Her presenterer vi en protokoll for å analysere den genomomfattende fordelingen av histone modifikasjoner, som kan identifisere nye målgener i patogenesen av M. oryzae og andre filamentøse sopp.
Kromatinimmunoprecipitation sekvensering (ChIP-seq) er en kraftig og mye brukt molekylær teknikk for å kartlegge hele genomet steder av transkripsjonsfaktorer (TFer), kromatinregulatorer og histone modifikasjoner, samt oppdage hele genomer for å avdekke TF bindende mønstre og histone posttranslational modifikasjoner. Kromatinmodifiserende aktiviteter, som histone metylering, rekrutteres ofte til spesifikke genregulatoriske sekvenser, forårsaker lokaliserte endringer i kromatinstrukturer og resulterer i spesifikke transkripsjonseffekter. Risblåsingen er en ødeleggende soppsykdom på ris over hele verden og er et modellsystem for å studere soppplanteinteraksjon. Imidlertid forblir de molekylære mekanismene i hvordan histone modifikasjonene regulerer deres virulensgener i Magnaporthe oryzae unnvikende. Flere forskere må bruke ChIP-seq for å studere hvordan histone epigenetisk modifikasjon regulerer deres målgener. ChIP-seq er også mye brukt til å studere samspillet mellom protein og DNA hos dyr og planter, men det er mindre brukt innen plantepatologi og har ikke blitt godt utviklet. I dette dokumentet beskriver vi den eksperimentelle prosessen og operasjonsmetoden til ChIP-seq for å identifisere den genomomfattende fordelingen av histonmetylering (som H3K4me3) som binder seg til de funksjonelle målgenene i M. oryzae. Her presenterer vi en protokoll for å analysere den genomomfattende fordelingen av histone modifikasjoner, som kan identifisere nye målgener i patogenesen av M. oryzae og andre filamentøse sopp.
Epigenetikk er en gren av genetisk forskning som refererer til arvelig endring av genuttrykk uten å endre nukleotidsekvensen av gener. Et økende antall studier har vist at epigenetisk regulering spiller en viktig rolle i veksten og utviklingen av eukaryote celler, inkludert kromatin som regulerer og påvirker genuttrykk gjennom den dynamiske prosessen med å brette og montere i høyere orden strukturer1,2. Kromatin ombygging og kovalent histone modifikasjon påvirker og regulerer funksjonen og strukturen av kromatin gjennom variasjonen av kromatinpolymerer, og oppnår dermed funksjonen til å regulere genuttrykk3,4,5,6. Posttranslasjonelle modifikasjoner av histon inkluderer acetylering, fosforylering, metylering, monoubiquitination, sumoylering og ADP ribosylering7,8,9. Histone H3K4 metylering, spesielt trimetylering, er kartlagt til transkripsjonsstartsteder der det er knyttet til transkripsjonsreplikasjon, rekombinasjon, reparasjon og RNA-behandling i eukaryoter10,11.
ChIP-seq-teknologi ble introdusert i 2007 og har blitt den eksperimentelle standarden for genomomfattende analyse av transkripsjonsregulering og epigenetiskemekanismer 12,13. Denne metoden er egnet i genomomskalaen og for å innhente informasjon om interaksjon med histone eller transkripsjonsfaktor, inkludert DNA-segmenter av DNA-bindende proteiner. Eventuelle DNA-sekvenser krysskoblet til proteiner av interesse vil coprecipitate som en del av kromatinkomplekset. Ny generasjon sekvenseringsteknikker brukes også til å sekvensere 36-100 bp DNA, som deretter tilpasses det tilsvarende målgenomet.
I fytopatogeniske sopp har forskning nylig begynt å studere hvordan histone metyleringsmodifikasjoner regulerer deres målgener i prosessen med patogenitet. Noen tidligere studier viste at reguleringen av histone metylaserelaterte gener hovedsakelig gjenspeiles i genaktivering og katalysering av produksjonen av sekundære metabolitter (SM). MoSet1 er H3K4-metylase i M. oryzae. Knockout av dette genet resulterer i fullstendig sletting av H3K4me3 modifikasjon14. Sammenlignet med den ville stammen, er uttrykket av genet MoCEL7C i mutanten hemmet i CMC-indusert tilstand og i ikke-indusert tilstand (glukose eller cellobiose), økte uttrykket av MoCEL7C 15. I Fusarium graminearumkan KMT6 katalysere metyleringsmodifiseringen av H3K27me3, regulere den normale utviklingen av sopp og bidra til å regulere det “kryptiske genomet” som inneholder SM-genklyngen16,17,18,19. I 2013 rapporterte Connolly at H3K9 og H3K27 metylering regulerer den patogene prosessen med sopp gjennom sekundære metabolitter og effektfaktorer som regulerer hemmingen av målgener20. I Aspergilluser modifikasjonen av histoner H3K4me2 og H3K4me3 relatert til genaktivering og spiller en viktig rolle i å kontrollere kromatinnivåreguleringen av SM-genklynger21. I M. oryzaeer Tig1 (homolog til Tig1 i gjær og pattedyr) en HADC (histone deacetylase)22. Knockout av Tig1-genet fører til fullstendig tap av patogenitet og sporeproduksjonsevne i nullmutanten. Det er mer følsomt for et peroksygenmiljø, som ikke kan produsere infektiv hyphae22.
Riseksplosjonen forårsaket av M. oryzae. er en av de mest alvorlige rissykdommene i de fleste risvoksende områder i verden19. På grunn av sin representative infeksjonsprosess ligner M. oryzae infeksjonsprosessen til mange viktige patogene sopp. Som det lett kan utføre molekylære genetiske operasjoner, har soppen blitt en modellorganisme for å studere soppplanteinteraksjoner23. Blokkering av hvert trinn i infeksjonsprosessen til M. oryzae kan føre til mislykket infeksjon. De morfologiske endringene under infeksjonsprosessen er strengt regulert av hele genomfunksjonen og gentranskripsjonen. Blant dem spiller epigenetiske modifikasjoner som histone metylering en viktig rolle i transkripsjonsreguleringen av funksjonelle gener24,25. Men så langt har det blitt gjort få studier på den molekylære mekanismen for epigenetiske modifikasjoner som histonmetylering og histonacetylering i transkripsjonen av patogenesegener i M. oryzae. Derfor vil videreutvikling av den epigenetiske reguleringsmekanismen til risblåse soppen mens forskning på oppstrøms og nedstrøms regulatorisk nettverk av disse patogene relaterte genene bidra til å utvikle risblåseforebygging og kontrollstrategier.
Med utviklingen av funksjonell genomikk som ChIP-seq, spesielt i epigenetikk, har denne datainnsamlingsmetoden med høy gjennomstrømning akselerert forskning på kromosomer. Ved hjelp av ChIP-seq eksperimentell teknologi kan genom-wide distribusjon av histonmetylering (som H3K4me3, H3K27me3, H3K9me3) i M. oryzae og andre filamentøse sopp identifiseres. Derfor kan denne metoden bidra til å belyse de molekylære mekanismene som ligger til grunn for hvordan epigenetiske modifikasjoner regulerer deres kandidatmålgener under sopppatogenese i plantepatologi.
Nylig har ChIP-seq blitt en mye brukt genomisk analysemetode for å bestemme bindingsstedene til TFer eller berikelsessteder modifisert av spesifikke histoner. Sammenlignet med tidligere ChIP-seq-teknologi er ny ChIP-seq-teknologi svært følsom og fleksibel. Resultatene leveres i høy oppløsning uten negative effekter, for eksempel støysignalet forårsaket av ikke-spesifikk hybridisering av nukleinsyrer. Selv om dette er en vanlig genuttrykksanalyse, har mange beregningsmetoder blitt validert, og kompleksiteten til Ch…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av National Natural Science Foundation of China (Grant no. 31871638), Special Scientific Research Project of Beijing Agriculture University (YQ201603), Scientific Project of Beijing Educational Committee (KM201610020005), High-level scientific research cultivation project of BUA (GJB2021005).
acidic casein hydrolysate | WAKO | 65072-00-6 | Medium configuration |
agar powder | scientan | 9002-18-0 | Medium configuration |
deoxycholic acid | MedChemExpress | 83-44-3 | protein and dissolution |
DNA End-Repair kit | NovoBiotec | ER81050 | Repair DNA or cDNA damaged by enzymatic or mechanical shearing |
Dynabeads | Invitrogen | no.100.02D | Binding target |
EB buffer | JIMEI | JC2174 | Membrane and liquid |
EDTA | ThermoFisher | AM9912 | protease inhibitor |
enzymatic casein hydrolysate | Sigma | 91079-40-2 | Medium configuration |
glucose | Sigma | 50-99-7 | Medium configuration |
glycogen | ThermoFisher | AM9510 | Precipitant action |
H3K4me3 antibodies | Abcam | ab8580 | Immune response to H3K4me3 protein |
illumina Genome Analyzer | illumina | illumina Hiseq 2000 | Large configuration |
Illumina PCR primers | illumina | CleanPlex | Random universal primer |
isoamyl alcohol | chemical book | 30899-19-5 | Purified DNA |
LiCl | ThermoFisher | AM9480 | specific removal RNA |
lysing enzymes | Sigma | L1412-10G | cell lysis buffer |
Mouse IgG | Yeasen | 36111ES10 | Animal normal immunoglobulin |
NaCl solution | ThermoFisher | 7647-14-5 | Medium configuration |
NaHCO3 | Seebio | SH30173.08* | preparation of protein complex eluent |
NP-40 | ThermoFisher | 85124 | cell lysate to promote cell lysis |
PCR Purification kit | Qiagen | 28004 | The purification procedure removes primers from DNA samples |
protease inhibitors | ThermoFisher | A32965 | A protein inhibitor that decreases protein activity |
Proteinase K | ThermoFisher | AM2546 | DNA Extraction Reagent |
Qubit 4.0 | ThermoFisher | Q33226 | Medium configuration |
RIPA buffer | ThermoFisher | 9806S | cell lysis buffer |
RNase A | ThermoFisher | AM2271 | Purified DNA |
SDS | ThermoFisher | AM9820 | cover up the charge differences |
sodium acetate solution | ThermoFisher | R1181 | Acetic acid buffer |
sodium deoxycholate | ThermoFisher | 89904 | inhibition of protease degradation |
T4 DNA ligase | ThermoFisher | EL0011 | Under the condition of ATP as coenzyme, DNA ligase |
T4 DNA ligase buffer | ThermoFisher | B69 | DNA ligase buffer |
Tris-HCl | ThermoFisher | 1185-53-1 | buffer action |
Triton X-100 | ThermoFisher | HFH10 | keep the membrane protein stable |
yeast extract | OXOID | LP0021 | Medium configuration |