Summary

Genomomfattende analyse av histone modifikasjoner Distribusjon ved hjelp av Chromatin Immunoprecipitation Sekvensering Metode i Magnaporthe oryzae

Published: June 02, 2021
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for å analysere den genomomfattende fordelingen av histone modifikasjoner, som kan identifisere nye målgener i patogenesen av M. oryzae og andre filamentøse sopp.

Abstract

Kromatinimmunoprecipitation sekvensering (ChIP-seq) er en kraftig og mye brukt molekylær teknikk for å kartlegge hele genomet steder av transkripsjonsfaktorer (TFer), kromatinregulatorer og histone modifikasjoner, samt oppdage hele genomer for å avdekke TF bindende mønstre og histone posttranslational modifikasjoner. Kromatinmodifiserende aktiviteter, som histone metylering, rekrutteres ofte til spesifikke genregulatoriske sekvenser, forårsaker lokaliserte endringer i kromatinstrukturer og resulterer i spesifikke transkripsjonseffekter. Risblåsingen er en ødeleggende soppsykdom på ris over hele verden og er et modellsystem for å studere soppplanteinteraksjon. Imidlertid forblir de molekylære mekanismene i hvordan histone modifikasjonene regulerer deres virulensgener i Magnaporthe oryzae unnvikende. Flere forskere må bruke ChIP-seq for å studere hvordan histone epigenetisk modifikasjon regulerer deres målgener. ChIP-seq er også mye brukt til å studere samspillet mellom protein og DNA hos dyr og planter, men det er mindre brukt innen plantepatologi og har ikke blitt godt utviklet. I dette dokumentet beskriver vi den eksperimentelle prosessen og operasjonsmetoden til ChIP-seq for å identifisere den genomomfattende fordelingen av histonmetylering (som H3K4me3) som binder seg til de funksjonelle målgenene i M. oryzae. Her presenterer vi en protokoll for å analysere den genomomfattende fordelingen av histone modifikasjoner, som kan identifisere nye målgener i patogenesen av M. oryzae og andre filamentøse sopp.

Introduction

Epigenetikk er en gren av genetisk forskning som refererer til arvelig endring av genuttrykk uten å endre nukleotidsekvensen av gener. Et økende antall studier har vist at epigenetisk regulering spiller en viktig rolle i veksten og utviklingen av eukaryote celler, inkludert kromatin som regulerer og påvirker genuttrykk gjennom den dynamiske prosessen med å brette og montere i høyere orden strukturer1,2. Kromatin ombygging og kovalent histone modifikasjon påvirker og regulerer funksjonen og strukturen av kromatin gjennom variasjonen av kromatinpolymerer, og oppnår dermed funksjonen til å regulere genuttrykk3,4,5,6. Posttranslasjonelle modifikasjoner av histon inkluderer acetylering, fosforylering, metylering, monoubiquitination, sumoylering og ADP ribosylering7,8,9. Histone H3K4 metylering, spesielt trimetylering, er kartlagt til transkripsjonsstartsteder der det er knyttet til transkripsjonsreplikasjon, rekombinasjon, reparasjon og RNA-behandling i eukaryoter10,11.

ChIP-seq-teknologi ble introdusert i 2007 og har blitt den eksperimentelle standarden for genomomfattende analyse av transkripsjonsregulering og epigenetiskemekanismer 12,13. Denne metoden er egnet i genomomskalaen og for å innhente informasjon om interaksjon med histone eller transkripsjonsfaktor, inkludert DNA-segmenter av DNA-bindende proteiner. Eventuelle DNA-sekvenser krysskoblet til proteiner av interesse vil coprecipitate som en del av kromatinkomplekset. Ny generasjon sekvenseringsteknikker brukes også til å sekvensere 36-100 bp DNA, som deretter tilpasses det tilsvarende målgenomet.

I fytopatogeniske sopp har forskning nylig begynt å studere hvordan histone metyleringsmodifikasjoner regulerer deres målgener i prosessen med patogenitet. Noen tidligere studier viste at reguleringen av histone metylaserelaterte gener hovedsakelig gjenspeiles i genaktivering og katalysering av produksjonen av sekundære metabolitter (SM). MoSet1 er H3K4-metylase i M. oryzae. Knockout av dette genet resulterer i fullstendig sletting av H3K4me3 modifikasjon14. Sammenlignet med den ville stammen, er uttrykket av genet MoCEL7C i mutanten hemmet i CMC-indusert tilstand og i ikke-indusert tilstand (glukose eller cellobiose), økte uttrykket av MoCEL7C 15. I Fusarium graminearumkan KMT6 katalysere metyleringsmodifiseringen av H3K27me3, regulere den normale utviklingen av sopp og bidra til å regulere det “kryptiske genomet” som inneholder SM-genklyngen16,17,18,19. I 2013 rapporterte Connolly at H3K9 og H3K27 metylering regulerer den patogene prosessen med sopp gjennom sekundære metabolitter og effektfaktorer som regulerer hemmingen av målgener20. I Aspergilluser modifikasjonen av histoner H3K4me2 og H3K4me3 relatert til genaktivering og spiller en viktig rolle i å kontrollere kromatinnivåreguleringen av SM-genklynger21. I M. oryzaeer Tig1 (homolog til Tig1 i gjær og pattedyr) en HADC (histone deacetylase)22. Knockout av Tig1-genet fører til fullstendig tap av patogenitet og sporeproduksjonsevne i nullmutanten. Det er mer følsomt for et peroksygenmiljø, som ikke kan produsere infektiv hyphae22.

Riseksplosjonen forårsaket av M. oryzae. er en av de mest alvorlige rissykdommene i de fleste risvoksende områder i verden19. På grunn av sin representative infeksjonsprosess ligner M. oryzae infeksjonsprosessen til mange viktige patogene sopp. Som det lett kan utføre molekylære genetiske operasjoner, har soppen blitt en modellorganisme for å studere soppplanteinteraksjoner23. Blokkering av hvert trinn i infeksjonsprosessen til M. oryzae kan føre til mislykket infeksjon. De morfologiske endringene under infeksjonsprosessen er strengt regulert av hele genomfunksjonen og gentranskripsjonen. Blant dem spiller epigenetiske modifikasjoner som histone metylering en viktig rolle i transkripsjonsreguleringen av funksjonelle gener24,25. Men så langt har det blitt gjort få studier på den molekylære mekanismen for epigenetiske modifikasjoner som histonmetylering og histonacetylering i transkripsjonen av patogenesegener i M. oryzae. Derfor vil videreutvikling av den epigenetiske reguleringsmekanismen til risblåse soppen mens forskning på oppstrøms og nedstrøms regulatorisk nettverk av disse patogene relaterte genene bidra til å utvikle risblåseforebygging og kontrollstrategier.

Med utviklingen av funksjonell genomikk som ChIP-seq, spesielt i epigenetikk, har denne datainnsamlingsmetoden med høy gjennomstrømning akselerert forskning på kromosomer. Ved hjelp av ChIP-seq eksperimentell teknologi kan genom-wide distribusjon av histonmetylering (som H3K4me3, H3K27me3, H3K9me3) i M. oryzae og andre filamentøse sopp identifiseres. Derfor kan denne metoden bidra til å belyse de molekylære mekanismene som ligger til grunn for hvordan epigenetiske modifikasjoner regulerer deres kandidatmålgener under sopppatogenese i plantepatologi.

Protocol

1. Tilberedning av protoplaster fra M. oryzae Forbered havregryn-tomatagaren (OTA). Vei 30-50 g havregryn og kok det i 800 ml vann (ddH2O) i 20 min. Filtrer gjennom to lag gasbind og ta filtratet. Velg modne tomater og skrell dem. Klem saften, og filtrer gjennom to lag gasbind for å samle 150 ml av den filtrerte saften. Bland all tomatjuice og tilberedt havrefiltrat grundig og tilsett ddH2O opptil 1000 ml. Tilsett 250 ml OTA og 2,5 g agarp…

Representative Results

Hele flytskjemaet for ChIP-seq -metoden vises i figur 1. ChIP-seq eksperimenter ble utført ved hjelp av antistoffer mot H3K4me3 i wild-type stammen P131 og tre null mutant stammer som var blottet for mobre2, mospp1, og moswd2 genet for å verifisere hele genom-wide profilen av histone H3K4me3 distribusjon i M. oryzae. Protoplastene til den ville stammen, Δmobre2, Δmospp1og Δmoswd2, ble forberedt og sonikert ved 25% W, utgang …

Discussion

Nylig har ChIP-seq blitt en mye brukt genomisk analysemetode for å bestemme bindingsstedene til TFer eller berikelsessteder modifisert av spesifikke histoner. Sammenlignet med tidligere ChIP-seq-teknologi er ny ChIP-seq-teknologi svært følsom og fleksibel. Resultatene leveres i høy oppløsning uten negative effekter, for eksempel støysignalet forårsaket av ikke-spesifikk hybridisering av nukleinsyrer. Selv om dette er en vanlig genuttrykksanalyse, har mange beregningsmetoder blitt validert, og kompleksiteten til Ch…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av National Natural Science Foundation of China (Grant no. 31871638), Special Scientific Research Project of Beijing Agriculture University (YQ201603), Scientific Project of Beijing Educational Committee (KM201610020005), High-level scientific research cultivation project of BUA (GJB2021005).

Materials

acidic casein hydrolysate WAKO 65072-00-6 Medium configuration
agar powder scientan 9002-18-0 Medium configuration
deoxycholic acid MedChemExpress 83-44-3 protein and dissolution
DNA End-Repair kit NovoBiotec ER81050 Repair DNA or cDNA damaged by enzymatic or mechanical shearing
Dynabeads Invitrogen no.100.02D Binding target
EB buffer JIMEI JC2174 Membrane and liquid
EDTA ThermoFisher AM9912 protease inhibitor
enzymatic casein hydrolysate Sigma 91079-40-2 Medium configuration
glucose Sigma 50-99-7 Medium configuration
glycogen ThermoFisher AM9510 Precipitant action
H3K4me3 antibodies Abcam ab8580 Immune response to H3K4me3 protein
illumina Genome Analyzer illumina illumina Hiseq 2000 Large configuration
Illumina PCR primers illumina CleanPlex Random universal primer
isoamyl alcohol chemical book 30899-19-5 Purified DNA
LiCl ThermoFisher AM9480 specific removal RNA
lysing enzymes Sigma L1412-10G cell lysis buffer
Mouse IgG Yeasen 36111ES10 Animal normal immunoglobulin
NaCl solution ThermoFisher 7647-14-5 Medium configuration
NaHCO3 Seebio SH30173.08* preparation of protein complex eluent
NP-40 ThermoFisher 85124 cell lysate to promote cell lysis
PCR Purification kit Qiagen 28004 The purification procedure removes primers from DNA samples
protease inhibitors ThermoFisher A32965 A protein inhibitor that decreases protein activity
Proteinase K ThermoFisher AM2546 DNA Extraction Reagent
Qubit 4.0 ThermoFisher Q33226 Medium configuration
RIPA buffer ThermoFisher 9806S cell lysis buffer
RNase A ThermoFisher AM2271 Purified DNA
SDS ThermoFisher AM9820 cover up the charge differences
sodium acetate solution ThermoFisher R1181 Acetic acid buffer
sodium deoxycholate ThermoFisher 89904 inhibition of protease degradation
T4 DNA ligase ThermoFisher EL0011 Under the condition of ATP as coenzyme, DNA ligase
T4 DNA ligase buffer ThermoFisher B69 DNA ligase buffer
Tris-HCl ThermoFisher 1185-53-1 buffer action
Triton X-100 ThermoFisher HFH10 keep the membrane protein stable
yeast extract OXOID LP0021 Medium configuration

References

  1. Kornberg, R. D. Chromatin structure: are repeating unit of histones and DNA. Science. 184 (4139), 868-871 (1974).
  2. Luger, K., et al. Crystal structure of the nucleosomecore particle at 2.8 a resolution. Nature. 389 (6648), 251-260 (1997).
  3. Strathl, B. D., Allis, C. D. The language of covalent histone modifications. Nature. 403 (6765), 41-45 (2000).
  4. Lachner, M., Jenuwein, T. The many faces of histone lysine methylation. Current Opinion in Cell Biology. 14 (3), 286-298 (2002).
  5. Bhaumik, S. R., et al. Covalent modifications of histones during development and disease pathogenesis. Nature Structural and Molecular Biology. 14 (11), 1008-1016 (2007).
  6. Shilatifard, A. Molecular implementation and physiological roles for histone H3 lysine 4 (H3K4) methylation. Current Opinion in Cell Biology. 20 (3), 341-348 (2008).
  7. Berger, S. L. The complex language of chromatin regulation during transcription. Nature. 447 (7143), 407-412 (2007).
  8. Bernstein, B. E., et al. The mammalian epigenome. Cell. 128 (4), 669-681 (2007).
  9. Weake, V. M., Workman, J. L. Histone ubiquitination: triggering gene activity. Molecular Cell. 29 (6), 653-663 (2008).
  10. Workman, J. L., Kingston, R. E. Alteration of nucleosome structure as a mechanism of transcriptional regulation. Annual Review of Biochemistry. 67 (1), 545-579 (2003).
  11. Kouzarides, T. Chromatin modifications and their function. Cell. 128 (4), 693-705 (2007).
  12. Akhtar, J., More, P., Albrecht, S. ChIP-Seq from limited starting material of K562 cells and Drosophila neuroblasts using tagmentation assisted fragmentation approach. Bio-protocol. 10 (4), 3520 (2020).
  13. Steinhauser, S., Kurzawa, N., Eils, R., Herrmann, C. A comprehensive comparison of tools of differential ChIP-seq analysis. Briefings in Bioinformatics. 17 (6), 953-966 (2016).
  14. Kieu, T., et al. MoSET1 (histone H3K4 methyltransferase in Magnaporthe oryzae) regulates global gene expression during infection-related morphogenesis. Plos Genetics. 11 (7), 11005385 (2015).
  15. Vu, B. V., Pham, K. T., Nakayashiki, H. Substrate-induced transcriptional activation of the MoCel7C cellulase gene is associated with methylation of histone H3 at lysine 4 in the rice blast fungus Magnaporthe oryzae. Applied and Environmental Microbiology. 79 (21), 6823-6832 (2013).
  16. Kazan, K., Gardiner, D. M., Manners, J. M. On the trail of a cereal killer: recent advances in Fusarium graminearum pathogenomics and host resistance. Molecular Plant Pathology. 13 (4), 399-413 (2012).
  17. Wang, G. H., et al. The AMT1 arginine methyltransferase gene is important for plant infection and normal hyphal growth in Fusarium graminearum. PLoS One. 7 (5), 38324 (2012).
  18. Liu, Y., et al. Histone H3K4 methylation regulates hyphal growth, secondary metabolism and multiple stress responses in Fusarium graminearum. Environmental Microbiology. 17 (11), 4615-4630 (2016).
  19. Zhang, M. Y., et al. The plant infection test: spray and wound-mediated inoculation with the plant pathogen Magnaporthe grisea. Journal of Visualized Experiments. (138), e57675 (2018).
  20. Connolly, L. R., Smith, K. M., Freitag, M. The Fusarium graminearum histone H3K27 methyltransferase KMT6 regulates development and expression of secondary metabolite gene clusters. PloS Genetics. 9 (10), 1003916 (2013).
  21. Palmer, J. M., et al. Loss of CclA, required for histone 3 lysine 4 methylation, decreases growth but increases secondary metabolite production in Aspergillus fumigatus. PeerJ. 1, 4 (2013).
  22. Ding, S. L., et al. The Tig1 histone deacetylase complex regulates infectious growth in the rice blast fungus Magnaporthe oryzae. The Plant Cell. 22 (7), 2495-2508 (2010).
  23. Dean, R. A., et al. The genome sequence of the rice blast fungus Magnaporthe grisea. Nature. 434 (7036), 980-986 (2005).
  24. Allis, C. D., et al. New nomenclature for chromatin-modifying enzymes. Cell. 131 (4), 633-636 (2007).
  25. Shilatifard, A. The COMPASS family of histone H3K4 methylases: mechanisms of regulation in development and disease pathogenesis. Annual Review of Biochemistry. 81, 65-95 (2012).
  26. Zhou, S. D., et al. The COMPASS-like complex modulates fungal development and pathogenesis by regulating H3K4me3-mediated targeted gene expression in Magnaporthe oryzae. Molecular Plant Pathology. 22 (4), 422-439 (2021).
check_url/fr/62423?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Wu, Z., Sun, W., Zhou, S., Zhang, L., Zhao, X., Xu, Y., Wang, W. Genome-wide Analysis of Histone Modifications Distribution using the Chromatin Immunoprecipitation Sequencing Method in Magnaporthe oryzae. J. Vis. Exp. (172), e62423, doi:10.3791/62423 (2021).

View Video