Summary

3D Imaging af PDL Kollagen Fibre under ortodontisk tand bevægelse i Mandibular Murine Model

Published: April 15, 2021
doi:

Summary

Vi præsenterer en protokol for generering af ortodontisk tandbevægelse i mus og metoder til 3D-visualisering af kollagenfibre og blodkar af parodontal ligament uden sektionsopdelt.

Abstract

Ortodontisk tand bevægelse er en kompleks biologisk proces med ændret blødt og hårdt væv remodeling som følge af eksterne kræfter. For at forstå disse komplekse ombygningsprocesser er det afgørende at studere tand- og parodontale væv inden for deres 3D-kontekst og derfor minimere eventuelle sektions- og vævsgenstande. Musemodeller bruges ofte i udviklings- og strukturbiologi såvel som i biomekanik på grund af deres lille størrelse, høje stofskifte, genetik og nem håndtering. I princippet gør dette dem også fremragende modeller til tandrelaterede undersøgelser. Men en stor hindring er deres lille tandstørrelse, især molarerne. Dette papir har til formål at give en trin for trin protokol for at generere ortodontiske tand bevægelse og to metoder til 3D-billeddannelse af parodontale ligament fiberkomponenten i en mus mandibular molar. Den første præsenterede metode er baseret på en mikro-CT setup muliggør fase ekstraudstyr billeddannelse af friske kollagen væv. Den anden metode er en knoglerydningsmetode ved hjælp af ethylcinnamat, der muliggør billeddannelse gennem knoglen uden at sektionsopdele og bevarer endogen fluorescens. Kombination af denne clearingmetode med reportermus som Flk1Cre; TdTomato gav en første af sin slags mulighed for at afbilde 3D-vaskulaturen i PDL- og alveolarbenet.

Introduction

Den grundlæggende underliggende biologiske proces i ortodontisk tand bevægelse (OTM) er knogle remodeling. Udløseren til denne remodeling proces tilskrives ændringer i strukturen af parodontale ligament (PDL) såsom ekstracellulær matrix (ECM) stress, nekrose samt blodkar ødelæggelse ogdannelse 1,2,3. Andre mulige udløsere til alveolar knogle remodeling er relateret til kraft sensing af osteocytter i knoglen, samt mekanisk deformation af alveolar knoglen selv; deres rolle i OTM er dog stadig ikke fuldt ud belyst4,5.

På trods af mange undersøgelser, der har til formål at afsløre PDL’s strukturfunktionsrelationer under OTM , er der endnu ikke defineret en klar funktionel mekanisme6,7. Hovedårsagen til dette er udfordringen med at hente data fra et blødt væv (PDL) placeret mellem to hårde væv (cementum og alveolar knogle). De accepterede metoder til at indsamle strukturelle oplysninger kræver normalt fiksering og sektionsopderinger, der forstyrrer og ændrer PDL-strukturen. Desuden giver de fleste af disse metoder 2D-data, der, selvom de ikke fordrejes, kun giver delvise og lokaliserede oplysninger. Da PDL ikke er ensartet i sin struktur og funktion, er en tilgang, der adresserer den intakte 3D-struktur i hele tand-PDL-knoglekomplekset, berettiget.

Dette papir vil beskrive en metode til at generere en OTM i mus og to metoder, der muliggør 3D-visualisering af kollagenfibrene i PDL uden nogen opdeling af prøven.

Murine modeller er meget udbredt til in-vivo eksperimenter inden for medicin, udviklingsbiologi, medicin levering og strukturelle undersøgelser. De kan genetisk modificeres for at fjerne eller forbedre specifikke proteiner og funktioner; de giver hurtig, repeterbar og forudsigelig udviklingsmæssig kontrol de er også nemme at billedet på grund af deres lille størrelse8. På trods af deres mange fordele anvendes musemodeller i tandforskning ikke ofte, især når kliniske manipulationer er berettiget, hovedsagelig på grund af de små tænder. Dyremodeller som rotter9,10,11, hunde12,13,grise14,15,16 og aber17 bruges oftere end mus. Med den nylige udvikling af høj opløsning billedbehandling teknikker, fordelene ved at bruge en mus model til at dechifrere de indviklede processer i OTM er talrige. Dette papir præsenterer en metode til at generere en mesial bevægelse af molar tand i underkæben med konstant kraft niveauer, der udløser knogle remodeling. De fleste OTM-eksperimenter i gnavere udføres i maxillaen, da mandiblens mobilitet og tilstedeværelsen af tungen tilføjer et andet kompleksitetsniveau. Men underkæbe har mange fordele, når 3D strukturel integritet ønskes. Det kan let dissekeres som en hel knogle; i nogle arter kan det opdeles i to hemi-mandibler gennem fiber symphysis; den er kompakt, flad og indeholder kun tænderne uden sinus rum. I modsætning hertil er maxillaen en del af kraniet og tæt forbundet med andre organer og strukturer, således er omfattende sektionsopdelte nødvendige for at dissekere alveolarbenet med de tilhørende tænder.

Ved hjælp af en in house fugtighed kammer koblet til en lastning system inde i en høj opløsning mikro-CT, der muliggør fase ekstraudstyr, vi udviklet en metode til at visualisere friske fibervæv i 3D som tidligere beskrevet9,18,19,20,21,22,23. Frisk væv scannes umiddelbart efter, at dyret er ofret uden farvning eller fiksering, hvilket reducerer vævsgenstande samt ændringer af biomekaniske egenskaber. Disse 3D-data kan bruges til distributions- og retningsanalyser af fibrene som beskrevet andetsteds19.

Den anden 3D hele væv billeddannelse metode præsenteret her er baseret på optisk clearing af mandiblen, som gør det muligt billeddannelse af PDL fibre gennem knoglen uden nogen sektion. Interessant det gør det også muligt visualisering af kollagen fibre af knoglen selv, men dette vil ikke blive diskuteret her. Generelt er der to metoder til vævsrydning. Den første er vandig-baseret clearing, hvor prøven er nedsænket i en vandig opløsning med et brydningsindeks større end 1,4 enten gennem en simpel nedsænkning, hyperhydrering eller hydrogel indlejring. Denne metode er imidlertid begrænset i graden af gennemsigtighed såvel som den strukturelle bevarelse af vævet og kræver derfor fiksering af vævet. Den anden metode, der giver meget gennemsigtige prøver og ikke kræver fiksering, er den opløsningsmiddelbaserede clearingmetode24,25. Vi genererede en modificeret opløsningsmiddelbaseret clearingmetode baseret på ethyl-3-phenylprop-2-enoate (ethylcinnamat, ECi) til mandibularprøverne. Denne metode har fordelene ved at bruge ikke-giftige fødevarer-grade clearing agent, minimal væv svind, og bevarelse af fluorescerende proteiner.

Protocol

Alle dyreforsøg blev udført i overensstemmelse med NIH’s retningslinjer for pleje og brug af forsøgsdyr og retningslinjer fra Harvard University Institutional Animal Care and Use Committee (protokol nr. 01840). 1. Ortodontisk tand bevægelse For at generere en museseng skal du bruge en flad plastplatform med en kileformet, 45° vinklet nakkestøtte. Nakkestøtten kan genereres ved at skære en plastikkasse. Løft platformens hovedende for at generere en ca. 30° vinkel mel…

Representative Results

Dette papir præsenterer en metode til at producere OTM samt to metoder til 3D-billeddannelse af kollagenfibre inde i PDL uden nogen sektion. Til dyreforskningsformål, når tilpasning af tænderne ikke er nødvendig, betragtes en tandbevægelse som ortodontisk, hvis den genererer remodeling af alveolarbenet på alle rodniveauer. Konstant kraftniveau, der påføres tænder, er påkrævet for at generere en pålidelig OTM. Her bruges en aktiveret form-hukommelse NiTi spole til at generere en ensartet kraft på 10 g i hele…

Discussion

Generering af OTM hos mus er meget ønsket på grund af størrelse, genetik og håndteringsfordele. Brug af mandiblen giver en nem håndtering både med hensyn til vævsdissektion samt prøveforberedelse og billeddannelse. Her præsenterede vi en metode til at generere OTM med translationel bevægelse af tanden inde i knoglen inden for 7 dage efter OTM. Ved hjælp af denne protokol kan tandbevægelsens samlede varighed forlænges, da den aktiverede spole leverer et konstant kraftniveau for bevægelse på op til ca. 1 mm….

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse blev støttet af NIH (NIDCR R00- DE025053, PI:Naveh). Vi vil gerne takke Harvard Center for Biological Imaging for infrastruktur og støtte. Alle tal genereres med biorender.com.

Materials

1-mL BD Luer-Lok syringe BD 309628
1X phosphate buffered saline VWR Life Sciences 0780-10L
200 proof ethanol VWR Life Sciences V1016
Aluminum alloy 5019 wire Sigma-aldrich GF15828813 0.08 mm diameter wire, length 100th, temper hard. Used as wire ligature around molar.
Avizo 9.7 Thermo Fisher Scientific N/A Used to analyze microCT scans
Castroviejo Micro Needle Holders Fine Science Tools 12060-01
Clr Plan-Apochromat 20x/1.0,CorrVIS-IR M27 85mm Zeiss N/A Used for second harmonic generation imaging
Cone socket handle, single ended, hand-form G.Hartzell and son 126-CSH3 Handle of the inspection mirror
EC Plan-Neofluar 5x/0.16 Zeiss 440321-9902 Used for light-sheet imaging
Elipar DeepCure-S LED curing light 3M ESPE 76985
Eppendorf safe-lock tubes, 1.5mL Eppendorf 22363204
Ethyl cinnamate, >= 98% Sigma-aldrich W243000-1KG-K
Hypodermic Needle, 27G x 1/2'' BD 305109
Ketathesia 100mg/ml Henry Schein Animal Health NDC:11695-0702-1
KIMWIPES delicate task wipers Kimberly-Clark 21905-026 (VWR Catalog number) Purchased from VWR
LightSheet Z.1 dual illumination microscope system Zeiss LightSheet Z.1/LightSheet 7 Used for lightsheet imaging
LSM 880 NLO multi-photon microscope Zeiss LSM 880 NLO Used for two-photon imaging
MEGAmicro, plane, 5mm dia, SS-Thread Hahnenkratt 6220 Front surface inspectrio mirror
MicroCT machine, MicroXCT-200 Xradia MICRO XCT-200
Mini-Colibri Fine Science Tools 17000-01
PermaFlo Flowable Composite Ultradent 948
Procedure platform N/A N/A Custom-made from lab materials
Routine stereo micscope M80 Leica Micosystems M80
Sentalloy NiTi open coil spring TOMY Inc. A 0.15mm diameter closed NiTi coil with an inner coil diameter of 0.9mm delivers a force of 10g. Similar products can be purchased from Dentsply Sirona. 
T-304 stainless steel ligature wire, 0.009'' diameter Orthodontics SBLW109 0.009''(.23mm) diameter, Soft temper
X-Ject E (Xylazine) 100mg/ml Henry Schein Animal Health NDC:11695-7085-1
Z100 Restorative, A2 shade 3M ESPE 5904A2

References

  1. Li, Y., et al. Orthodontic tooth movement: The biology and clinical implications. The Kaohsiung Journal of Medical Sciences. 34 (4), 207-214 (2018).
  2. Meikle, M. C. The tissue, cellular, and molecular regulation of orthodontic tooth movement: 100 years after Carl Sandstedt. European Journal of Orthodontics. 28, 221-240 (2006).
  3. Krishnan, V., Davidovitch, Z., molecular, Cellular, molecular, and tissue-level reactions to orthodontic force. American Journal of Orthodontics and Dentofacial Orthopedics. 129 (4), 1-32 (2006).
  4. Shoji-Matsunaga, A., et al. Osteocyte regulation of orthodontic force-mediated tooth movement via RANKL expression. Scientific Reports. 7 (1), 8753 (2017).
  5. Oppenheim, A. Tissue changes, particularly of the bone, incident to tooth movement. European Journal of Orthodontics. 29, 2-15 (2007).
  6. Unnam, D., et al. Accelerated Orthodontics-An overview. Journal of Archives of Oral Biologyogy and Craniofacial Research. 3 (1), 4 (2018).
  7. von Bohl, M., Kuijpers-Jagtman, A. M. Hyalinization during orthodontic tooth movement : a systematic review on tissue reactions. European Journal of Orthodontics. 31 (1), 30-36 (2009).
  8. Kirschneck, C., et al. Comparative assessment of mouse models for experimental orthodontic tooth movement. Scientific Reports. 10 (1), 1-12 (2020).
  9. Naveh, G. R. S., Weiner, S. Initial orthodontic tooth movement of a multirooted tooth: a 3D study of a rat molar. Orthodontics & Craniofacial Research. 18 (3), 134-142 (2015).
  10. Nakamura, Y., et al. Time-lapse observation of rat periodontal ligament during function and tooth movement, using microcomputed tomography. European Journal of Orthodontics. 30 (3), 320-326 (2008).
  11. Kawarizadeh, A., Bourauel, C., Jager, A. Experimental and numerical determination of initial tooth mobility and material properties of the periodontal ligament in rat molar specimens. European Journal of Orthodontics. 25 (6), 569-578 (2003).
  12. Jónsdóttir, S. H., Giesen, E. B. W., Maltha, J. C. Biomechanical behavior of the periodontal ligament of the beagle dog during the first 5 hours of orthodontic force application. European Journal of Orthodontics. 28, 547 (2006).
  13. Lindhe, J., et al. Experimental breakdown of peri-implant and periodontal tissues. A study in the beagle dog. Clinical Oral Implants Research. 3 (1), 9-16 (1992).
  14. Salamati, A., et al. Functional tooth mobility in young pigs. Journal of Biomechanics. 104, 109716 (2020).
  15. Maria, R., et al. An unusual disordered alveolar bone material in the upper furcation region of minipig mandibles: A 3D hierarchical structural study. Journal of Structural Biology. 206 (1), 128-137 (2019).
  16. Wang, S., et al. The miniature pig: a useful large animal model for dental and orofacial research. Oral Diseases. 10, 1-7 (2007).
  17. Melsen, B. Tissue reaction to orthodontic tooth movement–a new paradigm. European Journal of Orthodontics. 23 (6), 671-681 (2001).
  18. Naveh, G. R. S., et al. Direct MicroCT imaging of non-mineralized connective tissues at high resolution. Connective Tissue Research. 55 (1), 52-60 (2014).
  19. Naveh, G. R. S., et al. Nonuniformity in ligaments is a structural strategy for optimizing functionality. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (36), 9008 (2018).
  20. Naveh, G. R. S., et al. Tooth periodontal ligament: Direct 3D microCT visualization of the collagen network and how the network changes when the tooth is loaded. Journal of Structural Biology. 181 (2), 108-115 (2013).
  21. Naveh, G. R. S., et al. Tooth movements are guided by specific contact areas between the tooth root and the jaw bone : A dynamic 3D microCT study of the rat molar. Journal of Structural Biology. 17 (2), 477-483 (2012).
  22. Naveh, G. R. S., et al. Tooth-PDL-bone complex: Response to compressive loads encountered during mastication -A review. Archives of Oral Biology. 57 (12), 1575-1584 (2012).
  23. Ben-Zvi, Y., et al. Response of the tooth-periodontal ligament-bone complex to load: A microCT study of the minipig molar. Journal of Structural Biology. 205 (2), 155-162 (2019).
  24. Klingberg, A., et al. Fully Automated Evaluation of Total Glomerular Number and Capillary Tuft Size in Nephritic Kidneys Using Lightsheet Microscopy. Journal of the American Society of Nephrology. 28 (2), 452 (2017).
  25. Richardson, D. S., Lichtman, J. W. Clarifying Tissue Clearing. Cell. 162 (2), 246-257 (2015).
  26. Taddei, S. R. d. A., et al. Experimental model of tooth movement in mice: A standardized protocol for studying bone remodeling under compression and tensile strains. Journal of Biomechanics. 45 (16), 2729-2735 (2012).
  27. Nakamura, K., Sahara, N., Deguchi, T. Temporal changes in the distribution and number of macrophage-lineage cells in the periodontal membrane of the rat molar in response to experimental tooth movement. Archives of Oral Biology. 46 (7), 593-607 (2001).
  28. Rygh, P., et al. Activation of the vascular system: A main mediator of periodontal fiber remodeling in orthodontic tooth movement. American Journal of Orthodontics and Dentofacial Orthopedics. 89 (6), 453-468 (1986).
  29. Nagao, M., et al. Vascular endothelial growth factor in cartilage development and osteoarthritis. Scientific Reports. 7 (1), 13027 (2017).
  30. Licht, A. H., et al. Endothelium-specific Cre recombinase activity in flk-1-Cre transgenic mice. Developmental Dynamics. 229 (2), 312-318 (2004).
  31. Connizzo, B. K., Naveh, G. R. S. In situ AFM-based nanoscale rheology reveals regional non-uniformity in viscoporoelastic mechanical behavior of the murine periodontal ligament. Journal of Biomechanics. 111, 109996 (2020).
  32. Connizzo, B. K., et al. Nonuniformity in Periodontal Ligament: Mechanics and Matrix Composition. Journal of Dental Research. 2, 179-186 (2020).
check_url/fr/62149?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Xu, H., Lee, A., Sun, L., Naveh, G. R. S. 3D Imaging of PDL Collagen Fibers during Orthodontic Tooth Movement in Mandibular Murine Model. J. Vis. Exp. (170), e62149, doi:10.3791/62149 (2021).

View Video