Hier stellen wir ein Schritt-für-Schritt-Protokoll vor, um reife menschliche Netzhautorganoide zu erzeugen und sie in einem Photorezeptor-Toxizitätstest zu verwenden, um pharmazeutische Kandidaten für die altersbedingte retinale degenerative Erkrankung Makulateleangiektasien Typ 2 (MacTel) zu identifizieren.
Organoide bieten eine vielversprechende Plattform, um Krankheitsmechanismen und Behandlungen direkt im Kontext von menschlichem Gewebe mit der Vielseitigkeit und dem Durchsatz von Zellkulturen zu untersuchen. Reife humane Netzhautorganoide werden verwendet, um potenzielle pharmazeutische Behandlungen für die altersbedingte retinale degenerative Erkrankung Makulateleangiektasien Typ 2 (MacTel) zu untersuchen.
Wir haben kürzlich gezeigt, dass MacTel durch erhöhte Konzentrationen einer atypischen Lipidspezies, der Desoxysphingolipide (DesoxySLs), verursacht werden kann. Diese Lipide sind toxisch für die Netzhaut und können den Photorezeptorverlust verursachen, der bei MacTel-Patienten auftritt. Um Medikamente auf ihre Fähigkeit zu untersuchen, die Toxizität von DesoxySL-Photorezeptoren zu verhindern, erzeugten wir humane Netzhautorganoide aus einer nicht-MacTel-induzierten pluripotenten Stammzelllinie (iPSC) und reiften sie bis zu einem postmitotischen Alter, in dem sie alle von der neuronalen Linie abgeleiteten Zellen der Netzhaut entwickeln, einschließlich funktionell reifer Photorezeptoren. Die retinalen Organoide wurden mit einem DesoxySL-Metaboliten behandelt und die Apoptose innerhalb der Photorezeptorschicht mittels Immunhistochemie gemessen. Unter Verwendung dieses Toxizitätsmodells wurden pharmakologische Verbindungen, die den DesoxySL-induzierten Photorezeptortod verhindern, untersucht. Mit einem gezielten Kandidatenansatz stellten wir fest, dass Fenofibrat, ein Medikament, das üblicherweise zur Behandlung von hohem Cholesterinspiegel und Triglyceriden verschrieben wird, auch die DesoxySL-Toxizität in den Zellen der Netzhaut verhindern kann.
Das Toxizitäts-Screening identifizierte erfolgreich ein von der FDA zugelassenes Medikament, das den Tod von Photorezeptoren verhindern kann. Dies ist aufgrund des getesteten hochgradig krankheitsrelevanten Modells ein direkt umsetzbarer Befund. Diese Plattform kann leicht modifiziert werden, um eine beliebige Anzahl von metabolischen Stressoren und potenziellen pharmakologischen Interventionen für die zukünftige Behandlungsforschung bei Netzhauterkrankungen zu testen.
Die Modellierung menschlicher Krankheiten in Zellkultur- und Tiermodellen hat unschätzbare Werkzeuge für die Entdeckung, Modifikation und Validierung pharmakologischer Therapeutika geliefert, die es ihnen ermöglichen, vom Wirkstoffkandidaten zur zugelassenen Therapie zu gelangen. Obwohl eine Kombination von In-vitro- und nicht-humanen In-vivo-Modellen seit langem ein wichtiger Bestandteil der Arzneimittelentwicklungspipeline ist, können sie häufig nicht die klinische Leistung neuartiger Arzneimittelkandidaten vorhersagen1. Es besteht ein klarer Bedarf an der Entwicklung von Technologien, die die Lücke zwischen vereinfachenden humanzellulären Monokulturen und klinischen Studien schließen. Jüngste technologische Fortschritte bei selbstorganisierten dreidimensionalen Gewebekulturen, Organoiden, haben ihre Treue zu den von ihnen modellierten Geweben verbessert, was sie zu vielversprechenden Werkzeugen in der präklinischen Arzneimittelentwicklungspipelinemacht 2.
Ein großer Vorteil der menschlichen Zellkultur gegenüber nicht-menschlichen In-vivo-Modellen ist die Fähigkeit, die spezifischen Feinheiten des menschlichen Stoffwechsels zu replizieren, die selbst zwischen Wirbeltieren höherer Ordnung wie Menschen und Mäusen erheblich variieren können3. Diese Spezifität kann jedoch durch einen Verlust der Gewebekomplexität überschattet werden; Dies ist der Fall bei Netzhautgewebe, wo mehrere Zelltypen kompliziert miteinander verwoben sind und ein einzigartiges symbiotisches metabolisches Zusammenspiel zwischen zellulären Subtypen aufweisen, das in einer Monokultur nicht repliziert werdenkann 4. Humane Organoide, die ein Faksimile komplexer menschlicher Gewebe mit der Zugänglichkeit und Skalierbarkeit von Zellkulturen liefern, haben das Potenzial, die Mängel dieser Krankheitsmodellierungsplattformen zu überwinden.
Aus Stammzellen gewonnene Netzhautorganoide haben sich bei der Modellierung des komplexen Gewebes der menschlichen neuralen Netzhaut als besonders zuverlässig erwiesen5. Dies hat das retinale Organoidmodell zu einer vielversprechenden Technologie für die Erforschung und Behandlung von Netzhauterkrankungen gemacht 6,7. Bisher konzentrierte sich ein Großteil der Krankheitsmodellierung in Netzhautorganoiden auf monogene Netzhauterkrankungen, bei denen Netzhautorganoide von iPS-Zelllinien mit krankheitsverursachenden genetischen Varianten abgeleitet werden7. Dies sind im Allgemeinen hochpenetrante Mutationen, die sich als Entwicklungsphänotypen manifestieren. Weniger Arbeit wurde effektiv an alternden Krankheiten durchgeführt, bei denen genetische Mutationen und Umweltstressoren sich auf Gewebe auswirken, das sich normal entwickelt hat. Neurodegenerative Erkrankungen des Alterns können eine komplexe genetische Vererbung und Beiträge von Umweltstressoren haben, die mit Kurzzeitzellkulturen von Natur aus schwer zu modellieren sind. In vielen Fällen können diese komplexen Krankheiten jedoch auf gemeinsamen zellulären oder metabolischen Stressoren zusammentreffen, die, wenn sie an einem voll entwickelten menschlichen Gewebe getestet werden, aussagekräftige Einblicke in neurodegenerative Erkrankungen des Alterns liefern können8.
Die spät einsetzende degenerative Makulaerkrankung, Makulateleangiektasien Typ II (MacTel), ist ein gutes Beispiel für eine genetisch komplexe neurodegenerative Erkrankung, die auf einem gemeinsamen Stoffwechseldefekt beruht. MacTel ist eine seltene degenerative Erkrankung des Alterns der Netzhaut, die zu einem Verlust des Photorezeptors und der Müller-Glia in der Makula führt, was zu einem fortschreitenden Verlust des zentralen Sehens führt9,10,11,12,13. Bei MacTel führt eine unbestimmte, möglicherweise multifaktorielle genetische Vererbung zu einer häufigen Verringerung des zirkulierenden Serins bei Patienten, was zu einem Anstieg einer neurotoxischen Lipidspezies namens Desoxysphingolipide (DesoxySL) führt14,15. Um zu beweisen, dass die Akkumulation von DesoxySL für die Netzhaut toxisch ist, und um potenzielle pharmazeutische Therapeutika zu validieren, haben wir dieses Protokoll entwickelt, um die Photorezeptor-Toxizität in menschlichen Netzhautorganoiden zu untersuchen14.
Hier skizzieren wir ein spezifisches Protokoll zur Differenzierung menschlicher Netzhautorganoide, zur Etablierung eines Toxizitäts- und Rettungstests unter Verwendung von Organoiden und zur Quantifizierung der Ergebnisse. Wir liefern ein erfolgreiches Beispiel, in dem wir die gewebespezifische Toxizität eines vermuteten krankheitserregenden Wirkstoffs, DesoxySL, bestimmen und die Verwendung eines sicheren Generikums, Fenofibrat, für die potenzielle Behandlung der DesoxySL-induzierten Netzhauttoxizität validieren. Frühere Arbeiten haben gezeigt, dass Fenofibrat den Abbau von DesoxySL erhöhen und das zirkulierende DesoxySL bei Patienten senken kann, seine Wirksamkeit bei der Verringerung der DesoxySL-induzierten Netzhauttoxizität wurde jedoch nicht getestet16,17. Obwohl wir ein konkretes Beispiel präsentieren, kann dieses Protokoll verwendet werden, um die Wirkung einer beliebigen Anzahl von metabolischen/umweltbedingten Stressoren und potenziellen therapeutischen Medikamenten auf das Netzhautgewebe zu bewerten.
Variationen des Differenzierungsprotokolls
Seit der Erfindung selbstformender optischer Becher durch Yoshiki Sasais Gruppe20 haben viele Labore Protokolle entwickelt, um Netzhautorganoide zu erzeugen, die bei fast jedem Schritt variieren können 5,18,19,21. Eine vollständige Liste der Protokolle findet sich in Capowski et al.22</sup…
The authors have nothing to disclose.
Unterstützt vom Lowy Medical Research Institute. Wir bedanken uns bei der Familie Lowy für die Unterstützung des MacTel-Projekts. Wir danken Mari Gantner, Mike Dorrell und Lea Scheppke für ihren intellektuellen Input und ihre Unterstützung bei der Erstellung des Manuskripts.
0.5M EDTA | Invitrogen | 15575020 | |
125mL Erlenmeyer Flasks | VWR | 89095-258 | |
1-deoxysphinganine | Avanti | 860493 | |
B27 Supplement, minus vitamin A | Gibco | 12587010 | |
Beaver 6900 Mini-Blade | Beaver-Visitec | BEAVER6900 | |
D-(+)-Sucrose | VWR | 97061-432 | |
DAPI | Thermo-fisher | D1306 | |
Dispase II, powder | Gibco | 17105041 | |
DMEM, high glucose, pyruvate | Gibco | 11995073 | |
DMEM/F12 | Gibco | 11330 | |
Donkey anti-rabbit Ig-G, Alexa Fluor plus 555 | Thermo-fisher | A32794 | |
donkey serum | Sigma | D9663-10ML | |
FBS, Heat Inactivated | Corning | 45001-108 | |
Fenofibrate | Sigma | F6020 | |
Glutamax | Gibco | 35050061 | |
Heparin | Stemcell Technologies | 7980 | |
In Situ Cell Death Detection Kit, Fluorescin | Sigma | 11684795910 | |
Matrigel, growth factor reduced | Corning | 356230 | |
MEM Non-Essential Amino Acids Solution | Gibco | 11140050 | |
mTeSR 1 | Stemcell Technologies | 85850 | |
N2 Supplement | Gibco | 17502048 | |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15140122 | |
Pierce 16% Formaldehyde | Thermo-fisher | 28906 | |
Rabbit anti-Recoverin antibody | Millipore | AB5585 | |
Sodium Citrate | Sigma | W302600 | |
Steriflip Sterile Disposable Vacuum Filter Units | MilliporeSigma | SE1M179M6 | |
Taurine | Sigma | T0625 | |
Tissue Plus- O.C.T. compound | Fisher Scientific | 23-730-571 | |
Tissue-Tek Cryomold | EMS | 62534-10 | |
Triton X-100 | Sigma | X100 | |
Tween-20 | Sigma | P1379 | |
Ultra-Low Attachment 6 well Plates | Corning | 29443-030 | |
Ultra-Low Attachment 75cm2 U-Flask | Corning | 3814 | |
Vacuum Filtration System | VWR | 10040-436 | |
Vectashield-mounting medium | vector Labs | H-1000 | |
wax pen-ImmEdge | vector Labs | H-4000 | |
Y-27632 Dihydrochloride (Rock inhibitor) | Sigma | Y0503 |