Summary

Raffinata compensazione dei tessuti basata su CLARITY per l'organizzazione tridimensionale dei fibroblasti nei cuori di topo sani e feriti

Published: May 16, 2021
doi:

Summary

Un metodo raffinato di compensazione dei tessuti è stato sviluppato e applicato al cuore adulto del topo. Questo metodo è stato progettato per cancellare il tessuto cardiaco denso e autofluorescente, pur mantenendo la fluorescenza dei fibroblasti etichettata attribuita a una strategia genetica reporter.

Abstract

Le malattie cardiovascolari sono la causa più diffusa di mortalità in tutto il mondo ed è spesso contrassegnata da una fibrosi cardiaca aumentata che può portare a una maggiore rigidità ventricolare con funzione cardiaca alterata. Questo aumento della fibrosi ventricolare cardiaca è dovuto all’attivazione di fibroblasti residenti, anche se il modo in cui queste cellule operano all’interno del cuore tridimensionale (3D), al basale o dopo l’attivazione, non è ben compreso. Per esaminare come i fibroblasti contribuiscono alle malattie cardiache e alle loro dinamiche nel cuore 3D, è stato sviluppato un raffinato metodo di pulizia e imaging dei tessuti basato su CLARITY che mostra fibroblasti cardiaci etichettati fluorescentmente all’interno dell’intero cuore del topo. I fibroblasti residenti nei tessuti sono stati geneticamente etichettati utilizzando topi reporter florescenti Rosa26-loxP-eGFP incrociati con il fibroblasto cardiaco che esprime la linea di knock-in Tcf21-MerCreMer. Questa tecnica è stata utilizzata per osservare la dinamica di localizzazione dei fibroblasti in tutto il ventricolo sinistro adulto nei topi sani e nei modelli fibrotici di topo di malattie cardiache. È interessante notare che, in un modello di lesione, sono stati osservati modelli unici di fibroblasti cardiaci nel cuore del topo ferito che seguiva bande di fibre avvolte nella direzione della contrattile. Nei modelli di lesioni ischemiche si è verificata la morte dei fibroblasti, seguita dal ripopolamento dalla zona di confine infarto. Collettivamente, questa raffinata tecnica di chiar chiaritura del tessuto cardiaco e il sistema di imaging digitalizzato consentono la visualizzazione 3D dei fibroblasti cardiaci nel cuore senza i limiti del fallimento della penetrazione degli anticorpi o problemi precedenti che circondano la fluorescenza persa a causa della lavorazione dei tessuti.

Introduction

Sebbene i cardiomiociti costificheranno la più grande frazione di volume nel cuore, i fibroblasti cardiaci sono più abbondanti e sono coinvolti criticamente nella regolazione delle caratteristiche strutturali e riparatrici di base di questo organo. I fibroblasti cardiaci sono altamente mobili, meccanicamente reattivi e fenotipicamente variano a seconda dell’entità della loro attivazione. I fibroblasti cardiaci sono necessari per mantenere i normali livelli di matrice extracellulare (ECM), e una produzione troppo piccola o troppo di ECM da parte di queste cellule puòportare alla malattia 1,2,3. Data la loro importanza nella malattia, i fibroblasti cardiaci sono diventati un argomento di indagine sempre più importante verso l’identificazione di nuove strategie di trattamento, specialmente nel tentativo di limitare l’eccessiva fibrosi4,5,6,7. Al momento della lesione, i fibroblasti si attivano e si differenziano in un tipo di cellula più sintetica noto come miofibroblasto, che può essere proliferativo e secernore abbondante ECM, oltre ad avere un’attività contrattile che aiuta a rimodellare i ventricoli.

Mentre i fibroblasti cardiaci sono stati ampiamente valutati per le loro proprietà nelle colture 2D6,8,9,10, molto meno si comprende le loro proprietà e dinamiche nel cuore vivente 3D, sia al basale che con la stimolazione della malattia. Qui, è stato descritto un metodo raffinato per liberare il cuore del topo adulto mantenendo la fluorescenza dei fibroblasti etichettati con un sistema di reporter genetico Rosa26-loxP-eGFP x Tcf21-MerCreMer. All’interno del cuore, Tcf21 è un marcatore relativamente specifico di fibroblasti quiescenti4. Dopo che il tamoxifene è stato somministrato per attivare la proteina MerCreMer induttiva, essenzialmente tutti i fibroblasti quiescenti esprimeranno permanentemente proteine fluorescenti verdi potenziate (eGFP) dal locus Rosa26, che consente il loro tracciamento in vivo.

Esistono numerosi protocolli di compensazione dei tessuti consolidati, alcuni dei quali sono stati applicati al cuore11,12,13,14,15,16,17. Tuttavia, molti dei reagenti utilizzati in diversi protocolli di compensazione dei tessuti sono stati trovati per spegnere i segnali di fluorescenza endogena18. Inoltre, il cuore adulto è difficile da cancellare a causa delle abbondanti proteine contenenti gruppo di eme che generano autofluorescenza19. Pertanto, l’obiettivo di questo protocollo era quello di preservare la fluorescenza marcatore fibroblasto con l’inibizione simultanea dell’autofluorescenza dell’eme nel cuore adulto ferito per una visualizzazione 3D ottimale in vivo12,13,14,16,17,20.

Studi precedenti che tentavano di esaminare il fibroblasto cardiaco in vivo impiegavano anticorpi perfusi per etichettare queste cellule, sebbene tali studi fossero limitati dalla penetrazione degli anticorpi e dalla strutturavascolare cardiaca 14,16,17,20. Sebbene Salamon et al. Questo protocollo di compensazione dei tessuti affina una miscela di protocolli precedenti basati sul metodo CLARITY (sistema solvente rigido ibrido con acrilammide (PEG) e PEGASOS (sistema solvente associato al polietilene glicole (PEG). Questo raffinato protocollo ha permesso un esame più robusto dei fibroblasti cardiaci nel cuore del topo al basale e di come rispondono a diversi tipi di lesioni. Il protocollo è semplice e riproducibile e aiuterà a caratterizzare il comportamento dei fibroblasti cardiaci in vivo.

Protocol

Tutti gli esperimenti che coinvolgono topi sono stati approvati dall’Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) del Cincinnati Children’s Hospital Medical Center. L’istituto è anche certificato AAALAC (American Association for Accreditation of Laboratory Animal Care). I topi sono stati eutanasiati tramite lussazione cervicale e ai topi sottoposti a procedure chirurgiche di sopravvivenza è stato somministrato sollievo dal dolore (vedi sotto). Tutti i metodi utilizzati per la gestione del dolore e l’eutanasia si…

Representative Results

I fibroblasti cardiaci sono essenziali per la funzione basale del cuore e per la risposta a lesioni cardiache. Precedenti tentativi di comprendere la disposizione e la morfologia di queste cellule sono stati condotti in gran parte in ambienti 2D. Tuttavia, è stata pubblicata una raffinataschiaritura deitessuti cardiaci ( Figura 2 ) e una tecnica di imaging 3D, che consente una visualizzazione avanzata e più dettagliata dei fibroblasti cardiaci. Con questa tecnica di imaging, i fibroblasti …

Discussion

Questo articolo presenta un metodo raffinato per la pulizia dei tessuti che consente la visualizzazione di fibroblasti cardiaci in vivo, sia al basale che a seguito di lesioni, per caratterizzare e comprendere meglio i fibroblasti nel cuore del topo. Questo protocollo avanzato affronta le limitazioni nei protocolli di compensazione dei tessuti esistenti che hanno tentato di identificare tipi di cellule specifiche nel cuore adulto o neonatale12,13,<sup …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori vorrebbero riconoscere il CCHMC Confocal Imaging Core per la loro assistenza e guida nello sviluppo di questo modello, nonché Matt Batie di Clinical Engineering per la progettazione di tutte le parti stampate in 3D. Demetria Fischesser è stata sostenuta da una borsa di formazione del National Institutes of Health (NHLBI, T32 HL125204) e Jeffery D. Molkentin è stata sostenuta dall’Howard Hughes Medical Institute.

Materials

4-0 braided silk Ethicon K871H
8-0 prolene Ethicon 8730H
40% Acrylamide Solution Bio-Rad 1610140
Angiotensin II Sigma A9525-50G
Artificial Tear Ointment Covetrus 048272
DABCO (1,4-diazabicyclo[2.2. 2]octane) Millipore Sigma D27802-25G
GLUture topical tissue adhesive World Precision Instruments 503763
Heparin Sigma H0777
Imaris Start Analysis Software Oxford Instruments N/A
Micro-osmotic pumps Alzet Model 1002
Nikon Elements Analysis Software Nikon N/A
Nikon A1R HD upright microscope Nikon N/A
Normal autoclaved chow Labdiet 5010
Nycodenz, 5- (N-2, 3-dihydroxypropylacetamido)-2, 4, 6-tri-iodo-N,
N'-bis (2, 3 dihydroxypropyl) isophthalamide
CosmoBio AXS-1002424
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710
Phenylephrine Hydrochloride Sigma P6126-10G
Photoinitiator Wako Chemicals VA-044
Rosa26-nLacZ [FVB.Cg-Gt(ROSA)26Sortm1 (CAG-lacZ,-EGFP)Glh/J] Jackson Laboratories Jax Stock No:012429
Sodium Azide Sigma Aldrich S2002-5G
Sodium Chloride solution Hospira, Inc. NDC 0409-4888-10
Tamoxifen Sigma Aldrich T5648
Tamoxifen food Envigo TD.130860
Tween-20 Thermo Fisher Scientific BP337-500
Quadrol, N,N,N′,N′-Tetrakis(2-Hydroxypropyl)ethylenediamine, decolorizing agent Millipore Sigma 122262-1L
X-Clarity electrophoretic clearing chamber Logos Biosystems C30001
X-Clarity electrophoretic clearing solution Logos Biosystems C13001
X-Clarity electrophoresis tissue basket Logos Biosystems C12001
X-Clarity electrophoresis tissue basket holder Logos Biosystems C12002

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Citer Cet Article
Fischesser, D. M., Meyer, E. C., Sargent, M., Molkentin, J. D. Refined CLARITY-Based Tissue Clearing for Three-Dimensional Fibroblast Organization in Healthy and Injured Mouse Hearts. J. Vis. Exp. (171), e62023, doi:10.3791/62023 (2021).

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