Summary

Skøn over indholdet af plantebiomasse lignin ved hjælp af thioglykolsyre (TGA)

Published: July 24, 2021
doi:

Summary

Her præsenterer vi en modificeret TGA-metode til vurdering af ligninindholdet i urteagtig plantebiomasse. Denne metode anslår ligninindholdet ved at danne specifikke tredistre obligationer med lignin og giver en fordel i forhold til Klason-metoden, da den kræver en relativt lille stikprøve til skøn over ligninindholdet.

Abstract

Lignin er en naturlig polymer, der er den næstmest rigelige polymer på Jorden efter cellulose. Lignin er hovedsageligt deponeret i plante sekundære cellevægge og er en aromatisk heteropolymer primært består af tre monolignoler med betydelig industriel betydning. Lignin spiller en vigtig rolle i plantevækst og -udvikling, beskytter mod biotiske og abiotiske belastninger og i kvaliteten af dyrefoder, træ og industrielle ligninprodukter. Et nøjagtigt skøn over ligninindholdet er afgørende for både den grundlæggende forståelse af ligninbiosyntesen og industriel anvendelse af biomasse. Thioglycolic acid (TGA)-metoden er en yderst pålidelig metode til vurdering af det samlede ligninindhold i plantebiomassen. Denne metode anslår ligninindholdet ved at danne dide med benzylalkoholgrupperne af lignin, som er opløselige under alkaliske forhold og uopløselige under sure forhold. Det samlede ligninindhold anslås ved hjælp af en standardkurve genereret fra kommerciel bambus lignin.

Introduction

Lignin er en af de vitale bærende komponenter i plantecellevægge og den næstmest rigelige polymer på Jorden1. Kemisk er lignin en krydskædet heteropolymer bestående af høj molekylvægt komplekse phenolforbindelser, der danner en naturlig vedvarende kilde til aromatiske polymerer og syntese af biomaterialer2,3. Denne naturlige polymer spiller en betydelig rolle i plantevækst, udvikling, overlevelse, mekanisk støtte, cellevæg stivhed, vandtransport, mineraltransport, logiresistens, vævs- og organudvikling, aflejring af energi og beskyttelse mod biotiske og abiotiske belastninger4,5,6,7. Lignin består primært af tre forskellige monolignoler: coniferyl, sinapyl og p-coumaryl alkoholer, der er afledt af phenyl propanoid vej8,9. Mængden af lignin og sammensætningen af monomerer varierer baseret på plantearterne, vævs-/organtypen og forskellige stadier af planteudvikling10. Lignin er bredt klassificeret i nåletræ, hårdttræ og græs lignin baseret på kilden og monolignol sammensætning. Nåletræ består primært af 95% nåletræsalkohol med 4% p-coumaryl og 1% sinapylalkoholer. Hårdttræ har nåletræ og sinapylalkoholer i lige store mængder, mens græs lignin består af forskellige proportioner af nåletræ, sinapyl og p-coumaryl alkoholer11,12. Sammensætningen af monomerer er kritisk, da den bestemmer ligninstyrken, nedbrydningen og nedbrydningen af cellevæggen samt bestemmelse af molekylær struktur, forgrening og krydsning med andre polysaccharider13,14.

Lignin forskning får stadig større betydning i fouragering, tekstilindustrien, papirindustrien, og for bioethanol, biobrændstof, og bio-produkter på grund af sine lave omkostninger og høj overflod15,16. Forskellige kemiske metoder (f.eks acetylbromid, syrevaskemidler, Klason og permanganatoxidation) sammen med instrumentale metoder (f.eks. nær infrarød (NIR) spektroskopi, nuklear magnetisk resonans (NMR) spektroskopi og ultraviolet (UV) spektrofotometri) blev anvendt til ligninkvantificering9,17. Brunkulsanalysemetoderne klassificeres generelt på grundlag af elektromagnetisk stråling, gravimetry og opløselighed. Princippet bag lignin skøn ved elektromagnetisk stråling var baseret på den kemiske egenskab af lignin, hvormed det absorberer lys ved specifikke bølgelængder. Disse resultater blev anslået ud fra princippet om, at lignin har en stærkere UV-absorbans end kulhydrater. I 1962 brugte Bolker og Somerville kaliumchloridpiller til at anslå ligninindholdet i træ18. Denne metode har imidlertid ulemper ved estimering af ligninindholdet fra urteagtige prøver på grund af tilstedeværelsen af ikke-lignin phenolforbindelser og fraværet af en passende udryddelseskoefficient. I 1970 fandt Fergus og Goring, at guaiacyl og syringyl sammensatte absorption maxima var på 280 nm og 270 nm, hvilket korrigerede udryddelseskoefficienten udstedelse af Bolker og Somerville metode19. Senere blev infrarød spektroskopi, en meget følsom teknik til karakterisering af phenolics, også brugt til lignin estimering med en lille mængde plantebiomasseprøver. Et eksempel på en sådan teknologi var diffus-reflektion Fourier transform spektrofotometri. Denne metode mangler imidlertid en ordentlig standard svarende til UV-metoden20. Senere blev ligninindholdet anslået af NIRS (nær infrarød spektroskopi) og NMR (nuklear magnetisk resonansspektroskopi). Selvom der er ulemper ved disse metoder, ændrer de ikke lignins kemiske struktur og bevarer sin renhed20.

Den gravimetriske Klason-metode er en direkte og den mest pålidelige analysemetode til ligninvurdering af træagtige stængler. Grundlaget for gravimetrisk ligninestimering er hydrolyse/opløselighed af ikke-ligninforbindelser og indsamling af uopløselig lignin til gravimetry21. I denne metode fjernes kulhydraterne ved hydrolyse af biomassen med koncentreret H2SO4 for at udtrække ligninrester20,22. Ligninindholdet, der anslås ved denne metode, kaldes syreopløselig lignin eller Klason lignin. Anvendelsen af Klason-metoden afhænger af plantearten, vævstypen og cellevægtypen. Tilstedeværelsen af variable mængder ikke-ligninkomponenter såsom tanniner, polysaccharider og proteiner resulterer i proportionale forskelle i skønnet over indholdet af syre uopløseligt/opløseligt ligninindhold. Derfor anbefales Klason-metoden kun til lignin-estimering af biomasse med højt ligninindhold , såsom træagtige stængler17,23. Opløselighedsmetoder som acetylbromid (AcBr), syreopløselig lignin og thioglykolsyre (TGA) er mest anvendte metoder til vurdering af ligninindholdet fra forskellige kilder til plantebiomasse. Kim et al. etablerede to metoder til ligninudvinding ved opløselighed. Den første metode ekstraherer lignin som en uopløselig rest ved at opløse cellulose og hemicellulose, mens den anden metode adskiller lignin i den opløselige fraktion, hvilket efterlader cellulose og hemicellulose som det uopløselige reststof24.

Lignende metoder, der anvendes i ligninestimering baseret på opløseligheden, er thioglykolsyre (TGA) og acetylsbromidmetoder (AcBr)25. Både TGA- og acetylphidmetoderne anslår ligninindholdet ved at måle absorbansen af den opløselige lignin ved 280 nm; AcBr-metoden nedbryder imidlertid xylans under processen med lignin-opløselighed og viser en falsk stigning i ligninindholdet26. Thioglycolatmetoden (TGA) er den mere pålidelige metode, da den afhænger af specifik binding med de tregående grupper af benzylalkoholgrupper af lignin med TGA. Den TGA-bundne lignin udfældes under sure forhold ved hjælp af HCl, og ligninindholdet anslås ved hjælp af dets absorbans ved 280 nm27. TGA-metoden har yderligere fordele ved mindre strukturelle ændringer, en opløselig form for ligninvurdering, mindre interferens fra ikke-ligninkomponenter og præcis vurdering af lignin på grund af specifik binding med TGA.

Denne TGA-metode ændres på grundlag af den type plantebiomasseprøve, der anvendes til skøn over ligninindholdet. Her ændrede og tilpassede vi den hurtige TGA-metode med risstrå27 til bomuldsvæv for at estimere ligninindholdet. Kort sagt blev de tørrede pulveriserede planteprøver udsat for proteinopløselighedsbuffer og methanolekstraktion for at fjerne proteiner og alkoholopløselig fraktion. Alkoholuopløselige rester blev behandlet med TGA og udfældet lignin under sure forhold. En lignin standardkurve blev genereret ved hjælp af kommerciel bambus lignin og en regressionslinje (y = mx +c) blev opnået. Værdien “x” anvender gennemsnitlige absorbansværdier for lignin ved 280 nm, mens der er indtastet “m” og “c”-værdier fra regressionslinjen for at beregne ukendt ligninkoncentration i prøver af biomasse af bomuldsanlæg. Denne metode er opdelt i fem faser: 1) fremstilling af planteprøver; 2) vask af prøverne med vand og methanol 3) behandling af pellet med TGA og syre til at udfælde lignin; 4) udfældning af lignin; og 5) standardkurveforberedelse og estimering af ligninindholdet af prøven. De to første faser er primært fokuseret på plantematerialepræparatet efterfulgt af vand, PSB (proteinopløselighedsbuffer) og methanolekstraktioner for at opnå alkoholuopløseligt materiale. Derefter blev det behandlet med TGA (thioglycolic syre) og HCl til at danne et kompleks med lignin i tredje fase. I slutningen blev HCl brugt til at udfælde lignin, som blev opløst i natriumhydroxid for at måle dets absorbans ved 280 nm28.

Protocol

1. Udarbejdelse af planteprøver Indsamle to måneder gamle bomuldsplanter fra drivhuset (Figur 1A). Vend urtepotter forsigtigt for at adskille jord og rødder med intakte laterale rødder ved at løsne jorden omkring planten (Figur 1B). Vask de opsamlede planter grundigt i bakker fyldt med vand for at fjerne alt snavs (til rodprøver)(Figur 1C). Brug papirhåndklæder til at tørre adskilte r…

Representative Results

To forskellige bomuldsforsøgslinjer blev sammenlignet for forskelle i deres ligninindhold i forskellige væv. Indholdet af den udvundne lignin i hver prøve blev målt ved 280 nm og registreret dens respektive absorbansværdier. De gennemsnitlige absorbansværdier for hver biologisk replikat blev sammenlignet med regressionslinjen i ligninstandardkurven (tabel 2, figur 3C). Regressionslinjen, y = mx + c, anvendes til at beregne det ukendte ligninindhold i de udvundne forsø…

Discussion

Lignin spiller en væsentlig rolle i plantevækst og -udvikling og er for nylig blevet grundigt undersøgt for anvendelse af biobrændstof, bioenergi og bioprodukter. Lignin er rig på aromatiske forbindelser, der opbevares i alle vaskulære plante sekundære cellevægge. Det har flere industrielle anvendelser såsom træpanel produkter, bio dispergeringsmidler, flocculants, polyurethan skum og i harpikser af kredsløb29,30,31. …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Institut for Plant &Soil Science og Cotton Inc. for deres delvise støtte til denne undersøgelse.

Materials

BioSpectrophotometer kinetic Eppendorf kinetic 6136000010 For measuring absorbance at 280 nm
Centrifuge Eppendorf 5424 For centrifuging  samples
Commercial bamboo lignin Aldrich 1002171289 Used in the preparation of the standard curve
Distilled water Fischer Scientific 16690382 Used in the protocol
Falcon tubes VWR 734-0448 Containers for solutions
Freezer mill Spex Sample Prep 68-701-15 For fine grinding of plant tissue samples
Heat block/ Thermal mixer Eppendorf 13527550 For temperature controlled steps during lignin extraction
Hotplate stirrer Walter WP1007-HS Used for preparation of solutions
Hydrochloric acid (HCL) Sigma 221677 Used in the protocol
Incubator Fisherbrand 150152633 For thorough drying of plant tissue samples
Measuring scale Mettler toledo 30243386 For measuring plant tissue weight, standards and microfuge tubes
Methanol (100 %) Fischer Scientific 67-56-1 Used in the protocol
Microfuge tubes (2 mL) Microcentrifuge Z628034-500EA Containers for extraction of lignin
Plant biomass gerinder Hanchen Amazon Used for crushing dried samples
pH meter Fisher Scientific AE150 Measuring pH for solutions prepared for lignin extraction
Temperature controlled incubator/oven Fisher Scientific 15-015-2633 Used in the protocol
Thioglycolic acid (TGA) Sigma Aldrich 68-11-1 Used in the protocol
Vacuum dryer Eppendorf 22820001 Used for drying samples
Vortex mixer Eppendorf 3340001 For proper mixing of samples

References

  1. Freudenberg, K., Neish, A. C. . Constitutionand Biosynthesis of Lignin. , 129 (1968).
  2. Chio, C., Sain, M., Qin, W. Lignin utilization: A review of lignin depolymerization from various aspects. Renewable and Sustainable Energy Reviews. 107, 232-249 (2019).
  3. Sun, Z., Fridrich, B., de Santi, A., Elangovan, S., Barta, K. Bright Side of Lignin Depolymerization: Toward New Platform Chemicals. Chemical Reviews. 118, 614-678 (2018).
  4. Xu, F., Sun, R. C. . Cereal Straw as a Resource for Sustainable Biomaterials and Biofuels. , 9-47 (2010).
  5. Liu, Q., Luo, L., Zheng, L. Lignins: Biosynthesis and Biological Functions in Plants. International Journal of Molecular Sciences. 19, 335 (2018).
  6. Ithal, N., et al. Developmental transcript profiling of cyst nematode feeding cells in soybean roots. Molecular Plant-Microbe Interactions. 20, 510-525 (2007).
  7. Moura, J. C. M. S., et al. Abiotic and Biotic Stresses and Changes in the Lignin Content and Composition in Plants. Journal of Integrative Plant Biology. 52, 360-376 (2010).
  8. Vanholme, R., Morreel, K., Ralph, J., Boerjan, W. Lignin engineering. Current Opinion In Plant Biology. 11, 278-285 (2008).
  9. Lupoi, J. S., Singh, S., Parthasarathi, R., Simmons, B. A., Henry, R. J. Recent innovations in analytical methods for the qualitative and quantitative assessment of lignin. Renewable and Sustainable Energy Reviews. 49, 871-906 (2015).
  10. Mendu, V., et al. Identification and thermochemical analysis of high-lignin feedstocks for biofuel and biochemical production. Biotechnology for Biofuels. 4, 43 (2011).
  11. Shrotri, A., Kobayashi, H., Fukuoka, A., Song, C. . Advances in Catalysis. 60, 59-123 (2017).
  12. Brunow, G. . Biorefineries-Industrial Processes and Products: Status Quo and Future Directions. 2, 151-163 (2008).
  13. Constant, S., et al. New insights into the structure and composition of technical lignins: a comparative characterisation study. Green Chemistry. , (2016).
  14. Shimada, N., Tsuyama, T., Kamei, I. Rapid Determination of Thioglycolic Acid Lignin for Various Biomass Samples. Mokuzai Gakkaishi. 65, 25-32 (2019).
  15. Li, X., Weng, J. K., Chapple, C. Improvement of biomass through lignin modification. The Plant Journal: For Cell and Molecular Biology. 54, 569-581 (2008).
  16. Ponnusamy, V. K., et al. A review on lignin structure, pretreatments, fermentation reactions and biorefinery potential. Bioresource Technology. 271, 462-472 (2019).
  17. Hatfield, R., Fukushima, R. S. Can Lignin Be Accurately Measured. Crop Science. 45, 832-839 (2005).
  18. Bolker, H., Somerville, N. Ultraviolet spectroscopicstudies of lignin in solid state. I. Isolated lignin preparations. Tappi Journal. 72, 826-829 (1962).
  19. Fergus, B. J., Goring, D. A. I. The distribution of lignin in birchwood as determined by ultraviolet microscopy. Holzforschung. 24, 118-124 (1970).
  20. Schultz, T. P., Templeton, M. C., McGinnis, G. D. Rapid determination of lignocellulose by diffuse reflectance Fourier transform infrared spectrometry. Analytical Chemistry. 57, 2867-2869 (1985).
  21. Dence, C. W., Lin, S. Y., Dence, C. W. The Determination of Lignin. Methods in Lignin Chemistry. , (1992).
  22. Adler, E. Lignin chemistry-past, present and future. Wood Science and Technology. 11, 169-218 (1977).
  23. Brinkmann, K., Blaschke, L., Polle, A. Comparison of different methods for lignin determination as a basis for calibration of near-infrared reflectance spectroscopy and implications of lignoproteins. Journal of Chemical Ecology. 28, 2483-2501 (2002).
  24. Pandey, M. P., Kim, C. S. Lignin Depolymerization and Conversion: A Review of Thermochemical Methods. Chemical Engineering & Technology. 34, 29-41 (2011).
  25. Moreira-Vilar, F. C., et al. The acetyl bromide method is faster, simpler and presents best recovery of lignin in different herbaceous tissues than Klason and thioglycolic acid methods. PLoS One. 9, 110000 (2014).
  26. Hatfield, R. D., Grabber, J., Ralph, J., Brei, K. Using the Acetyl Bromide Assay To Determine Lignin Concentrations in Herbaceous Plants: Some Cautionary Notes. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 47, 628-632 (1999).
  27. Suzuki, S., et al. High-throughput determination of thioglycolic acid lignin from rice. Plant Biotechnology. 26, 337-340 (2009).
  28. Nakatsubo, F., Tanahashi, M., Higuchi, T. Acidolysis of Bamboo Lignin II : Isolation and Identification of Acidolysis Products. Wood research. 53, 9-18 (1972).
  29. Aro, T., Fatehi, P. Production and Application of Lignosulfonates and Sulfonated Lignin. ChemSusChem. 10, 1861-1877 (2017).
  30. Frei, M. Lignin: Characterization of a Multifaceted Crop Component. The Scientific World Journal. 2013, 436517 (2013).
  31. Lora, J. H., Glasser, W. G. Recent Industrial Applications of Lignin: A Sustainable Alternative to Nonrenewable Materials. Journal of Polymers and the Environment. 10, 39-48 (2002).
  32. Wang, R., Zhou, B., Wang, Z. Study on the Preparation and Application of Lignin-Derived Polycarboxylic Acids. Journal of Chemistry. 2019, 5493745 (2019).
  33. Welker, C. M., et al. Engineering Plant Biomass Lignin Content and Composition for Biofuels and Bioproducts. Energies. 8, 7654-7676 (2015).
  34. Mendu, V., et al. Global bioenergy potential from high-lignin agricultural residue. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109, 4014-4019 (2012).
  35. Brinkmann, K., Blaschke, L., Polle, A. Comparison of Different Methods for Lignin Determination as a Basis for Calibration of Near-Infrared Reflectance Spectroscopy and Implications of Lignoproteins. Journal of Chemical Ecology. 28, 2483-2501 (2002).
  36. Moreira-Vilar, F. C., et al. The Acetyl Bromide Method Is Faster, Simpler and Presents Best Recovery of Lignin in Different Herbaceous Tissues than Klason and Thioglycolic Acid Methods. PLoS One. 9, 110000 (2014).
  37. Iwaasa, A. D., Beauchemin, K. A., Acharya, S. N., Buchanan-Smith, J. G. Effect of stage of maturity and growth cycle on shearing force and cell wall chemical constituents of alfalfa stems. Canadian Journal of Animal Science. 76, 321-328 (1996).
  38. Arai-Sanoh, Y., et al. Genotypic Variations in Non-Structural Carbohydrate and Cell-Wall Components of the Stem in Rice, Sorghum, and Sugar Vane. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. , 1105072478 (2011).
check_url/fr/62055?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Dampanaboina, L., Yuan, N., Mendu, V. Estimation of Plant Biomass Lignin Content using Thioglycolic Acid (TGA). J. Vis. Exp. (173), e62055, doi:10.3791/62055 (2021).

View Video