasanalyser tillsattes proteinashämmare i rören. För RNA-extraktion lades lämplig lysbuffert till. Ögon var homogeniserade i en vävnad homogenisator för 1-2 minuter. Homogenates var serieutspädd 10-faldig i PBS och spår utspädd på agar plattor. Återstoden av homogenatesna lagrades på -80 °C för extra assays. Plattor inkuberades i 24 timmar och CFU per öga kvantifierades. Dessa tekniker resulterar i reproducerbara infektioner i musögon och underlättar kvantisering av livskraftiga bakterier, värden immunsvar, och omics av värd och bakteriell genuttryck.

Introduction

Bakteriell endoftalmit är en förödande infektion som orsakar inflammation, och, om den inte behandlas på rätt sätt, kan resultera i förlust av syn eller blindhet. Endoftalmitis resultat från inträde av bakterier i det inre av ögat1,2,3,4,5. En gång i ögat, bakterier replikera, producera toxiner och andra skadliga faktorer, och kan orsaka irreversibla skador på känsliga näthinnans celler och vävnader. Okulära skador kan också orsakas av inflammation, på grund av aktivering av inflammatoriska vägar som leder till inflammatoriska celler tillströmning i det inre av ögat1,5,6. Endoftalmit kan uppstå efter intraokulär kirurgi (postoperativ), en genomträngande skada på ögat (posttraumatiskt), eller från metastaserande spridning av bakterier in i ögat från en annan anatomisk plats (endogen)7,8,9,10. Behandlingar för bakteriell endoftalmit inkluderar antibiotika, antiinflammatoriska läkemedel, eller kirurgiskt ingrepp3,4,11. Även med dessa behandlingar, syn eller ögat i sig kan gå förlorade. Den visuella prognosen efter bakteriell endoftalmit varierar i allmänhet beroende på behandlingseffektiviteten, synskärpan vid presentationen och den infekterande organismens virulens.

Bacillus cereus (B. cereus) är en av de stora bakteriella patogener som orsakar posttraumatisk endoftalmit7,12. En majoritet av B. cereus endoftalmitis fall har en snabb kurs, vilket kan resultera i blindhet inom några dagar. Kännetecknen för B. cereus endophthalmitis inkluderar snabbt utvecklas intraokulära inflammation, ögonsmärta, snabb förlust av synskärpa, och feber. B. cereus växer snabbt i ögat jämfört med andra bakterier som vanligen orsakarögoninfektioner 2,4,12 och besitter många virulensfaktorer. Därför fönstret för framgångsrik terapeutisk intervention är relativt kort1, 2, 3, 4, 5, 6 , 7, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25. Behandlingar för denna infektion är oftast framgångsrika vid behandling av endoftalmit orsakas av andra mindre virulent patogener, men B. cereus endophthalmitis vanligen resulterar i större än 70% av patienter som lider av betydande synförlust. Omkring 50% av dessa patienter genomgår urtagning eller enucleation av det infekterade ögat7,16,22,23. Den destruktiva och snabba karaktär B. cereus endoftalmitis kräver omedelbar och korrekt behandling. De senaste framstegen när det gäller att urskilja de underliggande mekanismerna för sjukdomsutveckling har identifierat potentiella mål för intervention19,26,27. Experimentell mus modeller av B. cereus endoftalmitis fortsätta att vara användbara i att urskilja mekanismerna för infektion och testa potentiella therapeutics som kan förhindra synförlust.

Experimentell intraokulär infektion av möss med B. cereus har varit en instrumental modell för att förstå bakterie- och värdfaktorer, liksom deras interaktioner, under endoftalmitis28. Denna modell härmar en posttraumatisk eller postoperativ händelse, där bakterier införs i ögat under en skada. Denna modell är mycket reproducerbar och har varit användbar för att testa experimentella terapier och tillhandahålla data för förbättringar i standard av vård1,6,19,29,30. Liksom många andra infektionsmodeller möjliggör denna modell oberoende kontroll av många parametrar för infektion och möjliggör effektiv och reproducerbar undersökning av infektionsutfall. Studier i en liknande modell i kaniner under de senaste decennierna har undersökt effekterna av B. cereus virulens faktorer i ögat2,4,13,14,31. Genom att injicera B. cereus mutantstammar som saknar individuella eller flera virulensfaktorer kan dessa virulensfaktorers bidrag till sjukdomsgradens svårighetsgrad mätas genom utfall som koncentrationen av bakterier vid olika timmar efterinfektion eller förlusten av synfunktionen13,14,27,31,32. Dessutom har värdfaktorer undersökts i denna modell genom att infektera knockout mus stammar saknar specifika inflammatoriska värd faktorer26,29,33,34,35. Modellen är också användbar för att testa potentiella behandlingar för denna sjukdom genom att injicera nya föreningar i ögat efter infektion30,36. I detta manuskript beskriver vi ett utförligt protokoll som inkluderar infekterar en mus öga med B. cereus, skörd ögat efter infektion, kvantifiera intraokulära bakteriell belastning och bevara exemplar för att assay ytterligare parametrar för sjukdomens allvarlighetsgrad.

Protocol

Alla förfaranden utfördes efter rekommendationerna i handledningen för vård och användning av försöksdjur och Föreningen för forskning i syn och oftalmologi uttalande för användning av djur i oftalmisk och vision forskning. Protokollen godkändes av Institutional Animal Care and Use Committee vid University of Oklahoma Health Sciences Center (protokollnummer 15-103, 18-043 och 18-087). 1. Sterila glasnålar Slå på nålpipettdragaren. Justera <s…

Representative Results

Generera en reproducerbar inokulat och noggrannhet av intravitreal injektion förfarandet är viktiga steg i utvecklingen av modeller av mikrobiell endoftalmit. Här, Vi visat den intravitreal injektion förfarande med gram-positiva Bacillus cereus. Vi injicerade 100 CFU/0,5 μL av B. cereus i mitten av glaskroppen av fem C57BL6-möss. Efter 10 h postinfection observerade vi intraokulära tillväxt av B. cereus till cirka 1,8 x 105 CFU/eye. Figur 1 visar…

Discussion

Även med tillgången på potenta antibiotika, antiinflammatoriska läkemedel, och vitrectomy kirurgi, kan bakteriell endoftalmit blind en patient. Kliniska studier har varit användbara i att studera endophthalmitis; emellertid, experimentella modeller av endophthalmitis ge snabb och reproducerbara resultat som kan översättas till framsteg i standard av vård, vilket resulterar i bättre visuella resultatet för patienter.

Musögats glaskroppsvolym är cirka 7 μL40….

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna tackar Dr Feng Li och Mark Dittmar (OUHSC P30 Live Animal Imaging Core, Dean A. McGee Eye Institute, Oklahoma City, OK, USA) för deras hjälp. Vår forskning har fått stöd av National Institutes of Health bidrag R01EY028810, R01EY028066, R01EY025947, och R01EY024140. Vår forskning har också stöttats av P30EY21725 (NIH CORE-anslag för Live Animal Imaging and Analysis, Molekylärbiologi och Cellulär avbildning). Vår forskning har också fått stöd av NEI Vision Science Pre-doctoral Trainee program 5T32EY023202, en Presbyterian Health Foundation Research Support bidrag, och ett obegränsat bidrag till Dean A. McGee Eye Institute från forskning för att förhindra blindhet.

Materials

2-20 µL pipette RANIN L0696003G NA
37oC Incubator Fisher Scientific 11-690-625D NA
Bacto Brain Heart Infusion BD 90003-032 NA
Cell Microinjector MicroData Instrument, Inc. PM2000 NA
Fine tip forceps Thermo Fisher Scientific 12-000-122 NA
Glass beads 1.0 mm BioSpec 11079110 NA
Incubator Shaker New Brunswick Scientific NB-I2400 NA
Microcapillary Pipets 5 Microliters Kimble 71900-5 NA
Micro-Pipette Beveler Sutter Instrument Co. BV-10 NA
Microscope Axiostar Plus Zeiss NA
Microscope OPMI Lumera Zeiss NA
Mini-Beadbeater-16 BioSpec Model 607 NA
Multichannel pipette 30-300 µL Biohit 15626090 NA
Multichannel pipette 5-100 µL Biohit 9143724 NA
Needle/Pipette Puller Kopf 730 NA
PBS GIBCO 1897315 Molecular grade
Protease Inhibitor Cocktail Roche 4693159001 Molecular grade
Reverse action forceps Katena K5-8228 NA

References

  1. Ramadan, R. T., Ramirez, R., Novosad, B. D., Callegan, M. C. Acute inflammation and loss of retinal architecture and function during experimental Bacillus endophthalmitis. Current Eye Research. 31 (11), 955-965 (2006).
  2. Callegan, M. C., Booth, M. C., Jett, B. D., Gilmore, M. S. Pathogenesis of gram-positive bacterial endophthalmitis. Infection and Immunity. 67 (7), 3348-3356 (1999).
  3. Durand, M. L. Bacterial and Fungal Endophthalmitis. Clinical Microbiology Reviews. 30 (3), 597-613 (2017).
  4. Callegan, M. C., Engelbert, M., Parke, D. W., Jett, B. D., Gilmore, M. S. Bacterial endophthalmitis: Epidemiology, therapeutics, and bacterium-host interactions. Clinical Microbiology Reviews. 15 (1), 111-124 (2002).
  5. Livingston, E. T., Mursalin, M. H., Callegan, M. C. A Pyrrhic Victory: The PMN Response to Ocular Bacterial Infections. Microorganisms. 7 (11), 537 (2019).
  6. Ramadan, R. T., Moyer, A. L., Callegan, M. C. A role for tumor necrosis factor-alpha in experimental Bacillus cereus endophthalmitis pathogenesis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49 (10), 4482-4489 (2008).
  7. Davey, R. T., Tauber, W. B. Posttraumatic endophthalmitis: The emerging role of Bacillus cereus infection. Reviews of Infectious Dissease. 9 (1), 110-123 (1987).
  8. Ramappa, M., et al. An outbreak of acute post-cataract surgery Pseudomonas sp. endophthalmitis caused by contaminated hydrophilic intraocular lens solution. Ophthalmology. 119 (3), 564-570 (2012).
  9. Coburn, P. S., et al. Bloodstream-To-Eye Infections Are Facilitated by Outer Blood-Retinal Barrier Dysfunction. PLoS One. 11 (5), 015560 (2016).
  10. Ness, T., Pelz, K., Hansen, L. L. Endogenous endophthalmitis: Microorganisms, disposition and prognosis. Acta Ophthalmologica Scandinavica. 85 (8), 852-856 (2007).
  11. Novosad, B. D., Callegan, M. C. Severe bacterial endophthalmitis: Towards improving clinical outcomes. Expert Review of Ophthalmology. 5 (5), 689-698 (2010).
  12. Mursalin, M. H., Livingston, E. T., Callegan, M. C. The cereus matter of Bacillus endophthalmitis. Experimental Eye Research. 193, 107959 (2020).
  13. Callegan, M. C., et al. Relationship of plcR-regulated factors to Bacillus endophthalmitis virulence. Infection and Immunity. 71 (6), 3116-3124 (2003).
  14. Beecher, D. J., Pulido, J. S., Barney, N. P., Wong, A. C. Extracellular virulence factors in Bacillus cereus endophthalmitis: Methods and implication of involvement of hemolysin BL. Infection and Immunity. 63 (2), 632-639 (1995).
  15. Callegan, M. C., et al. Contribution of membrane-damaging toxins to Bacillus endophthalmitis pathogenesis. Infection and Immunity. 70 (10), 5381-5389 (2002).
  16. Cowan, C. L., Madden, W. M., Hatem, G. F., Merritt, J. C. Endogenous Bacillus cereus panophthalmitis. Annals of Ophthalmology. 19 (2), 65-68 (1987).
  17. Callegan, M. C., et al. Virulence factor profiles and antimicrobial susceptibilities of ocular Bacillus isolates. Current Eye Research. 31 (9), 693-702 (2006).
  18. Callegan, M. C., et al. Bacillus endophthalmitis: Roles of bacterial toxins and motility during infection. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 46 (9), 3233-3238 (2005).
  19. Mursalin, M. H. Bacillus S-layer-mediated innate interactions during endophthalmitis. Frontiers in Immunology. 11 (215), (2020).
  20. Moyer, A. L., Ramadan, R. T., Novosad, B. D., Astley, R., Callegan, M. C. Bacillus cereus-induced permeability of the blood-ocular barrier during experimental endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 50 (8), 3783-3793 (2009).
  21. Callegan, M. C., et al. Efficacy of vitrectomy in improving the outcome of Bacillus cereus endophthalmitis. Retina. 31 (8), 1518-1524 (2011).
  22. David, D. B., Kirkby, G. R., Noble, B. A. Bacillus cereus endophthalmitis. British Journal of Ophthalmology. 78 (7), 577-580 (1994).
  23. Vahey, J. B., Flynn, H. W. Results in the management of Bacillus endophthalmitis. Ophthalmic Surgery. 22 (11), 681-686 (1991).
  24. Wiskur, B. J., Robinson, M. L., Farrand, A. J., Novosad, B. D., Callegan, M. C. Toward improving therapeutic regimens for Bacillus endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49 (4), 1480-1487 (2008).
  25. Alfaro, D. V., et al. Experimental Bacillus cereus post-traumatic endophthalmitis and treatment with ciprofloxacin. British Journal of Ophthalmology. 80 (8), 755-758 (1996).
  26. Coburn, P. S., et al. TLR4 modulates inflammatory gene targets in the retina during Bacillus cereus endophthalmitis. BMC Ophthalmology. 18 (1), 96 (2018).
  27. Mursalin, M. H., et al. S-layer Impacts the Virulence of Bacillus in Endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (12), 3727-3739 (2019).
  28. Astley, R. A., Coburn, P. S., Parkunan, S. M., Callegan, M. C. Modeling intraocular bacterial infections. Progress in Retinal and Eye Research. 54, 30-48 (2016).
  29. Parkunan, S. M., et al. CXCL1, but not IL-6, significantly impacts intraocular inflammation during infection. Journal of Leukocyte Biology. 100 (5), 1125-1134 (2016).
  30. LaGrow, A. L., et al. A Novel Biomimetic Nanosponge Protects the Retina from the Enterococcus faecalis Cytolysin. mSphere. 2 (6), 00335 (2017).
  31. Beecher, D. J., Olsen, T. W., Somers, E. B., Wong, A. C. Evidence for contribution of tripartite hemolysin BL, phosphatidylcholine-preferring phospholipase C, and collagenase to virulence of Bacillus cereus endophthalmitis. Infection and Immunity. 68 (9), 5269-5276 (2000).
  32. Callegan, M. C., et al. The role of pili in Bacillus cereus intraocular infection. Experimental Eye Research. 159, 69-76 (2017).
  33. Miller, F. C., et al. Targets of immunomodulation in bacterial endophthalmitis. Progress in Retinal and Eye Research. 73, 100763 (2019).
  34. Parkunan, S. M., Astley, R., Callegan, M. C. Role of TLR5 and flagella in Bacillus intraocular infection. PLoS One. 9 (6), 100543 (2014).
  35. Parkunan, S. M., et al. Unexpected roles for Toll-Like receptor 4 and TRIF in intraocular infection with Gram-positive bacteria. Infection and Immunity. 83 (10), 3926-3936 (2015).
  36. Coburn, P. S., et al. Disarming Pore-Forming Toxins with Biomimetic Nanosponges in Intraocular Infections. mSphere. 4 (3), 00262-00319 (2019).
  37. LaGrow, A., et al. Biomimetic nanosponges augment gatifloxacin in reducing retinal damage during experimental MRSA endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (9), 4632 (2019).
  38. Novosad, B. D., Astley, R. A., Callegan, M. C. Role of Toll-like receptor (TLR) 2 in experimental Bacillus cereus endophthalmitis. PLoS One. 6 (12), 28619 (2011).
  39. Jett, B. D., Hatter, K. L., Huycke, M. M., Gilmore, M. S. Simplified agar plate method for quantifying viable bacteria. Biotechniques. 23 (4), 648-650 (1997).
  40. Yu, D. Y., Cringle, S. J. Oxygen distribution in the mouse retina. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (3), 1109-1112 (2006).
  41. Beyer, T. L., O’Donnell, F. E., Goncalves, V., Singh, R. Role of the posterior capsule in the prevention of postoperative bacterial endophthalmitis: experimental primate studies and clinical implications. British Journal of Ophthalmology. 69 (11), 841-846 (1985).
  42. Tucker, D. N., Forster, R. K. Experimental bacterial endophthalmitis. Archives of Ophthalmology. 88 (6), 647-649 (1972).
  43. Alfaro, D. V., et al. Experimental pseudomonal posttraumatic endophthalmitis in a swine model. Treatment with ceftazidime, amikacin, and imipenem. Retina. 17 (2), 139-145 (1997).
  44. Silverstein, A. M., Zimmerman, L. E. Immunogenic endophthalmitis produced in the guinea pig by different pathogenetic mechanisms. American Journal of Ophthalmology. 48 (5), 435-447 (1959).
  45. Ravindranath, R. M., Hasan, S. A., Mondino, B. J. Immunopathologic features of Staphylococcus epidermidis-induced endophthalmitis in the rat. Current Eye Research. 16 (10), 1036-1043 (1997).
  46. Kumar, A., Singh, C. N., Glybina, I. V., Mahmoud, T. H., Yu, F. S. Toll-like receptor 2 ligand-induced protection against bacterial endophthalmitis. The Journal of Infectious Diseases. 201 (2), 255-263 (2010).
  47. Mylonakis, E., et al. The Enterococcus faecalis fsrB gene, a key component of the fsr quorum-sensing system, is associated with virulence in the rabbit endophthalmitis model. Infection and Immunity. 70 (8), 4678-4681 (2002).
  48. Sanders, M. E., et al. The Streptococcus pneumoniae capsule is required for full virulence in pneumococcal endophthalmitis. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (2), 865-872 (2011).
  49. Hunt, J. J., Astley, R., Wheatley, N., Wang, J. T., Callegan, M. C. TLR4 contributes to the host response to Klebsiella intraocular infection. Current Eye Research. 39 (8), 790-802 (2014).
check_url/fr/61749?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Mursalin, M. H., Livingston, E., Coburn, P. S., Miller, F. C., Astley, R., Callegan, M. C. Intravitreal Injection and Quantitation of Infection Parameters in a Mouse Model of Bacterial Endophthalmitis. J. Vis. Exp. (168), e61749, doi:10.3791/61749 (2021).

View Video