Summary

Opprette Avian Forebrain Chimeras for å vurdere ansiktsutvikling

Published: February 18, 2021
doi:

Summary

Denne artikkelen beskriver en vevstransplantasjonsteknikk som ble designet for å teste signalerings- og mønsteregenskapene til basal forhjerne under kraniofacial utvikling.

Abstract

Fugleembryoet har blitt brukt som modellsystem i mer enn et århundre og har ført til grunnleggende forståelse av virveldyrutvikling. En av styrkene til dette modellsystemet er at effekten av og interaksjonen mellom vev kan vurderes direkte i kimære embryoer. Vi har tidligere vist at signaler fra forhjernen bidrar til ansiktsmorfogenese ved å regulere formen på uttrykksdomenet til Sonic hedgehog (SHH) i Frontonasal Ectodermal Zone (FEZ). I denne artikkelen beskrives metoden for å generere forhjernekimærene og gi illustrasjoner av resultatene av disse forsøkene.

Introduction

Mye moderne forskning innen utviklingsbiologi fokuserer på genenes rolle i å forme embryoer. Det finnes gode verktøy for å undersøke utviklingsmekanismer fra et genetisk perspektiv. Imidlertid er embryoer samlet og gjennomgår morfogenese som respons på vevsinteraksjoner. Fuglesystemet er et klassisk verktøy som brukes til å vurdere ulike vevsinteraksjoner som regulerer utviklingen av følgende grunner: embryologien er godt forstått, embryoene er lett tilgjengelige, verktøy for analyse av aviære systemer er godt utviklet, og embryoene er billige.

Fugletransplantasjonssystemet har vært mye brukt for avstamningssporing og for å vurdere vevsinteraksjoner under utvikling i nesten et århundre 1,2,3,4. Dette systemet ble brukt til å undersøke et signalsenter, Frontonasal Ectodermal Zone (FEZ), som regulerer morfogenese i overkjeven5, og en video ble publisert som beskriver denne teknikken tidligere6. I tillegg til vaktelkylling har andre arter også blitt brukt til å produsere kimærer for analyse av vevsinteraksjoner. For eksempel ble musen FEZ transplantert fra vill type7 og mutante mus8, og andre har brukt et ande-, vaktel- og kyllingsystem for å vurdere rollen som nevralkam i mønster av ansiktsskjelettet 9,10,11,12.

I dette arbeidet ble forhjernens rolle i å regulere mønsteret av genuttrykk i FEZ ved å transplantere den ventrale forhjernen gjensidig blant vaktel-, and- og kyllingembryoer vurdert, fordi et signal fra forhjernen er nødvendig for å indusere Sonic pinnsvinuttrykk i FEZ. Forhjernetransplantasjoner er ikke unike i feltet. Disse transplantasjonene ble brukt til å vurdere utviklingen av motilitet i vaktel- og andeembryoer13, men i disse forsøkene ble vev som bidro til ikke-nevrale derivater også transplantert. I annet arbeid har hørselskretser hos fugler blitt vurdert ved hjernetransplantasjon14, men disse transplantasjonene inneholdt presumptive nevrale kamceller, som bidrar til ansiktsform 9,10 og deltar i regulering av SHH-uttrykk i FEZ 15. Derfor ble det utviklet et system for å transplantere bare den ventrale forhjernen fra en fugleart til en annen før lukking av nevralrøret for å vurdere hjernens rolle i ansiktsform16 (figur 1A,B). Denne metoden var blottet for nevralkamforurensning av transplantatet. I denne artikkelen illustreres metoden og de forventede resultatene beskrives, og utfordringene drøftes.

Protocol

Hvit pekinand (Anas platyrhynchos), hvit leghornkylling (Gallus gallus) og japansk vaktel (Cortunix coturnix japonica) ruges ved 37 °C i et fuktet kammer til den matches på HH7/817. 1. Klargjøring av donorvevet MERK: Fremstilling av reagenser og verktøy og hvordan man åpner egg for eksperimentell manipulasjon er beskrevet6. Forbered DMEM-medier med nøytral rød, en glassoverf?…

Representative Results

Vurdering av kimerisme og transplantasjonsforurensningFor å vurdere kimærene, bør omfanget av kimerisme og forurensning av transplantatet med andre celletyper behandles. Å lage kimærer ved å transplantere vaktelvev i kyllingembryoer muliggjør denne typen analyse. Ved hjelp av QCPN-antistoffet kan vaktelceller visualiseres og skilles fra vertsvevet (figur 1 C,D). I dette tilfellet ble bare vev avledet fra den ventrale forhjernen farget med antistof…

Discussion

Den beskrevne metoden tillater undersøkelse av vevsinteraksjonene mellom den basale forhjernen og den tilstøtende ektodermen. Denne tilnærmingen skiller seg fra tidligere forhjernetransplantasjonsmetoder, fordi donorvevet var begrenset til den ventrale forhjernen. Dette eliminerer transplantasjon av nevrale kamceller, som har vist seg å delta i mønster ansikts morfologi 9,10. Derfor var det viktig å begrense transplantatet til basal forhjerne for å evaluer…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forskning rapportert i denne publikasjonen ble støttet av National Institute of Dental and Craniofacial Research av National Institutes of Health under tildelingsnummer R01DE019648, R01DE018234 og R01DE019638.

Materials

1x PBS TEK TEKZR114
35×10 mm Petri dish Falcon 1008
DMEM Thermofisher 11965084
Needle holder Fine Science Tools 26016-12
Neutral Red Sigma 553-24-2
No. 5 Dumont forceps Fine Science Tools 11252-20
Pasteur Pipets Thermofisher 13-678-6B
QCPN antibody Developmental Studies Hybridoma bank, Iowa University, Iowa, USA
Scissors Fine Science Tools 14058-11
Tungsten Needle Fine Science Tools 26000

References

  1. Waddington, C. Developmental Mechanics of Chicken and Duck Embryos. Nature. 125, 924-925 (1930).
  2. Noden, D. M. The role of the neural crest in patterning of avian cranial skeletal, connective, and muscle tissues. Biologie du développement. 96 (1), 144-165 (1983).
  3. Borue, X., Noden, D. M. Normal and aberrant craniofacial myogenesis by grafted trunk somitic and segmental plate mesoderm. Development. 131 (16), 3967-3980 (2004).
  4. Teillet, M. A., Ziller, C., Le Douarin, N. M. Quail-chick chimeras. Methods in Molecular Biology. 461, 337-350 (2008).
  5. Hu, D., Marcucio, R. S., Helms, J. A. A zone of frontonasal ectoderm regulates patterning and growth in the face. Development. 130 (9), 1749-1758 (2003).
  6. Hu, D., Marcucio, R. S. Assessing signaling properties of ectodermal epithelia during craniofacial development. Journal of Visualized Experiments. (49), (2011).
  7. Hu, D., Marcucio, R. S. Unique organization of the frontonasal ectodermal zone in birds and mammals. Biologie du développement. 325 (1), 200-210 (2009).
  8. Griffin, J. N., et al. Fgf8 dosage determines midfacial integration and polarity within the nasal and optic capsules. Biologie du développement. 374 (1), 185-197 (2013).
  9. Schneider, R. A., Helms, J. A. The cellular and molecular origins of beak morphology. Science. 299 (5606), 565-568 (2003).
  10. Tucker, A. S., Lumsden, A. Neural crest cells provide species-specific patterning information in the developing branchial skeleton. Evolution & Development. 6 (1), 32-40 (2004).
  11. Fish, J. L., Schneider, R. A. Assessing species-specific contributions to craniofacial development using quail-duck chimeras. Journal of Visualized Experiments. (87), (2014).
  12. Schneider, R. A. Neural crest and the origin of species-specific pattern. Genesis. 56 (6-7), 23219 (2018).
  13. Sohal, G. S. Effects of reciprocal forebrain transplantation on motility and hatching in chick and duck embryos. Brain Research. 113 (1), 35-43 (1976).
  14. Chen, C. C., Balaban, E., Jarvis, E. D. Interspecies avian brain chimeras reveal that large brain size differences are influenced by cell-interdependent processes. PLoS One. 7 (7), 42477 (2012).
  15. Hu, D., Marcucio, R. S. Neural crest cells pattern the surface cephalic ectoderm during FEZ formation. Developmental Dynamics. 241 (4), 732-740 (2012).
  16. Hu, D., et al. Signals from the brain induce variation in avian facial shape. Developmental Dynamics. 244 (9), 1133-1143 (2015).
  17. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88 (1), 49-92 (1951).
  18. Xu, Q., et al. Correlations Between the Morphology of Sonic Hedgehog Expression Domains and Embryonic Craniofacial Shape. Evolutionary Biology. 42 (3), 379-386 (2015).
  19. Eames, B. F., Schneider, R. A. The genesis of cartilage size and shape during development and evolution. Development. 135 (23), 3947-3958 (2008).
  20. Merrill, A. E., Eames, B. F., Weston, S. J., Heath, T., Schneider, R. A. Mesenchyme-dependent BMP signaling directs the timing of mandibular osteogenesis. Development. 135 (7), 1223-1234 (2008).
check_url/fr/62183?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Hu, D., Marcucio, R. S. Creating Avian Forebrain Chimeras to Assess Facial Development. J. Vis. Exp. (168), e62183, doi:10.3791/62183 (2021).

View Video