Summary

Definere programmet for maternal mRNA-oversettelse under in vitro modning ved hjelp av en enkelt Oocyte Reporter Assay

Published: June 16, 2021
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver en reporteranalyse for å studere reguleringen av mRNA-oversettelse i enkle oocytter under in vitro modning.

Abstract

Hendelser knyttet til oocytt kjernefysisk modning er godt beskrevet. Imidlertid er mye mindre kjent om molekylære veier og prosesser som foregår i cytoplasma som forberedelse til befruktning og oppkjøp av totipotens. Under oocyttmodning avhenger endringer i genuttrykk utelukkende av oversettelse og nedbrytning av mors budbringer-RNAer (mRNAer) i stedet for transkripsjon. Gjennomføring av oversettelsesprogrammet spiller derfor en nøkkelrolle i etableringen av oocyttutviklingskompetanse for å opprettholde embryoutvikling. Dette dokumentet er en del av et fokus på å definere programmet for mors mRNA-oversettelse som foregår under meiotisk modning og ved oocytt-til-zygote-overgangen. I dette metodenotatet presenteres en strategi for å studere regulering av oversettelse av mål-mRNAer under in vitro oocyttmodning. Her er en Ypet-reporter smeltet sammen til 3’s uoversatte region (UTR) av genet av interesse og deretter mikroinjisert i oocytter sammen med polyadenylert mRNA-koding for mCherry for å kontrollere for injisert volum. Ved å bruke intervallmikroskopi for å måle reporterakkumulering, beregnes oversettelseshastigheter ved ulike overganger under oocyttmet meiotisk modning. Her er protokollene for oocyttisolasjon og injeksjon, tidsforløpopptak og dataanalyse beskrevet ved hjelp av Ypet/interleukin-7 (IL-7)-3′ UTR-reporter som eksempel.

Introduction

En fullvoksen pattedyr oocytt gjennomgår raske endringer i forberedelsen til befruktning og oppkjøp av totipotens. Disse endringene er avgjørende for å opprettholde embryonal utvikling etter befruktning. Selv om hendelsene knyttet til kjernefysisk modning er relativt godt beskrevet, er mye mindre kjent om molekylære prosesser og veier i oocyttcyttcytoplasma. I de siste stadiene av oocyttmodning er oocytter transkripsjonelt stille, og genuttrykk er helt avhengig av mRNA-oversettelse og nedbrytning1,2. Syntesen av proteiner som er kritisk for utviklingskompetanse, er derfor avhengig av et program for tidsbelastet oversettelse av langvarige mRNAer som har blitt syntetisert tidligere under oocyttvekst1,3. Som en del av et fokus på å definere dette programmet for mors mRNA-oversettelse utført under meiotisk modning og ved oocytt-til-zygote-overgangen, presenterer denne artikkelen en strategi for å studere aktivering og undertrykkelse av oversettelsen av mål maternal mRNAer i enkle oocytter under in vitro meiotisk modning.

I denne metoden klones den åpne leserammen YPet oppstrøms for 3′ UTR av transkripsjonen av interesse. Deretter blir mRNAer som koder denne reporteren mikroinjisert i oocytter sammen med polyadenylerte mRNAer som koder mCherry for å kontrollere for injisert volum. Reporter akkumulering måles under in vitro oocytt meiotisk modning ved hjelp av tidsforløpmikroskopi. Akkumuleringen av gult fluorescerende protein (YFP) og mCherry registreres i individuelle oocytter, og YFP-signaler korrigeres av det platåede nivået av co-injisert mCherry. Etter datainnsamling beregnes oversettelseshastigheter for ulike tidsintervaller under in vitro oocytt meiotisk modning ved å beregne hellingen av kurven oppnådd ved kurvetilpasning.

Denne tilnærmingen gir et verktøy for å eksperimentelt bekrefte endringer i oversettelsen av utvalgte endogene mRNAer. I tillegg forenkler denne metoden karakterisering av regulatoriske elementer som kontrollerer oversettelse under oocytt meiotisk modning ved å manipulere cis-regulatoriske elementer i 3′ UTR for mål mRNAer4,5,6. Manipulering av poly (A) hale lengde gir også innsikt i adenylase / deadenylase aktivitet i oocytter5. Mutagenese av cis-fungerende elementer eller RNA immunoprecipitation kan brukes til å studere interaksjoner med cognate RNA bindende proteiner6,7. I tillegg kan denne metoden brukes til å identifisere viktige komponenter i oversettelsesprogrammet som er kritiske for oocyttutviklingskompetanse ved å måle mål 3′ UTR-oversettelse i modeller knyttet til redusert oocyttkvalitet 8,9,10. Dette metodepapiret presenterer et representativt eksperiment der denuderte oocytter av 21-dagers C57/BL6-mus har blitt mikroinjisert med en Ypet-reporter smeltet sammen til 3′ UTR av IL-7. Oppsettet og protokollen for oocyttinjeksjon, tidsforløpregistrering og dataanalyse er beskrevet.

Protocol

De eksperimentelle prosedyrene som involverte dyr ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee ved University of California i San Francisco (protokoll AN182026). 1. Utarbeidelse av medier Legg til alle komponentene, som beskrevet i Tabell 1, for å lage det grunnleggende oocyttsamlingsmediet og oocyttmodningsmediet. For det grunnleggende samlingsmediet setter du pH til 7,4. For både oppsamlings- og modningsmedium, tilsett 3 mg/ml bovint serumalbumin (…

Representative Results

Denuded prophase I-arresterte oocytter av 21-dagers C57/BL6 mus ble injisert med en reporter blanding som inneholder mRNA koding Ypet reporter smeltet til 3 ‘ UTR av IL-7 og mRNA koding mCherry. YFP og mCherry uttrykk ble registrert i 39 oocytter, hvorav 30 ble modnet, og 9 ble arrestert i profase I som en negativ kontroll. Tre modne oocytter ble utelukket for analyse fordi de enten hadde en forsinket GVBD (N = 2) eller flyttet i parabolen under innspillingen (N = 1). Figur 3 viser mCherry- …

Discussion

Den presenterte metoden beskriver en strategi for å studere aktivering og undertrykkelse av oversettelse av mål mRNA ved ulike overganger under in vitro oocytt meiotisk modning. IL-7, en cytokin utgitt av oocytten som kan være involvert i oocyte-cumulus cellekommunikasjon8,13, ble valgt med det formål å beskrive denne metoden. IL-7 er kjent for å bli stadig mer oversatt under oocyttmodning8 og muliggjør god visualisering av…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIH R01 GM097165, GM116926 og Eunice Kennedy Shriver NICHD National Centers for Translational Research in Reproduction and Infertility P50 HD055764 til Marco Conti. Enrico M. Daldello ble støttet av et stipend fra Lalor Foundation og Natasja G. J. Costermans ble støttet av et Rubicon-stipend fra Nederlands organisasjon for vitenskapelig forskning (NWO).

Materials

Preparation of media
Bovine Serum Albumin Powder Bioxtra Sigma-Aldrich SIAL-A3311
Cilostamide EMD Millipore 231085
MEM alpha Gibco 12561-056
Minimum Essential Medium Eagle  Sigma-Aldrich M2645
Penicillin-Streptomycin 100x Solution, Sterile Filtered Genesee Scientific Corporation (GenClone) 25-512
Sodium Bicarbonate  JT-Baker 3506-1
Sodium Pyruvate Gibco  11360-070
Ultrapure distilled water Invitrogen 10977-015
Preparation of mRNA encoding YFP/3' UTR and mCherry
Agarose Apex Biomedical  20-102QD
Carbenicillin disodium salt Sigma-Aldrich C1389-1G
Choo-Choo Cloning Kit McLab CCK-20
CutSmart Buffer (10x) New England Biolabs B7204
DNA loading dye (6x) Thermo Scientific R0611
dNTP Solution New England Biolabs N0447S
DpnI New England Biolabs R0176
GeneRuler 1 kb DNA ladder Thermo Fisher SM1333
LB Agar Plates with 100 µg/mL Carbenicillin, Teknova  Teknova L1010
LB Medium (Capsules) MP Biomedicals 3002-021
MEGAclear Transcription Clean-Up Kit Life Technologies AM1908
MfeI-HF restriction enzyme New England Biolabs R3589
mMESSAGE mMACHINE T7 Transcription Kit Invitrogen AM1344
Phusion High Fidelity DNA polymerase New England Biolabs M0530
Poly(A) Tailing kit Invitrogen AM1350
QIAprep Spin Miniprep Kit  Qiagen 27106
QIAquick Gel Extraction Kit Qiagen 28704
S.O.C. medium Thermo Fisher 15544034
TAE buffer  Apex Biomedical  20-193
Ultrapure Ethidium Bromide Solution Life Technologies 15585011
Oocyte collection
Aspirator tube assembly for calibrated micro-pipettes Sigma-Aldrich A5177-5EA
Calibrated micro-pipettes Drummond Scientific Company 2-000-025 
PMSG- 5000 Mybiosource MBS142665
PrecisionGlide Needle 26 G x 1/2 BD 305111
Syringe 1 ml BD 309659
Oocyte micro-injection
35 mm Dish | No. 0 Coverslip | 20 mm Glass Diameter | Uncoated MatTek P35G-0-20-C For time-lapse microscopy
Borosilicate glass with filament Sutter Instrument BF100-78-10
Oil for Embryo Culture Irvine Scientific 9305
Petri Dish Falcon 351006 For micro-injection
Tissue Culture Dish Falcon 353001 For oocyte incubation
VacuTip Holding Capillary Eppendorf 5195000036
Software
Biorender BioRender Preparation of Figure 1S
MetaMorph, version 7.8.13.0  Molecular Devices  For time-lapse microscopy, analysis of 3' UTR translation 

References

  1. Clarke, H. J. Post-transcriptional control of gene expression during mouse oogenesis. Results and Problems in Cell Differentiation. 55, 1-21 (2012).
  2. Gosden, R., Lee, B. Portrait of an oocyte: our obscure origin. Journal of Clinical Investigation. 120 (4), 973-983 (2010).
  3. Conti, M., Sousa Martins, J. P., Han, S. J., Franciosi, F., Menon, K. M. J., Goldstrohm, A. Translational control in the germ line. Posttranscriptional Mechanisms in Endocrine Regulation. , 129-156 (2015).
  4. Dai, X. -. X., et al. A combinational code for mRNA 3’UTR-mediated translational control in the mouse oocyte. Nucleic Acids Research. 47 (1), 328-340 (2019).
  5. Luong, X. G., Daldello, E. M., Rajkovic, G., Yang, C. R., Conti, M. Genome-wide analysis reveals a switch in the translational program upon oocyte meiotic resumption. Nucleic Acids Research. 48 (6), 3257-3276 (2020).
  6. Yang, C. R., et al. The RNA-binding protein DAZL functions as repressor and activator of mRNA translation during oocyte maturation. Nature Communications. 11, 1399 (2020).
  7. Chen, J., et al. Genome-wide analysis of translation reveals a critical role for deleted in azoospermia-like (Dazl) at the oocyte-to-zygote transition. Genes & Development. 25 (7), 755-766 (2011).
  8. Cakmak, H., Franciosi, F., Musa Zamah, A., Cedars, M. I., Conti, M. Dynamic secretion during meiotic reentry integrates the function of the oocyte and cumulus cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113 (9), 2424-2429 (2016).
  9. Daldello, E. M., Luong, X. G., Yang, C. R., Kuhn, J., Conti, M. Cyclin B2 is required for progression through meiosis in mouse oocytes. Development. 146 (8), (2019).
  10. Franciosi, F., Manandhar, S., Conti, M. FSH regulates mRNA translation in mouse oocytes and promotes developmental competence. Endocrinology. 157 (2), 872-882 (2016).
  11. Peters, H., Byskov, A. G., Himelstein-braw, R., Faber, M. Follicular growth: the basic event in the mouse and human ovary. Reproduction. 45 (3), 559-566 (1975).
  12. Shu, Y., et al. Effects of cilostamide and forskolin on the meiotic resumption and embryonic development of immature human oocytes. Human Reproduction. 23 (3), 504-513 (2008).
  13. Cheng, Y., et al. Oocyte-expressed Interleukin 7 suppresses granulosa cell apoptosis and promotes oocyte maturation in rats. Biology of Reproduction. 84 (4), 707-714 (2011).
  14. Ma, J., Fukuda, Y., Schultz, R. M. Mobilization of dormant Cnot7 mRNA promotes deadenylation of maternal transcripts during mouse oocyte maturation. Biology of Reproduction. 93 (2), 1-12 (2015).
  15. Sha, Q. Q., et al. CNOT 6L couples the selective degradation of maternal transcripts to meiotic cell cycle progression in mouse oocyte. The EMBO journal. 37 (24), 99333 (2018).
  16. Yartseva, V., Giraldez, A. J. The maternal-to-zygotic transition during vertebrate development: A model for reprogramming. Current Topics in Developmental Biology. 113, 191-232 (2015).
  17. Mašek, T., Valášek, L., Pospíšek, M. Polysome analysis and RNA purification from sucrose gradients. Methods in Molecular Biology. 703, 293-309 (2011).
  18. Larsson, O., Tian, B., Sonenberg, N. Toward a genome-wide landscape of translational control. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 5 (1), 012302 (2013).
  19. Martins, J. P. S., et al. DAZL and CPEB1 regulate mRNA translation synergistically during oocyte maturation. Journal of Cell Science. 129 (6), 1271-1282 (2016).
  20. Yang, Y., et al. Maternal mRNAs with distinct 3′ UTRs define the temporal pattern of Ccnb1 synthesis during mouse oocyte meiotic maturation. Genes & development. 31, 1302-1307 (2017).
  21. Cheng, Z., et al. Pervasive, coordinated protein-level changes driven by transcript isoform switching during meiosis. Cell. 172 (5), 910-923 (2018).
  22. Ingolia, N. T., Ghaemmaghami, S., Newman, J. R., Weissman, J. S. Genome-wide analysis in vivo of translation with nucleotide resolution using ribosome profiling. Science. 324 (5924), 218-223 (2009).
  23. Piqué, M., López, J. M., Foissac, S., Guigó, R., Méndez, R. A combinatorial code for CPE-mediated translational control. Cell. 132 (3), 434-448 (2008).
  24. Morgan, M., et al. mRNA 3′ uridylation and poly(A) tail length sculpt the mammalian maternal transcriptome. Nature. 548 (7667), 347-351 (2017).
  25. Yang, F., Wang, W., Cetinbas, M., Sadreyev, R. I., Blower, M. D. Genome-wide analysis identifies cis-acting elements regulating mRNA polyadenylation and translation during vertebrate oocyte maturation. RNA. 26 (3), 324-344 (2020).
  26. Magidson, V., Khodjakov, A. Circumventing photodamage in live-cell microscopy. Methods in Cell Biology. 114, 545-560 (2013).
  27. Chen, J., et al. Somatic cells regulate maternal mRNA translation and developmental competence of mouse oocytes. Nature Cell Biology. 15 (12), 1415-1423 (2013).
check_url/fr/62041?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Costermans, N. G. J., Daldello, E. M., Marathe, R. J., Conti, M. Defining the Program of Maternal mRNA Translation during In vitro Maturation using a Single Oocyte Reporter Assay. J. Vis. Exp. (172), e62041, doi:10.3791/62041 (2021).

View Video