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Article de méthode

Fabrication de réseaux de microtissus cardiaques 3D à l’aide de cardiomyocytes, de fibroblastes cardiaques et de cellules endothéliales dérivés de l’iPSC humain

7.1K vues

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DOI :

10.3791/61879

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14 mars 2021

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Dans cet article

Résumé

Nous décrivons ici une méthodologie facile à utiliser pour générer des réseaux de microtissus cardiaques auto-assemblés en 3D composés de cardiomyocytes, de fibroblastes cardiaques et de cellules endothéliales prédé différenciés dérivés de cellules souches pluripotentes induites par l’homme. Cette technique conviviale et nécessitant des cellules basses pour générer des microtissus cardiaques peut être mise en œuvre pour la modélisation de la maladie et les premiers stades du développement de médicaments.

Résumé

La génération de cardiomyocytes humains (CM), de fibroblastes cardiaques (FC) et de cellules endothéliales (CE) à partir de cellules souches pluripotentes induites (CSPi) a fourni une occasion unique d’étudier l’interaction complexe entre différents types de cellules cardiovasculaires qui stimulent le développement tissulaire et la maladie. Dans le domaine des modèles de tissus cardiaques, plusieurs approches tridimensionnelles (3D) sophistiquées utilisent des cardiomyocytes dérivés de cellules souches pluripotentes induites (iPSC-CM) pour imiter la pertinence physiologique et l’environnement tissulaire natif avec une combinaison de matrices extracellulaires et de réticulants. Cependant, ces systèmes sont complexes à fabriquer sans expertise en microfabrication et nécessitent plusieurs semaines pour s’auto-assembler. Plus important encore, beaucoup de ces systèmes manquent de cellules vasculaires et de fibroblastes cardiaques qui représentent plus de 60% des non-myocytes dans le cœur humain. Nous décrivons ici la dérivation des trois types de cellules cardiaques à partir des CSPi pour fabriquer des microtissus cardiaques. Cette technique de moulage de réplique facile permet la culture de microtissus cardiaques dans des plaques de culture cellulaire multi-puits standard pendant plusieurs semaines. La plate-forme permet un contrôle défini par l’utilisateur sur la taille des microtissus en fonction de la densité d’ensemencement initiale et nécessite moins de 3 jours pour l’auto-assemblage afin d’obtenir des contractions observables du microtissu cardiaque. En outre, les microtissus cardiaques peuvent être facilement digérés tout en maintenant une viabilité cellulaire élevée pour l’interrogation unicellulaire grâce à l’utilisation de la cytométrie en flux et du séquençage de l’ARN unicellulaire (scRNA-seq). Nous envisageons que ce modèle in vitro de microtissus cardiaques aidera à accélérer les études de validation dans la découverte de médicaments et la modélisation de la maladie.

Introduction

La découverte de médicaments et la modélisation des maladies dans le domaine de la recherche cardiovasculaire sont confrontées à plusieurs défis en raison d’un manque d’échantillons cliniquement pertinents et d’outils translationnels inadéquats1. Les modèles précliniques très complexes ou les modèles unicellulaires in vitro trop simplifiés ne présentent pas de conditions physiopathologiques reproductibles. Par conséquent, plusieurs plates-formes miniaturisées d’ingénierie tissulaire ont évolué pour aider à combler l’écart, dans le but d’atteindre un équilibre entre la facilité d’application à haut débit et la récapitulation fidèle de l....

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Protocole

1. Préparation du milieu, du réactif, de la plaque de culture

  1. Solution de lavage cellulaire pour la culture cellulaire: Utilisez 1x solution saline tamponnée au phosphate (PBS) ou une solution saline équilibrée hanks (HBSS) sans calcium ni magnésium.
  2. Milieux de différenciation cardiomyocytaire
    1. Préparer le milieu de différenciation #1 en ajoutant un supplément de 10 mL (50x B27 plus insuline) à 500 mL de milieu basal cardiomyocytaire (RPMI 1640).
    2. Préparer le milieu de différenciation #2 en ajoutant un supplément de 10 mL (50x B27 moins insuline) à 500 mL de milieu basal cardiomyocytaire (RPMI 1640).
    3. Préparer le milieu d....

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Résultats

Caractérisation par immunocoloration et cytométrie en flux des CM, CE et FC dérivés de l’iPSC
Pour générer des microtissus cardiaques composés d’iPSC-CM, d’iPSC-CE et d’iPSC-FC, les trois types de cellules sont différenciés et caractérisés individuellement. La différenciation in vitro des CSPi en cSPi-MC s’est améliorée au cours des dernières années. Cependant, le rendement et la pureté des iPSC-CM diffèrent d’une ligne à l’autre. Le protocole actuel produit plus de 75 % d’iPSC-CM purs qui co.......

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Discussion

Pour générer des microtissus cardiaques à partir d’iPSC-CM, d’iPSC-EC et d’iPSC-CF prédifférenciés, il est essentiel d’obtenir une culture très pure pour un meilleur contrôle du nombre de cellules après un compactage cellulaire inhibé par contact dans les microtissus cardiaques. Récemment, Giacomelli et. al.18 ont démontré la fabrication de microtissus cardiaques à l’aide d’iPSC-CM, d’iPSC-CE et d’iPSC-FC. Les microtissus cardiaques générés à l’aide de la méthode décrite se composent d’environ 5 0.......

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Déclarations de divulgation

J.C.W. est cofondateur de Khloris Biosciences mais n’a pas d’intérêts concurrents, car le travail présenté ici est complètement indépendant. Les autres auteurs ne signalent aucun conflit.

Remerciements

Nous remercions la Dre Amanda Chase pour ses commentaires utiles sur le manuscrit. Le financement a été fourni par le Tobacco-Related Disease Research Program (TRDRP) de l’Université de Californie, T29FT0380 (D.T.) et 27IR-0012 (J.C.W.); American Heart Association 20POST35210896 (H.K.) et 17MERIT33610009 (J.C.W.); et National Institutes of Health (NIH) R01 HL126527, R01 HL123968, R01 HL150693, R01 HL141851 et NIH UH3 TR002588 (J.C.W).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Plaques 12 puitsFisher Scientific08-772-29
Micro-moules 3DMicrotissusFormat 12-81 Plaques
puitsFisher Scientific08-772-1B
AutoMACS Rinsing SolutionThermo Fisher ScientificNC9104697
B27 Supplement minus InsulinLife TechnologiesA1895601
Supplément B27 plus insulineLife Technologies17504-044
BD CytofixBD Biosciences554655
BD Matrigel, matrice qualifiée hESCBD Biosciences354277
Anticorps T Troponine CardiaqueMiltenyi130-120-403
CD144 (VE-Cadhérine) MicrobillesMiltenyi130-097-857
CD31 AnticorpsMiltenyi130-110-670
CD31 MicrobillesMiltenyi130-091-935
CHIR-99021SelleckchemS2924
DDR2Santa Cruz Biotechnologysc-81707
Kit d’apoptose à cellules mortes avec Annexine V FITC et PIThermo Fisher ScientificV13242
Dispase IMillipore Sigma4942086001
DMEM, teneur élevée en glucose (4,5 g/L), sans milieu11960044
milieu basal DMEM/F-12Gibco11320033
solution saline tamponnée au phosphate de Dulbecco (DPBS), sans calcium, sans magnésiumLife Technologies14190-136
EGM2 BulletKitLonzaCC-3124
Fœtus bovins sérumLife Technologies10437
FibroLife Fibroblast sans sérumLifeFactors Kit LifeLIne Cell TechnologyLS-1010
Sérum sans glucose RPMI mediumLife Technologies11879-020
Sérum de chèvreLife Technologies16210-064
FGF humain de baseThermo Fisher Scientific13256029
Humain VEGF-165PeproTech100-20
IWR-1-endoSelleckchemS7086
Liberase TLMillipore Sigma5401020001
LS Colonnes de triMiltenyi130-042-401
MACS BSA Solution mèreMiltenyi130-091-376
Tampon de rinçage MACSMiltenyi130-091-222
Séparateur MidiMACSMiltenyi130-042-302
RPMI mediumLife Technologies11835055
SB431542SelleckchemS1067
TO-PRO 3Thermo Fisher ScientificR37170
Triton X-100Millipore SigmaX100-100ML
TrypLE Select 10XThermo Fisher Scientificred
Vimentin Alexa Fluor® ; 488-conjugué AnticorpsR& D SystemsIC2105G
6 glutamine

Références

  1. Neofytou, E., O'Brien, C. G., Couture, L. A., Wu, J. C. Hurdles to clinical translation of human induced pluripotent stem cells. Journal of Clinical Investigation. 125 (7), 2551-2557 (2015).
  2. Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. Organogenesis in a....

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Réimpressions et autorisations

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