Summary

Elektroporationsbaserad genetisk modifiering av primära mänskliga pigmentepitelceller med hjälp av Törnrosa Transposon System

Published: February 04, 2021
doi:

Summary

Vi har utvecklat ett protokoll för att transfektera primära humana pigmentepitelceller genom elektroporering med genen som kodar för pigmentepitel-härledd faktor (PEDF) med hjälp av Törnrosa (SB) transposonsystem. Framgångsrik transfektion demonstrerades genom kvantitativ polymeraskedjereaktion (qPCR), immunoblotting och enzymbunden immunosorbentanalys (ELISA).

Abstract

Vårt allt äldre samhälle leder till en växande förekomst av neurodegenerativa sjukdomar. Hittills är de patologiska mekanismerna otillräckligt förstådda, vilket hindrar upprättandet av definierade behandlingar. Cellbaserade additiva genterapier för ökat uttryck av en skyddande faktor anses vara ett lovande alternativ för att medicinera neurodegenerativa sjukdomar, såsom åldersrelaterad makuladegeneration (AMD). Vi har utvecklat en metod för stabilt uttryck av den genkodande pigmentepitel-härledda faktorn (PEDF), som karakteriseras som ett neuroprotektivt och antiangiogent protein i nervsystemet, in i genomet hos primära humana pigmentepitelceller (PE) med hjälp av Törnrosa (SB) transposonsystem. Primära PE-celler isolerades från mänskliga donatorögon och upprätthölls i odling. Efter att ha nått sammanflödet suspenderades 1 x 104 celler i 11 μl resuspensionsbuffert och kombinerades med 2 μL av en renad lösning innehållande 30 ng hyperaktiv SB (SB100X) transposasplasmid och 470 ng PEDF-transposonplasmid. Genetisk modifiering utfördes med ett kapillärelektroporationssystem med användning av följande parametrar: två pulser med en spänning på 1 100 V och en bredd på 20 ms. Transfekterade celler överfördes till odlingsplattor innehållande medium kompletterat med fetalt bovint serum; Antibiotika och antimykotika tillsattes med det första medieutbytet. Framgångsrik transfektion demonstrerades i självständigt utförda experiment. Kvantitativ polymeraskedjereaktion (qPCR) visade det ökade uttrycket av PEDF-transgenen. PEDF-sekretionen var signifikant förhöjd och förblev stabil, vilket utvärderades genom immunoblotting och kvantifierades med enzymbunden immunosorbentanalys (ELISA). SB100X-medierad överföring möjliggjorde en stabil PEDF-genintegration i genomet hos PE-celler och säkerställde kontinuerlig utsöndring av PEDF, vilket är avgörande för utvecklingen av en cellbaserad genadditionsterapi för att behandla AMD eller andra retinala degenerativa sjukdomar. Dessutom indikerade analys av integrationsprofilen för PEDF-transposonen till mänskliga PE-celler en nästan slumpmässig genomisk fördelning.

Introduction

Hög ålder beskrivs som den största risken för neurodegenerativa sjukdomar. Åldersrelaterad makuladegeneration (AMD), en polygen sjukdom som leder till svår synförlust hos patienter äldre än 60 år, tillhör de fyra vanligaste orsakerna till blindhet och synnedsättning1 och förväntas öka till 288 miljoner människor 20402. Dysfunktioner i retinal pigmentepitel (RPE), ett enda lager av tätt packade celler belägna mellan choriocapillaris och retinala fotoreceptorer, bidrar till patogenesen av AMD. RPE uppfyller flera uppgifter som är väsentliga för en normal retinal funktion3 och utsöndrar en mängd olika tillväxtfaktorer och faktorer som är väsentliga för att upprätthålla den strukturella integriteten hos näthinnan och choriokapillaris, vilket stöder fotoreceptoröverlevnad och ger en grund för cirkulationen och tillförseln av näringsämnen.

I friska ögon är pigmentepitel-härledd faktor (PEDF) ansvarig för att balansera effekterna av vaskulär endoteltillväxtfaktor (VEGF) och skyddar neuroner mot apoptos, förhindrar endotelcellsproliferation och stabiliserar kapillärendotelet. Ett skiftat VEGF-till-PEDF-förhållande är relaterat till okulär neovaskularisering, vilket observerades i djurmodeller 4,5 samt i prover av patienter med koroidal neovaskularisering (CNV) på grund av AMD och proliferativ diabetisk retinopati 6,7,8,9,10 . Den förbättrade VEGF-koncentrationen är målet för den nuvarande standardbehandlingen. Anti-VEGF-läkemedlen bevacizumab, ranibizumab, aflibercept och senast brolucizumab förbättrar synskärpan hos cirka en tredjedel av CNV-patienterna eller snarare stabiliserar synen i 90% av fallen11,12,13. De frekventa, ofta månatliga, intravitreala injektionerna medför dock risken för biverkningar14, försämrar patienternas efterlevnad och utgör en betydande ekonomisk börda för hälso- och sjukvårdssystemen15. Dessutom svarar en viss andel av patienterna (2%-20%) inte eller reagerar bara dåligt på anti-VEGF-behandlingen16,17,18,19. Dessa negativa samtidiga kräver utveckling av alternativa behandlingar, t.ex. intraokulära implantat, cell- och/eller genterapeutiska metoder.

Genterapi har utvecklats som lovande behandling för ärftliga och icke-ärftliga sjukdomar och avser att återställa icke-funktionella gensekvenser eller undertrycka felaktiga sådana. För polygena sjukdomar, där identifiering och ersättning av orsaksfaktorerna knappast är möjlig, syftar strategierna till kontinuerlig leverans av en skyddande faktor. När det gäller AMD har olika additiva terapier utvecklats, såsom det stabila uttrycket av endostatin och angiostatin 20, VEGF-antagonisten lösligt fms-liknande tyrosinkinas-1 (sFLT-1)21,22, komplementet reglerande proteinkluster av differentiering 59 (CD59)23 eller PEDF 24,25 . Ögat, och särskilt näthinnan, är ett utmärkt mål för en genbaserad medicinering på grund av den slutna strukturen, god tillgänglighet, liten storlek och immunprivilegium, vilket möjliggör en lokal leverans av låga terapeutiska doser och gör transplantationer mindre mottagliga för avstötning. Dessutom möjliggör ögat icke-invasiv övervakning, och näthinnan kan undersökas med olika bildtekniker.

Virala vektorer är, på grund av deras höga transduktionseffektivitet, det viktigaste fordonet för att leverera terapeutiska gener till målceller. Beroende på vilken virusvektor som används har dock olika biverkningar beskrivits, såsom immun- och inflammatoriska svar26, mutagena och onkogena effekter 27,28 eller spridning i andra vävnader29. Praktiska begränsningar inkluderar en begränsad förpackningsstorlek30 samt svårigheter och kostnader i samband med produktionen av partier31,32 av klinisk kvalitet. Dessa nackdelar har främjat den fortsatta utvecklingen av icke-virala, plasmidbaserade vektorer som överförs via lipo-/polyplexer, ultraljud eller elektroporering. Emellertid främjas inte genomisk integration av transgenen i värdgenomet vanligtvis inte med plasmidvektorer, vilket resulterar i ett övergående uttryck.

Transposoner är naturligt förekommande DNA-fragment som ändrar sin position i genomet, en egenskap som har antagits för genterapi. På grund av en aktiv integrationsmekanism möjliggör transposonbaserade vektorsystem ett kontinuerligt och konstant uttryck av den införda transgenen. Törnrosa (SB) transposon, rekonstituerad från en gammal Tc1/mariner-typ transposon som hittades i fisk33 och förbättrades ytterligare genom molekylär evolution vilket resulterade i den hyperaktiva varianten SB100X34, möjliggjorde effektiv transponering i olika primära celler och användes för fenotypisk korrigering i olika sjukdomsmodeller35. För närvarande har 13 kliniska prövningar inletts med hjälp av SB-transposonsystemet. SB100X-transposonsystemet består av två komponenter: transposonen, som består av genen av intresse flankerad av terminala inverterade upprepningar (TIR), och transposaset, som mobiliserar transposonen. Efter plasmid-DNA-leverans till cellerna binder transposaset TIR: erna och katalyserar excisionen och integrationen av transposonen i cellens genom.

Vi har utvecklat en icke-viral cellbaserad additiv terapi för behandling av neovaskulär AMD. Tillvägagångssättet omfattar elektroporationsbaserad införande av PEDF-genen i primära pigmentepitelceller (PE) med hjälp av SB100X-transposonsystemet 36,37,38. Den genetiska informationen om transposas och PEDF tillhandahålls på separata plasmider, vilket möjliggör justering av det ideala SB100X-till-PEDF-transposonförhållandet. Elektroporering utförs med hjälp av ett pipettbaserat kapillärtransfektionssystem som kännetecknas av en maximerad gapstorlek mellan elektroderna samtidigt som deras ytarea minimeras. Enheten visade sig uppnå utmärkta transfektionshastigheter i ett brett spektrum av däggdjursceller 39,40,41. Den lilla elektrodytan ger ett jämnt elektriskt fält och minskar de olika biverkningarna av elektrolys42.

Den anti-angiogena funktionaliteten hos PEDF som utsöndras av transfekterade pigmentepitelceller visades i olika in vitro-experiment som analyserade spridning, migration och apoptos av humana navelvenendotelceller43. Dessutom visade transplantation av PEDF-transfekterade celler i en kaninmodell av hornhinnans neovaskularisering44 samt en råttmodell av CNV43,45,46 nedgång av neovaskularisering.

Här beskriver vi ett detaljerat protokoll för stabil insättning av PEDF-genen i primära humana RPE-celler via SB100X-transposonsystemet med hjälp av ett kapillärtransfektionssystem. De transfekterade cellerna hölls i odling i 21 dagar och analyserades därefter med avseende på PEDF-genuttryck genom kvantitativ polymeraskedjereaktion (qPCR) och i termer av PEDF-proteinsekretion genom immunoblotting och enzymbunden immunosorbentanalys (ELISA, figur 1).

Protocol

Mänskliga donatorögon erhölls från Aachen Cornea Bank vid avdelningen för oftalmologi (Universitetssjukhuset RWTH Aachen) efter att ha fått informerat samtycke i enlighet med Helsingforsdeklarationens protokoll. Förfaranden för insamling och användning av humanprover har godkänts av den institutionella etiska kommittén. 1. Isolering av primära humana RPE-celler Lägg ut sterila skyddskläder och handskar. Placera ett sterilt draperi under ett laminärt flöde. P…

Representative Results

Odling och elektroporering av primära humana RPE-cellerVi har visat att sådd av ett tillräckligt antal primära RPE-celler av animaliskt ursprung möjliggör odling och tillväxt till ett integrerat monolager av pigmenterade, sexkantigt formade celler36,37,48. Deras förmåga att bilda täta korsningar, att uppvisa fagocytisk aktivitet och att uttrycka specifika markörgen…

Discussion

I vårt projekt strävar vi efter icke-viral produktion av genetiskt modifierade primära humana RPE-celler som kontinuerligt överuttrycker och utsöndrar en effektiv faktor för att kunna använda de transfekterade cellerna som långsiktig terapeutisk för etablering och underhåll av en skyddande miljö. Vi har etablerat introduktionen av genen som kodar för PEDF, ett allestädes närvarande uttryckt multifunktionellt protein med anti-angiogena och neuroprotektiva funktioner. Protokollet som beskrivs här kan använd…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Europeiska unionens sjunde ramprogram för forskning, teknisk utveckling och demonstration, bidragsavtal nr 305134. Zsuzsanna Izsvák finansierades av Europeiska forskningsrådet, ERC Advanced (ERC-2011-ADG 294742). Författarna vill tacka Anna Dobias och Antje Schiefer (Institutionen för oftalmologi, Universitetssjukhuset RWTH Aachen) för utmärkt teknisk support och Aachen Cornea Bank (Institutionen för oftalmologi, Universitetssjukhuset RWTH Aachen) för att ge de mänskliga donatorögonen.

Materials

Isolation of primary human RPE cells
24-Well Cell Culture Plate Eppendorf, Hamburg, Germany 0030722019
Amphotericin B [250 µg/mL] (AmphoB) Merck, Darmstadt, Germany A2942
Colibri Forceps Geuder, Heidelberg, Germany G-18950
Curved Iris Forceps  Geuder, Heidelberg, Germany G-18856
Disposable Scalpel (No. 11) Feather, Osaka, Japan
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium/Ham’s F-12 Nutrient Mixture (DMEM/F12) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P04-41150
Extra Fine Pointed Eye Scissor  Geuder, Heidelberg, Germany G-19405
Fetal Bovine Serum [0.2 µm Sterile Filtered] (FBS) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P40-37500
Glass Pasteur Pipettes Brand, Wertheim, Germany 747715
Penicillin [10,000 units/mL] and Streptomycin [10 mg/mL] (Pen/Strep) Merck, Darmstadt, Germany P0781
Pipette Tips (1000 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (100-1000 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Sterile Drape Lohmann & Rauscher, Rengsdorf, Germany
Sterile Gauze Compress  Fink-Walter, Merchweiler, Germany 321063
Sterile Gloves Sempermed, Wien, Austria
Sterile Petri Dish (Falcon 60 mm x 15 mm) Corning, Corning, NY 351007
Sterile Surgical Gown Halyard Health, Alpharetta, GA
Straight Iris Forceps  Geuder, Heidelberg, Germany G-18855
Electroporation of primary human RPE cells
10 mM Tris-HCl (pH 8.5)
12-Well Cell Culture Plate Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA 150628
24-Well Cell Culture Plate Eppendorf, Hamburg, Germany 0030722019
Amphotericin B [250 µg/mL] (AmphoB) Merck, Darmstadt, Germany A2942
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium/Ham’s F-12 Nutrient Mixture (DMEM/F12) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P04-41150
Safe-Lock Microcentrifuge Tubes (1.5 mL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Fetal Bovine Serum [0.2 µm Sterile Filtered] (FBS) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P40-37500
Inverted Microscope Leica Mikrosysteme, Wetzlar, Germany Leica DMi8
Microvolume Spectrophotometer (NanoDrop Spectrophotometer) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA
Capillary Transfection System (Neon Transfection System) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA MPK5000
Neon Transfection System 10 µL Kit Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA MPK1096
Hemocytometer (Neubauer Chamber) Paul Marienfeld, Lauda-Königshofen, Germany 0640110
PBS Dulbecco w/o Ca2+ w/o Mg2+ Biochrom, Berlin, Germany L182-50
Penicillin [10,000 units/mL] and Streptomycin [10 mg/mL] (Pen/Strep) Merck, Darmstadt, Germany P0781
Pipette Tips (10 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Pipette Tips (1000 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Pipette Tips (200 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Plasmid Maxi Kit Qiagen, Hilden, Germany 12163
Single Channel Pipette (0.1-10 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (100-1000 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (10-200 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Trypan Blue Solution Merck, Darmstadt, Germany T8154
Trypsin-EDTA (0,05 %) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA 25300054
Analyses of transfected primary human RPE cells
10% SDS-Polyacrylamide Gel
1x Incubation Buffer (50 mM NaH2PO4, 300 mM NaCl, 10 mM imidazole, pH 8.0)
2x SDS Sample Buffer
4x Incubation Buffer (200 mM NaH2PO4, 1.2 M NaCl, 40 mM imidazole, pH 8.0)
Amersham Protran Supported 0.2 µm Nitrocellulose Blotting Membrane Cytiva, Marlborough, MA 10600015
Amphotericin B [250 µg/mL] (AmphoB) Merck, Darmstadt, Germany A2942
Anti-PEDF Antibodies (Rabbit Polyclonal) BioProducts, Middletown, MD AB-PEDF1
Anti-Penta-His Antibodies (Mouse Monoclonal) Qiagen, Hilden, Germany 34660
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium/Ham’s F-12 Nutrient Mixture (DMEM/F12) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P04-41150
Elution Buffer (50 mM NaH2PO4, 300 mM NaCl, 250 mM imidazole, pH 8.0) 
Fetal Bovine Serum [0.2 µm Sterile Filtered] (FBS) PAN-Biotech, Aidenbach, Germany P40-37500
Hemocytometer (Neubauer Chamber) Paul Marienfeld, Lauda-Königshofen, Germany 0640110
Horseradish Peroxidase-Conjugated Anti-Mouse Antibodies (Rabbit Polyclonal) Agilent Dako, Santa Clara, CA P0260
Horseradish Peroxidase-Conjugated Anti-Rabbit Antibodies (Goat Polyclonal) Abcam, Cambridge, United Kingdom ab6721
Human PEDF ELISA Kit  BioProducts, Middletown, MD PED613
LAS-3000 Imaging System Fujifilm, Minato, Japan
LightCycler 1.2 Instrument Roche Life Science, Penzberg, Germany
LightCycler FastStart DNA Master SYBR Green I Roche Life Science, Penzberg, Germany 12239264001
LightCycler Capillaries (20 μl) Roche Life Science, Penzberg, Germany 4929292001
Microvolume Spectrophotometer (NanoDrop Spectrophotometer) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA
Mini-PROTEAN Tetra Cell Casting Module Bio-Rad Laboratories, Feldkirchen, Germany 1658015
Mini-PROTEAN Tetra Vertical Electrophoresis Cell for Mini Precast Gels, 4-gel Bio-Rad Laboratories, Feldkirchen, Germany 1658004
Ni-NTA Superflow Qiagen, Hilden, Germany 30410
PageRuler Prestained Protein Ladder Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA 26616
Penicillin [10,000 units/mL] and Streptomycin [10 mg/mL] (Pen/Strep) Merck, Darmstadt, Germany P0781
Pipette Tips (10 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Pipette Tips (1000 µL) Starlab, Hamburg, Germany
Pipette Tips (200 µL) Starlab, Hamburg, Germany
PowerPac Basic Power Supply Bio-Rad Laboratories, Feldkirchen, Germany 1645050
QIAamp DNA Mini Kit Qiagen, Hilden, Germany 51304
Reverse Transcription System  Promega, Madison, WI A3500
RNase-Free DNase Set Qiagen, Hilden, Germany 79254
RNeasy Mini Kit  Qiagen, Hilden, Germany 74104
Rocking Shaker Cole-Parmer, Staffordshire, United Kingdom SSM3
Safe-Lock Microcentrifuge Tubes (1.5 mL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Safe-Lock Microcentrifuge Tubes (2.0 mL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (0.1-10 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (100-1000 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Single Channel Pipette (10-200 µL) Eppendorf, Hamburg, Germany
Trans-Blot Turbo Transfer System Bio-Rad Laboratories, Feldkirchen, Germany 1704150
Trypan Blue Solution Merck, Darmstadt, Germany T8154
Trypsin-EDTA (0,05 %) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA 25300054

References

  1. James, S. L., et al. national incidence, prevalence, and years lived with disability for 354 diseases and injuries for 195 countries and territories, 1990-2017: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2017. Lancet. 392 (10159), 1789-1858 (2018).
  2. Wong, W. L., et al. Global prevalence of age-related macular degeneration and disease burden projection for 2020 and 2040: a systematic review and meta-analysis. Lancet Global Health. 2 (2), 106-116 (2014).
  3. Strauss, O. The retinal pigment epithelium in visual function. Physiological Reviews. 85 (3), 845-881 (2005).
  4. Chan, C. K., et al. Differential expression of pro- and antiangiogenic factors in mouse strain-dependent hypoxia-induced retinal neovascularization. Laboratory Investigation. 85 (6), 721-733 (2005).
  5. Gao, G., et al. Unbalanced expression of VEGF and PEDF in ischemia-induced retinal neovascularization. FEBS Letters. 489 (2-3), 270-276 (2001).
  6. Bhutto, I. A., et al. Pigment epithelium-derived factor (PEDF) and vascular endothelial growth factor (VEGF) in aged human choroid and eyes with age-related macular degeneration. Experimental Eye Research. 82 (1), 99-110 (2006).
  7. Holekamp, N. M., Bouck, N., Volpert, O. Pigment epithelium-derived factor is deficient in the vitreous of patients with choroidal neovascularization due to age-related macular degeneration. American Journal of Ophthalmology. 134 (2), 220-227 (2002).
  8. Kolomeyer, A. M., Sugino, I. K., Zarbin, M. A. Characterization of conditioned media collected from aged versus young human eye cups. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (8), 5963-5972 (2011).
  9. Li, X., et al. The significance of the increased expression of phosphorylated MeCP2 in the membranes from patients with proliferative diabetic retinopathy. Scientific Reports. 6, 32850 (2016).
  10. Mohan, N., Monickaraj, F., Balasubramanyam, M., Rema, M., Mohan, V. Imbalanced levels of angiogenic and angiostatic factors in vitreous, plasma and postmortem retinal tissue of patients with proliferative diabetic retinopathy. Journal of Diabetes and its Complications. 26 (5), 435-441 (2012).
  11. Empeslidis, T., et al. How successful is switching from Bevacizumab or Ranibizumab to Aflibercept in Age-Related Macular Degeneration? A systematic overview. Advances in Therapy. 36 (7), 1532-1548 (2019).
  12. Solomon, S. D., Lindsley, K., Vedula, S. S., Krzystolik, M. G., Hawkins, B. S. Anti-vascular endothelial growth factor for neovascular age-related macular degeneration. Cochrane Database of Systematic Reviews. 3, (2019).
  13. Dugel, P. U., et al. phase 3, multicenter, randomized, double-masked trials of brolucizumab for neovascular age-related macular degeneration. Ophthalmology. 127 (1), 72-84 (2020).
  14. Falavarjani, K. G., Nguyen, Q. D. Adverse events and complications associated with intravitreal injection of anti-VEGF agents: a review of literature. Eye. 27 (7), 787-794 (2013).
  15. Jaffe, D. H., Chan, W., Bezlyak, V., Skelly, A. The economic and humanistic burden of patients in receipt of current available therapies for nAMD. Journal of Comparative Effectiveness Research. 7 (11), 1125-1132 (2018).
  16. Eghoj, M. S., Sorensen, T. L. Tachyphylaxis during treatment of exudative age-related macular degeneration with ranibizumab. British Journal of Ophthalmology. 96 (1), 21-23 (2012).
  17. Forooghian, F., Cukras, C., Meyerle, C. B., Chew, E. Y., Wong, W. T. Tachyphylaxis after intravitreal bevacizumab for exudative age-related macular degeneration. Retina – The Journal of Retinal and Vitreous Diseases. 29 (6), 723-731 (2009).
  18. Otsuji, T., et al. Initial non-responders to ranibizumab in the treatment of age-related macular degeneration (AMD). Clinical Ophthalmology. 7, 1487-1490 (2013).
  19. Zuber-Laskawiec, K., Kubicka-Trzaska, A., Karska-Basta, I., Pociej-Marciak, W., Romanowska-Dixon, B. Non-responsiveness and tachyphylaxis to anti-vascular endothelial growth factor treatment in naive patients with exudative age-related macular degeneration. Journal of Physiology and Pharmacology. 70 (5), (2019).
  20. Campochiaro, P. A., et al. Lentiviral vector gene transfer of endostatin/angiostatin for macular degeneration (GEM) study. Human Gene Therapy. 28 (1), 99-111 (2017).
  21. Constable, I. J., et al. Phase 2a randomized clinical trial: safety and post hoc analysis of subretinal rAAV.sFLT-1 for wet age-related macular degeneration. EBioMedicine. 14, 168-175 (2016).
  22. Rakoczy, E. P., et al. Three-year follow-up of phase 1 and 2a rAAV.sFLT-1 subretinal gene therapy trials for exudative age-related macular degeneration. American Journal of Ophthalmology. 204, 113-123 (2019).
  23. Kumar-Singh, R. The role of complement membrane attack complex in dry and wet AMD – from hypothesis to clinical trials. Experimental Eye Research. 184, 266-277 (2019).
  24. Campochiaro, P. A., et al. Adenoviral vector-delivered pigment epithelium-derived factor for neovascular age-related macular degeneration: results of a phase I clinical trial. Human Gene Therapy. 17 (2), 167-176 (2006).
  25. Campochiaro, P. A. Gene transfer for neovascular age-related macular degeneration. Human Gene Therapy. 22 (5), 523-529 (2011).
  26. Ahi, Y. S., Bangari, D. S., Mittal, S. K. Adenoviral vector immunity: its implications and circumvention strategies. Current Gene Therapy. 11 (4), 307-320 (2011).
  27. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. New England Journal of Medicine. 363 (4), 355-364 (2010).
  28. Howe, S. J., et al. Insertional mutagenesis combined with acquired somatic mutations causes leukemogenesis following gene therapy of SCID-X1 patients. Journal of Clinical Investigation. 118 (9), 3143-3150 (2008).
  29. Stieger, K., et al. Subretinal delivery of recombinant AAV serotype 8 vector in dogs results in gene transfer to neurons in the brain. Molecular Therapy. 16 (5), 916-923 (2008).
  30. Tornabene, P., Trapani, I. Can adeno-associated viral vectors deliver effectively large genes. Human Gene Therapy. 31 (1-2), 47-56 (2020).
  31. Ayuso, E. Manufacturing of recombinant adeno-associated viral vectors: new technologies are welcome. Molecular Therapy – Methods & Clinical Development. 3, 15049 (2016).
  32. van der Loo, J. C., Wright, J. F. Progress and challenges in viral vector manufacturing. Human Molecular Genetics. 25, 42-52 (2016).
  33. Ivics, Z., Hackett, P. B., Plasterk, R. H., Izsvak, Z. Molecular reconstruction of Sleeping Beauty, a Tc1-like transposon from fish, and its transposition in human cells. Cell. 91 (4), 501-510 (1997).
  34. Mates, L., et al. Molecular evolution of a novel hyperactive Sleeping Beauty transposase enables robust stable gene transfer in vertebrates. Nature Genetics. 41 (6), 753-761 (2009).
  35. Izsvak, Z., Hackett, P. B., Cooper, L. J., Ivics, Z. Translating Sleeping Beauty transposition into cellular therapies: victories and challenges. Bioessays. 32 (9), 756-767 (2010).
  36. Thumann, G., et al. High efficiency non-viral transfection of retinal and iris pigment epithelial cells with pigment epithelium-derived factor. Gene Therapy. 17 (2), 181-189 (2010).
  37. Johnen, S., et al. Sleeping Beauty transposon-mediated transfection of retinal and iris pigment epithelial cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (8), 4787-4796 (2012).
  38. Thumann, G., et al. Engineering of PEDF-expressing primary pigment epithelial cells by the SB transposon system delivered by pFAR4 plasmids. Molecular Therapy – Nucleic Acids. 6, 302-314 (2017).
  39. Abdul Halim, N. S., Fakiruddin, K. S., Ali, S. A., Yahaya, B. H. A comparative study of non-viral gene delivery techniques to human adipose-derived mesenchymal stem cell. International Journal of Molecular Sciences. 15 (9), 15044-15060 (2014).
  40. Ahlemeyer, B., Vogt, J. F., Michel, V., Hahn-Kohlberger, P., Baumgart-Vogt, E. Microporation is an efficient method for siRNA-induced knockdown of PEX5 in HepG2 cells: evaluation of the transfection efficiency, the PEX5 mRNA and protein levels and induction of peroxisomal deficiency. Histochemistry and Cell Biology. 142 (5), 577-591 (2014).
  41. May, R. D., et al. Efficient nonviral transfection of primary intervertebral disc cells by electroporation for tissue engineering application. Tissue Engineering Part C – Methods. 23 (1), 30-37 (2017).
  42. Kim, J. A., et al. A novel electroporation method using a capillary and wire-type electrode. Biosensors & Bioelectronics. 23 (9), 1353-1360 (2008).
  43. Johnen, S., et al. Antiangiogenic and neurogenic activities of Sleeping Beauty-mediated PEDF-transfected RPE cells in vitro and in vivo. Biomed Research International. 2015, 863845 (2015).
  44. Kuerten, D., et al. Transplantation of PEDF-transfected pigment epithelial cells inhibits corneal neovascularization in a rabbit model. Graefes Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 253 (7), 1061-1069 (2015).
  45. Garcia-Garcia, L., et al. Long-term PEDF release in rat iris and retinal epithelial cells after Sleeping Beauty transposon-mediated gene delivery. Molecular Therapy – Nucleic Acids. 9, 1-11 (2017).
  46. Hernandez, M., et al. Preclinical evaluation of a cell-based gene therapy using the Sleeping Beauty transposon system in choroidal neovascularization. Molecular Therapy – Methods & Clinical Development. 15, 403-417 (2019).
  47. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227 (5259), 680-685 (1970).
  48. Johnen, S., et al. Presence of xenogenic mouse RNA in RPE and IPE cells cultured on mitotically inhibited 3T3 fibroblasts. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (5), 2817-2824 (2011).
  49. Gogol-Doring, A., et al. Genome-wide profiling reveals remarkable parallels between insertion site selection properties of the MLV retrovirus and the piggyBac transposon in primary human CD4(+) T cells. Molecular Therapy. 24 (3), 592-606 (2016).
  50. Holstein, M., et al. Efficient non-viral gene delivery into human hematopoietic stem cells by minicircle Sleeping Beauty transposon vectors. Molecular Therapy. 26 (4), 1137-1153 (2018).
  51. Moldt, B., et al. Comparative genomic integration profiling of Sleeping Beauty transposons mobilized with high efficacy from integrase-defective lentiviral vectors in primary human cells. Molecular Therapy. 19 (8), 1499-1510 (2011).
  52. Yant, S. R., et al. High-resolution genome-wide mapping of transposon integration in mammals. Molecular and Cellular Biology. 25 (6), 2085-2094 (2005).
  53. Grabundzija, I., et al. Comparative analysis of transposable element vector systems in human cells. Molecular Therapy. 18 (6), 1200-1209 (2010).
  54. Dunn, K. C., Aotaki-Keen, A. E., Putkey, F. R., Hjelmeland, L. M. ARPE-19, a human retinal pigment epithelial cell line with differentiated properties. Experimental Eye Research. 62 (2), 155-169 (1996).
  55. Chang, L., et al. Micro-/nanoscale electroporation. Lab on a Chip. 16 (21), 4047-4062 (2016).
  56. Shi, J., et al. A review on electroporation-based intracellular delivery. Molecules. 23 (11), (2018).
  57. Johnen, S., et al. Endogenic regulation of proliferation and zinc transporters by pigment epithelial cells nonvirally transfected with PEDF. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (8), 5400-5407 (2011).
  58. Pastor, M., et al. The antibiotic-free pFAR4 vector paired with the Sleeping Beauty transposon system mediates efficient transgene delivery in human cells. Molecular Therapy – Nucleic Acids. 11, 57-67 (2018).
check_url/fr/61987?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Johnen, S., Harmening, N., Marie, C., Scherman, D., Izsvák, Z., Ivics, Z., Walter, P., Thumann, G. Electroporation-Based Genetic Modification of Primary Human Pigment Epithelial Cells Using the Sleeping Beauty Transposon System. J. Vis. Exp. (168), e61987, doi:10.3791/61987 (2021).

View Video