Summary

Immunfluoreserende farging for visualisering av Heterochromatin assosierte proteiner i Drosophila spyttkjertler

Published: August 21, 2021
doi:

Summary

Denne protokollen tar sikte på å visualisere heterochromatin aggregater i Drosophila polytene celler.

Abstract

Visualisering av heterochromatin aggregater ved immunstaining kan være utfordrende. Mange pattedyrkomponenter av kromatin er bevart i Drosophila melanogaster. Derfor er det en utmerket modell for å studere heterochromatindannelse og vedlikehold. Polyteniserte celler, som de som finnes i spyttkjertler av tredje instar D. melanogaster larver, gir et utmerket verktøy for å observere kromatin forsterket nesten tusen ganger og har tillatt forskere å studere endringer i fordelingen av heterokromatin i kjernen. Selv om observasjonen av heterokromatinkomponenter kan utføres direkte i polytene kromosompreparater, kan lokaliseringen av noen proteiner endres av alvorlighetsgraden av behandlingen. Derfor utfyller direkte visualisering av heterokromatin i celler denne typen studier. I denne protokollen beskriver vi immunoppfatningsteknikker som brukes for dette vevet, bruk av sekundære fluorescerende antistoffer og konfiskert mikroskopi for å observere disse heterokromatinaggregatene med større presisjon og detaljer.

Introduction

Siden de tidlige studiene av Emil Heitz1har heterokromatin blitt ansett som en viktig regulator av cellulære prosesser som genuttrykk, meiotisk og mititotisk separasjon av kromosomer og vedlikehold av genomstabilitet2,3,4.

Heterochromatin er hovedsakelig delt inn i to typer: konstituerende heterokromatin som karakteristisk definerer repeterende sekvenser og transponerbare elementer som er til stede på spesifikke kromosomsteder som telomerer og sentromerer. Denne typen heterokromatin er hovedsakelig definert epigenetisk av spesifikke histone merker som di eller tri-metylering av lysin 9 av histone H3 (H3K9me3) og bindingen av Heterochromatin protein 1a (HP1a)5,6. På den annen side lokaliserer fakultets heterochromatin gjennom kromosomets armer og består hovedsakelig av utviklingshemmelige gener7,8. Immunostaining av heterokromatinblokker i metafaseceller, eller observasjon av heterokromatinaggregater i interfaseceller, har avduket mye lys i forståelsen av dannelsen og funksjonen til heterokromatiske regioner9.

Bruken av Drosophila som modellsystem har gjort det mulig å utvikle essensielle verktøy for å studere heterokromatin uten bruk av elektronmikroskopi10. Siden beskrivelsen av posisjonseffektvariasjon og oppdagelsen av heterokromatin-assosierte proteiner, som HP1a og histone post-translasjonelle modifikasjoner, har mange grupper utviklet flere immunhiistokjemiske teknikker som tillater visualisering av disse heterochromatiske områdene10,11.

Disse teknikkene er basert på bruk av spesifikke antistoffer som gjenkjenner heterokromatin-assosierte proteiner eller histone merker. For hver celletype og antistoff må fikserings- og permeabiliseringsbetingelsene bestemmes empirisk. Forholdene kan også variere hvis ytterligere mekaniske prosesser som squashing teknikker brukes. I denne protokollen beskriver vi bruken av Drosophila spyttkjertler for å studere heterokromatisk foci. Spyttkjertler har polyteniserte celler som inneholder mer enn 1000 kopier av genomet, og gir dermed et forsterket syn på de fleste kromatinfunksjonene, med unntak av satellitt-DNA og noen heterokromatiske regioner som er under replikert. Likevel er heterokromatinregioner lett visualisert i polytene kromosompreparater, men squashingteknikkene kan noen ganger forstyrre karakteristiske kromatinbundne komplekser eller kromatinarkitekturen. Derfor kan immunokalisering av proteiner i hele spyttkjertelvev overgå disse uønskede effektene. Vi har brukt denne protokollen til å oppdage flere kromatinbundne proteiner, og vi har vist at denne protokollen kombinert med mutant Drosophila-aksjer kan brukes til å studere heterokromatinforstyrrelser12.

Protocol

1. Tredje instar larver kultur Forbered 1 liter standardmedier ved å legge til 100 g gjær, 100 g uraffinert hele sukkerrør, 16 g agar, 10 ml propionsyre og 14 g gelatin. Løs opp alle ingrediensene unntatt gjæren i 800 ml vann fra springen og oppløs deretter gjæren. Autoklav umiddelbart i 30 minutter. Etterpå, la media avkjøle ned til 60 °C og tilsett propionsyre til en endelig konsentrasjon 0,01%. La flasken stå til gelatin er dannet. For å optimalisere 3o instar larve…

Representative Results

Representative resultater av HP1a-immunostaining i Drosophila spyttkjertler er vist i figur 1. Et positivt resultat er å observere ett fokuspunkt (figur 1a) (heterochromatisk aggregat eller kondensat). Et negativt resultat er ikke noe signal eller et spredt signal. Noen ganger kan man observere et dobbeltsignal, det vilt med et dobbeltpunkt (figur 1c), men det forekommer vanligvis i mindre mengder. <p class="jove_conte…

Discussion

Den cellulære funksjonen til eukaryote organismer kan definere 3D-strukturen i kjernen, som støttes av interaksjoner mellom forskjellige proteiner med kromatin og ulike molekyler, inkludert RNA. I løpet av de siste tre årene har de biologiske kondensatene som har hatt relevans, inkludert heterokromatin, tatt en grunnleggende rolle i bestemmelsen av faseseparasjonen som fremmer den distinkte kjernefysiske romlige organiseringen av aktiv og undertrykkende kromatin 16,<sup class="xref"…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Marco Antonio Rosales Vega og Abel Segura for å ha tatt noen av de konfiske bildene, Carmen Muñoz for medieforberedelse og Dr. Arturo Pimentel, M.C. Andrés Saralegui og Dr. Chris Wood fra LMNA for råd om bruk av mikroskopene.

Materials

1.5 mL microcentrifuge tubes Axygen MCT-150-C 11351904 brand not critical
16% formaldehyde Thermo Scientific 28908
AF1 Citifluor Ted pella 19470 25 mL
BSA, Molecular Biology Grade Roche 10735078001 brand not critical
Complete, protease inhibitors Ultra EDTA-free
protease inhibitors
Merck 5892953001
Coverslip Corning CLS285022-200EA 22×22, brand not critical
DTT Sigma d9779 brand not critical
EDTA Sigma E5134 brand not critical
EGTA brand not critical
Glass slide Gold seal 3011 brand not critical
H3BO3 Baker 0084-01 brand not critical
H3K9me3 Abcam 8889
HP1a Hybridoma Bank C1A9 Product Form Concentrate 0.1 mL
KCl Baker 3040-01 brand not critical
Methanol Baker 9070-03 brand not critical
NaCl Sigma 71376 brand not critical
NaOH brand not critical
PIPES brand not critical
Rotator Thermo Scientific 13-687-12Q  Labquake Tube Shaker
Thermo Mixer C Eppendorf 13527550 SmartBlock 1.5 mL
Tris Milipore 648311 brand not critical
Triton X-100 Sigma T8787 100 mL, brand not critical
β-mercaptoethanol Bio-Rad 1610710 25 mL, brand not critical

References

  1. Berger, F. Emil Heitz, a true epigenetics pioneer. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 20 (10), 572 (2019).
  2. Irick, H. A new function for heterochromatin. Chromosoma. 103 (1), 1-3 (1994).
  3. Kasinathan, B., et al. Innovation of heterochromatin functions drives rapid evolution of essential ZAD-ZNF genes in Drosophila. Elife. , 1-31 (2020).
  4. Lifschytz, E., Hareven, D. Heterochromatin markers: Arrangement of obligatory heterochromatin, histone genes and multisite gene families in the interphase nucleus of D. melanogaster. Chromosoma. 86 (4), 443-455 (1982).
  5. Eissenberg, J. C., Elgin, S. C. R. HP1a: A structural chromosomal protein regulating transcription. Trends in Genetics. 30 (3), 103-110 (2014).
  6. Lee, Y. C. G., et al. Pericentromeric heterochromatin is hierarchically organized and spatially contacts H3K9me2 islands in euchromatin. PLoS Genetics. 16 (3), 1-27 (2020).
  7. Koryakov, D. E., et al. The SUUR protein is involved in binding of SU (VAR)3-9 and methylation of H3K9 and H3K27 in chromosomes of Drosophila melanogaster. Chromosome Research. 19 (2), 235-249 (2011).
  8. Cao, R., et al. Role of Histone H3 Lysine 27 Methylation in Polycomb-Group Silencing. Science. 298 (5595), 1039 (2002).
  9. Hines, K. A., et al. Domains of heterochromatin protein 1 required for Drosophila melanogaster heterochromatin spreading. Génétique. 182 (4), 967-977 (2009).
  10. Elgin, S. C. R., Reuter, G. Position-effect variegation, heterochromatin formation, and gene silencing in Drosophila. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 5 (8), 1-26 (2013).
  11. Eissenberg, J. C., Elgin, S. C. R. HP1a: A structural chromosomal protein regulating transcription. Trends in Genetics. 30 (3), 103-110 (2014).
  12. Meyer-Nava, S., Torres, A., Zurita, M., Valadez-graham, V. Molecular effects of dADD1 misexpression in chromatin organization and transcription. BMC Molecular and Cell Biology. 2, 1-17 (2020).
  13. Tennessen, J. M., Thummel, C. S. Coordinating growth and maturation – Insights from drosophila. Current Biology. 21 (18), 750-757 (2011).
  14. Cai, W., Jin, Y., Girton, J., Johansen, J., Johansen, K. M. Preparation of drosophila polytene chromosome squashes for antibody labeling. Journal of Visualized Experiments. (36), 1-4 (2010).
  15. Bainbridge, S. P., Bownes, M. Staging the metamorphosis of Drosophila melanogaster. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 66 (1967), 57-80 (1981).
  16. Larson, A. G., et al. Liquid droplet formation by HP1α suggests a role for phase separation in heterochromatin. Nature. 547 (7662), 236-240 (2017).
  17. Larson, A. G., Narlikar, G. J. The Role of Phase Separation in Heterochromatin Formation, Function, and Regulation. Biochimie. 57 (17), 2540-2548 (2018).
  18. Keenen, M. M., Larson, A. G., Narlikar, G. J. Visualization and Quantitation of Phase-Separated Droplet Formation by Human HP1α. Methods in Enzymology. , (2018).
  19. Lu, B. Y., Emtage, P. C., Duyf, B. J., Hilliker, a. J., Eissenberg, J. C. Heterochromatin protein 1 is required for the normal expression of two heterochromatin genes in Drosophila. Génétique. 155 (2), 699-708 (2000).
  20. Marsano, R. M., Giordano, E., Messina, G., Dimitri, P. A New Portrait of Constitutive Heterochromatin: Lessons from Drosophila melanogaster. Trends in Genetics. , (2019).
  21. Strom, A. R., et al. Phase separation drives heterochromatin domain formation. Nature. 547 (7662), 241-245 (2017).
  22. Sanulli, S., et al. HP1 reshapes nucleosome core to promote phase separation of heterochromatin. Nature. 575 (7782), 390-394 (2019).
  23. Dialynas, G., Delabaere, L., Chiolo, I. Arp2/3 and Unc45 maintain heterochromatin stability in Drosophila polytene chromosomes. Experimental Biology and Medicine. 244 (15), 1362-1371 (2019).
  24. Kolesnikova, T. D., et al. Induced decondensation of heterochromatin in drosophila melanogaster polytene chromosomes under condition of ectopic expression of the supressor of underreplication gene. Fly. 5 (3), 181-190 (2011).
  25. Bettinger, J. C., Lee, K., Rougvie, A. E. Stage-specific accumulation of the terminal differentiation factor LIN-29 during Caenorhabditis elegans development. Development. 122 (8), 2517-2527 (1996).
  26. Messina, G., et al. Yeti, an essential Drosophila melanogaster gene, encodes a protein required for chromatin organization. Journal of Cell Science. 127 (11), 2577-2588 (2014).
  27. Aguilar-Fuentes, J., et al. p8/TTDA overexpression enhances UV-irradiation resistance and suppresses TFIIH mutations in a Drosophila trichothiodystrophy model. PLOS Genetics. 4 (11), 1-9 (2008).
  28. Reynaud, E., Lomeli, H., Vazquez, M., Zurita, M. The Drosophila melanogaster Homologue of the Xeroderma Pigmentosum D Gene Product Is Located in Euchromatic Regions and Has a Dynamic Response to UV Light-induced Lesions in Polytene Chromosomes. Molecular Biology of the Cell. 10 (4), 1191-1203 (1999).
  29. Farkaš, R., Mechler, B. M. The timing of Drosophila salivary gland apoptosis displays an I (2)gl-dose response. Cell Death & Differentiation. 7 (1), 89-101 (2000).
  30. Zhang, P., Spradling, A. C. The Drosophila salivary gland chromocenter contains highly polytenized subdomains of mitotic heterochromatin. Génétique. 139 (2), 659-670 (1995).
  31. Stormo, B. M., Fox, D. T. Polyteny: still a giant player in chromosome research. Chromosome Research. 25 (3-4), 201-214 (2017).
check_url/fr/62408?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Meyer-Nava, S., Zurita, M., Valadez-Graham, V. Immunofluorescent Staining for Visualization of Heterochromatin Associated Proteins in Drosophila Salivary Glands. J. Vis. Exp. (174), e62408, doi:10.3791/62408 (2021).

View Video