Summary

Blootstelling aan sigarettenrook bij muizen met behulp van een inhalatiesysteem voor het hele lichaam

Published: October 22, 2020
doi:

Summary

Dit protocol toont de studie van de pathofysiologische effecten van sigarettenrook (CS) met een in eigen huis gebouwd inhalatiesysteem (WBI) voor het hele lichaam (WBIS). Dit systeem kan dieren blootstellen aan CS onder gecontroleerde herhaalbare omstandigheden voor onderzoek naar CS-gemedieerde effecten op longemfyseem en hematopoiese.

Abstract

Bijna 14% van de volwassenen in de Verenigde Staten zou in 2018 sigaretten roken. De effecten van sigarettenrook (CS) op longen en hart- en vaatziekten zijn uitgebreid bestudeerd, maar de impact van CS in andere weefsels en organen zoals bloed en beenmerg blijft onvolledig gedefinieerd. Het vinden van het juiste systeem om de effecten van CS bij knaagdieren te bestuderen kan onbetaalbaar zijn en vereist de aankoop van commercieel beschikbare systemen. Daarom wilden we een betaalbaar, betrouwbaar en veelzijdig systeem bouwen om de pathologische effecten van CS bij muizen te bestuderen. Deze opstelling van het hele lichaam inhalatieblootstellingssysteem (WBIS) bootst het ademen en puffen van sigaretten na door afwisselend blootstelling aan CS en schone lucht. Hier laten we zien dat dit doe-het-zelf (DIY) systeem luchtwegontsteking en longemfyseem veroorzaakt bij muizen na 4 maanden blootstelling aan sigarettenrook. De effecten van inademing van cs (WBI) in het hele lichaam op hematopoëtische stamcellen en voorlopercellen (HSPCs) in het beenmerg met behulp van dit apparaat worden ook aangetoond.

Introduction

Het roken van sigaretten blijft een van de belangrijkste oorzaken van vermijdbare ziekten in de VS, ondanks de gestage daling van het aantal volwassenen dat sigaretten rookt in de afgelopen 50-60 jaar1. Het is algemeen bekend dat roken verband houdt met meerdere ziekten van de longen en het bloed, waaronder chronische obstructieve longziekte (COPD), een groep ziekten die emfyseem en chronische bronchitis2,3,4omvat . Volgens het Center for Disease Control (CDC) was COPD in 2014 de derde belangrijkste doodsoorzaak in de Verenigde Staten met meer dan 15 miljoen Amerikanen die aan deze ziekte leden5.

CS is onlangs ook geassocieerd met een hoger risico op het ontwikkelen van klonale hematopoiese (CH)6,7, een aandoening waarbij een enkele hematopoëtische stamcel onevenredig een groot percentage van iemands perifere bloed produceert. Deze bevinding wijst op een mogelijk verband tussen roken en beenmergfunctie. Gezien de wijdverbreide en zeer significante gevolgen voor de gezondheid van CS en gezien het feit dat muriene modellen van ziekten een hoeksteen zijn van de vooruitgang in biomedisch onderzoek, is het nuttig om efficiënte en betaalbare systemen te ontwikkelen om CS bij muizen te modelleren.

Hier bieden we een stapsgewijze handleiding voor het bouwen van een betaalbaar systeem voor de behandeling en studie van de in vivo effecten van CS op longemfyseem en beenmerghomeostase. De assemblage van deze apparatuur vereist niet dat de gebruiker gespecialiseerde kennis heeft en maakt dus zelfmontage mogelijk.

Protocol

Alle dieren die betrokken zijn bij de experimenten en de ontwikkeling van deze techniek zijn onder ons diergebruiksprotocol goedgekeurd door de Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) en onder Baylor College of Medicine en MD Anderson-instellingen die zijn geaccrediteerd door de Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care (AAALAC). 1. Bouw van het apparaat Montage van de luchtcompressor met het ventielsysteem. Sluit de…

Representative Results

Een van de belangrijkste kenmerken van CS-blootstelling is emfyseem dat wordt gekenmerkt door de schade en vernietiging van luchtzakken (longblaasjes) in de long. De eerste experimenten richtten zich dus op het vermogen van het doe-het-zelfsysteem om emfysemateuze veranderingen in de longen van vrouwelijke muizen uit te lokken bij herhaalde blootstelling van het hele lichaam aan CS. Het CS-doseringsschema werd gekozen op basis van onze eerdere publicaties waarin we het hier beschreven doe-het-zelfsysteem gebruikten om mu…

Discussion

Hier verstrekken we de informatie die nodig is voor de bouw van een apparaat voor WBIS van muizen aan CS. Na installatie van het systeem is het van cruciaal belang dat onderzoekers het systeem kalibreren op basis van de geleverde dosis nicotine of cotinine bij dieren. Het apparaat bevat een timer en manometers die kunnen worden gebruikt om het rookwolkvolume, de rookfrequentie, de gecombineerde rookblootstellingsperiode en rustintervallen die dieren tussen elke sigaret ontvangen, aan te passen. Bovendien kan het werkelij…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

AR, XH en PE werden ondersteund door NIH-subsidie R01HL140398 en een Gilson Longenbaugh Foundation-subsidie. DEMM en KK werden ondersteund door de NIH-subsidies R01HL136333 en R01HL134880 (KYK) en een subsidie van de Helis Medical Research Foundation. DEMM wordt ook ondersteund door de Howard Hughes Medical Institute (HHMI) Gilliam Fellowship for Advanced Study. PE wordt ook ondersteund door training in precision environmental health sciences NIEHS T32 ES027801 Fellowship Program. JC en MF worden ondersteund door Tobacco Research Funds van het Department of Epigenetics and Molecular Carcinogenesis en door het Center for Epigenetics (Scholar Award to MF) bij MD Anderson. FK en YZ worden ondersteund door NIH-subsidies R01 ES029442-01 en R01 AI135803-01 en VA Merit-subsidie CX000104. Dit project werd ondersteund door de Cytometrie- en Celsorteerkern van het Baylor College of Medicine met financiering van de CPRIT Core Facility Support Award (CPRIT-RP180672), de NIH (CA125123 en RR024574) en de hulp van Joel M. Sederstrom.

Materials

1 in fastener Lowes 756990
1/4 in Barbed Y connector VWR 89093-282
1/4 in straight tubing connector VWR 62866-378
1/8 hex nipple Lowes 877221
1/8 in threaded coupling fitting Lowes 877208
1/8 in threaded male adapter nipple fitting Lowes 877243
10/32 (M) threaded straight connector Bimba EB60
3/4 in 90-degree elbow CPVC fitting Lowes 22643
3/4 in chlorinated polyvinyl chloride (CPVC) pipe Lowes 23814
3/4 in CPVC cap Lowes 23773
3/4 in CPVC Drip irrigation female adapter Lowes 194629
3/4 in diameter CPVC male adapter Lowes 23766
8.5 L airtight container with lid (11.25in x 7.75in x 6 in) Komax N/A Listed as "Komax Biokips Large Bread Box | (280-oz) Large Storage Container"
Glass drain tube (1.75 in diameter x 8 in length) KIMAX 6500
Isonic Solenoid Valves Bimba V2A02-AW1
Marlboro Red 100's Marlboro N/A
Oxygen swivel barbed connector Global Medical Solutions RES002
Panasonic Timer LT4H-W Panasonic LT4HW Item was built-in the valve controller by Shepherd Controls & Associates
Pressure regulator Allied Electronics and Automation 70600552 Also listed as "Norgren R07-100-RGKA"
Rubber stopper # 1 (one hole) VWR 59581-163
Rubber stopper # 8.5 (one hole) VWR 59581-389
Scireq inExpose system Scireq and Emka Technologies N/A Commercial system used for comparison with our DIY WBIS
Straight barbed fitting (8mm opening) VWR 10028-872
Thread Sealant tape Lowes 1184243
Threaded port adaptor Bimba P1SA1
Timeter Aridyne 2000 Medical Air Compressor MFI Medical AHC-TE20
Timeter flowmeter Allied Healthcare Products 15006-03YP2 Also listed as "Puritan Air Meter"
Valve Control system Shepherd Controls and Associates N/A Company custom designed the valve control system for this model.
Vinyl pipes Vitality Medical RES3007

References

  1. Current Cigarette Smoking Among Adults in the United States. Center for Disease Control and Prevention Available from: https://www.cdc.gov/tobacco/data_statistics/fact_sheets/adult_data/cig_smoking/index.htm (2018)
  2. Salvi, S. Tobacco smoking and evironmental risk factors for chronic obstructive pulmonary disease. Clinics in Chest Medicine. 35, 17-27 (2014).
  3. Sunyer, J., et al. Longitudinal relation between smoking and white blood cells. American Journal of Epidemiology. 144, 734-741 (1996).
  4. Freedman, D. S., Flanders, D., Barboriak, J. J., Malarcher, A. M., Gates, L. Cigarette smoking and leukocyte subpopulations in men. Annals of Epidemiology. 6, 299-306 (1996).
  5. Chronic Obstructive Pulmonary Disease (COPD). Center for Disease Control and Prevention Available from: https://www.cdc.gov/copd/basics-about.html (2019)
  6. Genovese, G., et al. Clonal hematopoiesis and blood-cancer risk inferred from blood DNA sequence. New England Journal of Medicine. , (2014).
  7. Steensma, D. P. Clinical implications of clonal hematopoiesis. Mayo Clinic Proceedings. 93, 1122-1130 (2018).
  8. Tobacco. Federal Trade Comission Available from: https://www.ftc.gov/tips-advice/business-center/selected-industries/tobacco (2020)
  9. 3R4F Cigarettes. University of Kentucky – College of Agriculture Food and Environment Available from: https://ctrp.uky.edu/products/gallery/Reference (2020)
  10. Shan, M., et al. Cigarette smoke induction of osteopontin (SPP1) mediates T H 17 inflammation in human and experimental emphysema. Science Translational Medicine. 4, 1-10 (2012).
  11. Yuan, X., et al. Activation of C3a receptor is required in cigarette smoke-mediated emphysema. Nature Mucosal Immunology. 8, 874-885 (2014).
  12. Yuan, X., et al. Cigarette smoke – induced reduction of C1q promotes emphysema. JCI Insight. 4, 1-17 (2019).
  13. Shan, M., et al. Agonistic induction of PPAR g reverses cigarette smoke – induced emphysema Find the latest version: Agonistic induction of PPAR γ reverses cigarette smoke – induced emphysema. Journal of Clinical Investigation. 124, 1371-1381 (2014).
  14. Hong, M. J., et al. Protective role of gd T cells in cigarette smoke and influenza infection. Nature Mucosal Immunology. 11, 834-908 (2018).
  15. Kim, M., et al. Cigarette smoke induces intestinal inflammation via a Th17 cell-neutrophil axis. Frontiers in Immunology. 10, 1-11 (2019).
  16. Lu, W., et al. The microRNA miR-22 inhibits the histone deacetylase HDAC4 to promote T H 17 cell – dependent emphysema. Nature Immunology. 16, 1185-1194 (2015).
  17. Hendrix, A. Y., Kheradmand, F. . The Role of Matrix Metalloproteinases in Development, Repair, and Destruction of the Lungs. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 148, (2017).
  18. Siggins, R. W., Hossain, F., Rehman, T., Melvan, J. N., Welsh, D. A. Cigarette smoke alters the hematopoietic stem cell niche. Med Sci. 2, 37-50 (2014).
  19. Kheradmand, F., You, R., Gu, B. H., Corry, D. B. Cigarette smoke and DNA cleavage promote lung inflammation and emphysema. Transactions of the American Clinical and Climatological Association. 128, 222-233 (2017).
  20. Ha, M. A., et al. Menthol attenuates respiratory irritation and elevates blood cotinine in cigarette smoke exposed mice. PLoS ONE. , 1-16 (2015).
  21. Moreno-Gonzalez, I., Estrada, L. D., Sanchez-Mejias, E., Soto, C. Smoking exacerbates amyloid pathology in a mouse model of Alzheimer’s disease. Nature Communications. 4, 1-10 (2013).
  22. Madison, M. C., et al. Electronic cigarettes disrupt lung lipid homeostasis and innate immunity independent of nicotine. Journal of Clinical Investigation. 129, 4290-4304 (2019).
check_url/fr/61793?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Morales-Mantilla, D. E., Huang, X., Erice, P., Porter, P., Zhang, Y., Figueroa, M., Chandra, J., King, K. Y., Kheradmand, F., Rodríguez, A. Cigarette Smoke Exposure in Mice using a Whole-Body Inhalation System. J. Vis. Exp. (164), e61793, doi:10.3791/61793 (2020).

View Video