Denne protokollen tar sikte på å visualisere heterochromatin aggregater i Drosophila polytene celler.
Visualisering av heterochromatin aggregater ved immunstaining kan være utfordrende. Mange pattedyrkomponenter av kromatin er bevart i Drosophila melanogaster. Derfor er det en utmerket modell for å studere heterochromatindannelse og vedlikehold. Polyteniserte celler, som de som finnes i spyttkjertler av tredje instar D. melanogaster larver, gir et utmerket verktøy for å observere kromatin forsterket nesten tusen ganger og har tillatt forskere å studere endringer i fordelingen av heterokromatin i kjernen. Selv om observasjonen av heterokromatinkomponenter kan utføres direkte i polytene kromosompreparater, kan lokaliseringen av noen proteiner endres av alvorlighetsgraden av behandlingen. Derfor utfyller direkte visualisering av heterokromatin i celler denne typen studier. I denne protokollen beskriver vi immunoppfatningsteknikker som brukes for dette vevet, bruk av sekundære fluorescerende antistoffer og konfiskert mikroskopi for å observere disse heterokromatinaggregatene med større presisjon og detaljer.
Siden de tidlige studiene av Emil Heitz1har heterokromatin blitt ansett som en viktig regulator av cellulære prosesser som genuttrykk, meiotisk og mititotisk separasjon av kromosomer og vedlikehold av genomstabilitet2,3,4.
Heterochromatin er hovedsakelig delt inn i to typer: konstituerende heterokromatin som karakteristisk definerer repeterende sekvenser og transponerbare elementer som er til stede på spesifikke kromosomsteder som telomerer og sentromerer. Denne typen heterokromatin er hovedsakelig definert epigenetisk av spesifikke histone merker som di eller tri-metylering av lysin 9 av histone H3 (H3K9me3) og bindingen av Heterochromatin protein 1a (HP1a)5,6. På den annen side lokaliserer fakultets heterochromatin gjennom kromosomets armer og består hovedsakelig av utviklingshemmelige gener7,8. Immunostaining av heterokromatinblokker i metafaseceller, eller observasjon av heterokromatinaggregater i interfaseceller, har avduket mye lys i forståelsen av dannelsen og funksjonen til heterokromatiske regioner9.
Bruken av Drosophila som modellsystem har gjort det mulig å utvikle essensielle verktøy for å studere heterokromatin uten bruk av elektronmikroskopi10. Siden beskrivelsen av posisjonseffektvariasjon og oppdagelsen av heterokromatin-assosierte proteiner, som HP1a og histone post-translasjonelle modifikasjoner, har mange grupper utviklet flere immunhiistokjemiske teknikker som tillater visualisering av disse heterochromatiske områdene10,11.
Disse teknikkene er basert på bruk av spesifikke antistoffer som gjenkjenner heterokromatin-assosierte proteiner eller histone merker. For hver celletype og antistoff må fikserings- og permeabiliseringsbetingelsene bestemmes empirisk. Forholdene kan også variere hvis ytterligere mekaniske prosesser som squashing teknikker brukes. I denne protokollen beskriver vi bruken av Drosophila spyttkjertler for å studere heterokromatisk foci. Spyttkjertler har polyteniserte celler som inneholder mer enn 1000 kopier av genomet, og gir dermed et forsterket syn på de fleste kromatinfunksjonene, med unntak av satellitt-DNA og noen heterokromatiske regioner som er under replikert. Likevel er heterokromatinregioner lett visualisert i polytene kromosompreparater, men squashingteknikkene kan noen ganger forstyrre karakteristiske kromatinbundne komplekser eller kromatinarkitekturen. Derfor kan immunokalisering av proteiner i hele spyttkjertelvev overgå disse uønskede effektene. Vi har brukt denne protokollen til å oppdage flere kromatinbundne proteiner, og vi har vist at denne protokollen kombinert med mutant Drosophila-aksjer kan brukes til å studere heterokromatinforstyrrelser12.
Den cellulære funksjonen til eukaryote organismer kan definere 3D-strukturen i kjernen, som støttes av interaksjoner mellom forskjellige proteiner med kromatin og ulike molekyler, inkludert RNA. I løpet av de siste tre årene har de biologiske kondensatene som har hatt relevans, inkludert heterokromatin, tatt en grunnleggende rolle i bestemmelsen av faseseparasjonen som fremmer den distinkte kjernefysiske romlige organiseringen av aktiv og undertrykkende kromatin 16,<sup class="xref"…
The authors have nothing to disclose.
Vi takker Marco Antonio Rosales Vega og Abel Segura for å ha tatt noen av de konfiske bildene, Carmen Muñoz for medieforberedelse og Dr. Arturo Pimentel, M.C. Andrés Saralegui og Dr. Chris Wood fra LMNA for råd om bruk av mikroskopene.
1.5 mL microcentrifuge tubes | Axygen MCT-150-C | 11351904 | brand not critical |
16% formaldehyde | Thermo Scientific | 28908 | |
AF1 Citifluor | Ted pella | 19470 | 25 mL |
BSA, Molecular Biology Grade | Roche | 10735078001 | brand not critical |
Complete, protease inhibitors Ultra EDTA-free protease inhibitors |
Merck | 5892953001 | |
Coverslip | Corning | CLS285022-200EA | 22×22, brand not critical |
DTT | Sigma | d9779 | brand not critical |
EDTA | Sigma | E5134 | brand not critical |
EGTA | brand not critical | ||
Glass slide | Gold seal | 3011 | brand not critical |
H3BO3 | Baker | 0084-01 | brand not critical |
H3K9me3 | Abcam | 8889 | |
HP1a | Hybridoma Bank | C1A9 | Product Form Concentrate 0.1 mL |
KCl | Baker | 3040-01 | brand not critical |
Methanol | Baker | 9070-03 | brand not critical |
NaCl | Sigma | 71376 | brand not critical |
NaOH | brand not critical | ||
PIPES | brand not critical | ||
Rotator | Thermo Scientific | 13-687-12Q | Labquake Tube Shaker |
Thermo Mixer C | Eppendorf | 13527550 | SmartBlock 1.5 mL |
Tris | Milipore | 648311 | brand not critical |
Triton X-100 | Sigma | T8787 | 100 mL, brand not critical |
β-mercaptoethanol | Bio-Rad | 1610710 | 25 mL, brand not critical |