Summary

इन विट्रो संवहनी रोग मॉडलिंग और दवा परीक्षण के लिए माउस भ्रूण स्टेम कोशिकाओं का उपयोग करके एंजियोजेनेसिस की त्रि-आयामी अंकुरण परख

Published: May 11, 2021
doi:

Summary

यह परख विट्रो में अंकुरित एंजियोजेनेसिस को नियंत्रित करने वाली जैविक प्रक्रियाओं का विश्लेषण करने के लिए 3 डी-कोलेजन जेल में संवर्धित भ्रूण निकायों में विभेदित माउस भ्रूण स्टेम कोशिकाओं का उपयोग करती है। तकनीक को दवाओं के परीक्षण, बीमारियों के मॉडलिंग और विलोपन के संदर्भ में विशिष्ट जीन ों का अध्ययन करने के लिए लागू किया जा सकता है जो भ्रूण रूप से घातक हैं।

Abstract

प्रेरित प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल (आईपीएससी) और जीन संपादन प्रौद्योगिकियों में हालिया प्रगति फेनोटाइपिक दवा खोज (पीडीडी) कार्यक्रमों के लिए नए मानव सेल-आधारित रोग मॉडल के विकास को सक्षम करती है। यद्यपि ये नए उपकरण मनुष्यों में जांच दवाओं की सुरक्षा और प्रभावकारिता की अधिक सटीक भविष्यवाणी कर सकते हैं, क्लिनिक में उनका विकास अभी भी स्तनधारी डेटा पर दृढ़ता से निर्भर करता है, विशेष रूप से माउस रोग मॉडल का उपयोग। मानव ऑर्गनॉइड या ऑर्गन-ऑन-चिप रोग मॉडल के समानांतर, प्रासंगिक इन विट्रो माउस मॉडल का विकास इसलिए प्रजातियों के बीच और विवो और इन विट्रो स्थितियों में प्रत्यक्ष दवा प्रभावकारिता और सुरक्षा तुलना के मूल्यांकन के लिए एक अपूर्ण आवश्यकता है। यहां, एक संवहनी अंकुरण परख जो भ्रूण के शरीर (ईबी) में विभेदित माउस भ्रूण स्टेम कोशिकाओं का उपयोग करती है, का वर्णन किया गया है। 3 डी-कोलेजन जेल पर संवर्धित संवहनी ईबी नई रक्त वाहिकाओं को विकसित करते हैं जो विस्तार करते हैं, एक प्रक्रिया जिसे अंकुरित एंजियोजेनेसिस कहा जाता है। यह मॉडल विवो स्प्राउटिंग एंजियोजेनेसिस की प्रमुख विशेषताओं को पुन: प्रस्तुत करता है- पहले से मौजूद संवहनी नेटवर्क से रक्त वाहिकाओं का गठन- जिसमें एंडोथेलियल टिप सेल चयन, एंडोथेलियल सेल माइग्रेशन और प्रसार, सेल मार्गदर्शन, ट्यूब गठन और भित्ति कोशिका भर्ती शामिल हैं। यह एंजियोजेनेसिस को संशोधित करने वाली दवाओं और जीन ों के लिए स्क्रीनिंग के लिए उत्तरदायी है और मानव आईपीएससी प्रौद्योगिकियों के आधार पर हाल ही में वर्णित त्रि-आयामी (3 डी) संवहनी परख के साथ समानताएं दिखाता है।

Introduction

पिछले तीन दशकों में, दवा उद्योग द्वारा दवा की खोज में लक्ष्य-आधारित दवा खोज (टीडीडी) को व्यापक रूप से नियोजित किया गया है। टीडीडी एक बीमारी में एक महत्वपूर्ण भूमिका निभाने वाले एक परिभाषित आणविक लक्ष्य को शामिल करता है और दवा स्क्रीनिंग1 के लिए अपेक्षाकृत सरल सेल कल्चर सिस्टम और रीडआउट के विकास पर निर्भर करता है। टीडीडी कार्यक्रमों में उपयोग किए जाने वाले अधिकांश विशिष्ट रोग मॉडल में पारंपरिक सेल कल्चर विधियां शामिल हैं जैसे कि कैंसर कोशिकाएं या कृत्रिम वातावरण और गैर-शारीरिक सब्सट्रेट्स के भीतर उगाई गई अमर सेल लाइनें। यद्यपि इनमें से कई मॉडलों ने सफल दवा उम्मीदवारों की पहचान करने के लिए व्यवहार्य उपकरण प्रदान किए हैं, लेकिन ऐसी प्रणालियों का उपयोग उनकी खराब बीमारी प्रासंगिकता के कारण संदिग्ध होसकता है।

अधिकांश बीमारियों के लिए, अंतर्निहित तंत्र वास्तव में जटिल होते हैं और विभिन्न सेल प्रकार, स्वतंत्र सिग्नलिंग मार्ग, और जीन के कई सेट अक्सर एक विशिष्ट रोग फेनोटाइप में योगदान करने के लिए पाए जाते हैं। यह विरासत में मिली बीमारियों के लिए भी सच है जहां प्राथमिक कारण एक एकल जीन में उत्परिवर्तन है। मानव प्रेरित प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल (आईपीएससी) प्रौद्योगिकियों और जीन संपादन उपकरणों के हालिया आगमन के साथ, अब 3 डी ऑर्गेनोइड्स और ऑर्गन-ऑन-चिप रोग मॉडल उत्पन्न करना संभव है जो विवो मानव जटिलता 3,4 में बेहतर सुधार कर सकते हैं। ऐसी प्रौद्योगिकियों का विकास फेनोटाइपिक दवा खोज (पीडीडी) कार्यक्रमों में रुचि में पुनरुत्थान के साथ जुड़ा हुआ है। पीडीडी की तुलना अनुभवजन्य स्क्रीनिंग से की जा सकती है, क्योंकि वे एक विशिष्ट दवा लक्ष्य की पहचान के ज्ञान या बीमारी में इसकी भूमिका के बारे में एक परिकल्पना पर भरोसा नहीं करते हैं। पीडीडी दृष्टिकोण अब पहली श्रेणीकी दवाओं की खोज में दृढ़ता से योगदान करने के लिए तेजी से मान्यता प्राप्त है। क्योंकि मानव ऑर्गनॉइड और ऑर्गन-ऑन-चिप प्रौद्योगिकियों का विकास अभी भी अपनी प्रारंभिक अवस्था में है, यह उम्मीद की जाती है कि आईपीएससी मॉडल (अभिनव इमेजिंग और मशीन-लर्निंग टूल 6,7 के साथ पूरक) निकट भविष्य में, दवा स्क्रीनिंग के लिए कई नए जटिल सेल-आधारित रोग मॉडल और टीडीडीदृष्टिकोण 8 की खराब उत्पादकता को दूर करने के लिए संबंधित पीडीडी कार्यक्रम प्रदान करेंगे9.

जबकि मानव ऑर्गनॉइड और ऑर्गन-ऑन-चिप मॉडल रोग जटिलता में महत्वपूर्ण अंतर्दृष्टि प्रदान कर सकते हैं और नई दवाओं की पहचान कर सकते हैं, दवाओं को नए नैदानिक अभ्यास में लाना भी उनकी प्रभावकारिता और सुरक्षा का आकलन करने के लिए पशु मॉडल के डेटा पर दृढ़ता से निर्भर करता है। उनमें से, आनुवंशिक रूप से संशोधित चूहे निश्चित रूप से सबसे पसंदीदा स्तनधारी मॉडल हैं। उनके पास कई फायदे हैं क्योंकि उनके पास स्तनधारियों के लिए अपेक्षाकृत कम पीढ़ी का समय है, मानव रोगों के समान कई फेनोटाइप हैं, और आसानी से आनुवंशिक रूप से हेरफेर किया जा सकता है। इसलिए वे दवा खोज कार्यक्रमों10 में बड़े पैमाने पर उपयोग किए जाते हैं। हालांकि, चूहों और मनुष्यों के बीच की खाई को पाटना एकमहत्वपूर्ण चुनौती बनी हुई है। मानव ऑर्गनॉइड और ऑर्गन-ऑन-चिप मॉडल के बराबर इन विट्रो माउस मॉडल का विकास कम से कम आंशिक रूप से इस अंतर को भर सकता है क्योंकि यह विवो माउस और इन विट्रो मानव डेटा के बीच प्रत्यक्ष दवा प्रभावकारिता और सुरक्षा तुलना की अनुमति देगा।

यहां, माउस भ्रूण निकायों (ईबी) में एक संवहनी अंकुरण परख का वर्णन किया गया है। रक्त वाहिकाएं एंडोथेलियल कोशिकाओं (पोत की दीवारों की आंतरिक परत), भित्ति कोशिकाओं (संवहनी चिकनी मांसपेशी कोशिकाओं और पेरिसाइट) से बनी होती हैं। यह प्रोटोकॉल माउस भ्रूण स्टेम कोशिकाओं (एमईएससी) को संवहनी ईबी में विभेदन पर आधारित है, जिसमें लटकती बूंदों का उपयोग किया जाता है जो डे नोवो एंडोथेलियल सेल और म्यूरल सेल भेदभाव13,14 को पुन: उत्पन्न करते हैं। माउस ईएससी को अलग-अलग दिन 3.5 माउस ब्लास्टोसिस्ट से संस्कृति में आसानी से स्थापित किया जा सकता है जिसमें अलग-अलग आनुवंशिक पृष्ठभूमि होतीहै। वे क्लोनल विश्लेषण, वंश अनुरेखण के लिए संभावनाएं भी प्रदान करते हैं, और रोग मॉडल13,16 उत्पन्न करने के लिए आसानी से आनुवंशिक रूप से हेरफेर किया जा सकता है।

चूंकि रक्त वाहिकाएं सभी अंगों का पोषण करती हैं, इसलिए यह आश्चर्य की बात नहीं है कि कई बीमारियां यदि सभी नहीं, तो माइक्रोवास्कुलचर में परिवर्तन से जुड़ी होती हैं। पैथोलॉजिकल स्थितियों में, एंडोथेलियल कोशिकाएं एक सक्रिय स्थिति को अपना सकती हैं या निष्क्रिय हो सकती हैं जिसके परिणामस्वरूप भित्ति कोशिका मृत्यु या रक्त वाहिकाओं से दूर प्रवास हो सकता है। इनके परिणामस्वरूप अत्यधिक एंजियोजेनेसिस या वाहिका दुर्लभता हो सकती है, असामान्य रक्त प्रवाह और दोषपूर्ण रक्त वाहिका बाधा को प्रेरित कर सकती है जिससे प्रतिरक्षा कोशिका बहिर्वाह और सूजन 12,17,18,19 हो सकती है। रक्त वाहिकाओं को संशोधित करने वाली दवाओं के विकास के लिए अनुसंधान, इसलिए उच्च है, और चिकित्सीय लक्ष्यीकरण के लिए कई आणविक खिलाड़ियों और अवधारणाओं की पहचान पहले से ही की जा चुकी है। इस संदर्भ में, वर्णित प्रोटोकॉल रोग मॉडल के निर्माण और दवा परीक्षण के लिए विशेष रूप से उपयुक्त है क्योंकि यह एंडोथेलियल टिप और डंठल सेल चयन, एंडोथेलियल सेल माइग्रेशन और प्रसार, एंडोथेलियल सेल मार्गदर्शन, ट्यूब गठन और भित्ति सेल भर्ती सहित विवो स्प्राउटिंग एंजियोजेनेसिस की प्रमुख विशेषताओं को पुन: प्रस्तुत करता है। यह मानव आईपीएससी प्रौद्योगिकियों20 के आधार पर हाल ही में वर्णित 3 डी संवहनी परख के साथ समानताएं भी दिखाता है।

Protocol

1. मीडिया तैयारी और एमईएससी की संस्कृति 10% (वॉल्यूम/वॉल्यूम) हीट-इनएक्टिवेटेड फीटल बोवाइन सीरम (एफबीएस), 0.05 एमएम β-मर्कैप्टोइथेनॉल, 1एक्स गैर-आवश्यक अमीनो एसिड (एनईएए 1एक्स), 2 एमएम एल-ग्लूटामाइन और 1 एमएम ?…

Representative Results

रक्त वाहिका अंकुरण परख का प्रोटोकॉल अवलोकन चित्रा 1 में दिखाया गया है। तीन स्वतंत्र 129/ओला एमईएससी लाइनों (जेड/रेड, आर1 और ई14) से प्राप्त नौ दिन पुराने ईबी को कोलेजनेस ए का उपयोग करके एकल कोशिका?…

Discussion

यह प्रोटोकॉल एक निष्पक्ष, मजबूत और प्रतिलिपि प्रस्तुत करने योग्य 3 डी ईबी-आधारित संवहनी अंकुरण परख का वर्णन करता है जो एंजियोजेनेसिस को संशोधित करने वाली दवाओं और जीन ों के लिए स्क्रीनिंग के लिए उत्तर?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम को नेडरलैंड्स ऑर्गनाइजेशन वूर गेज़ोन्डहाइडोंडरज़ोक एन ज़ोर्गिनोवटी (ज़ोनएमडब्ल्यू 446002501), हेल्थ हॉलैंड (एलएसएचएम 19057-एच040), लीडिंग फेलो प्रोग्राम मैरी स्क्लोडोवस्का-क्यूरी कॉफंड और एसोसिएशन मलाडी डी रेंडू-ओस्लर (एएमआरओ) से अनुदान द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

2-mercaptoethanol Milipore, Merck 805740 Biohazard: adequate safety instructions should be taken when handling
Agar Noble Difco, BD Pharmigen 214220
Alexa Fluo 555 goat anti rat IgG Life technologies A21434
APC conjugated rat anti-mouse PECAM-1 antibody (clone MEC13.3) BD Biosciences 551262
APC Rat IgG2a κ Isotype Control (Clone  R35-95) BD Biosciences 553932
Axiovert 25 inverted phase contrast tissue culture microscope ZEISS
Basic Fibroblast Growth Factor-2 (bFGF) Peprotech 450-33
Benchtop Centrifuge, Allegra X-15R Beckman Coulter 392932
Biosafety cabinet BioVanguard (Green Line) Telstar 133H401001
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A9418
Cell counting chamber, Buerker, 0.100mm Marienfeld 640211
Cell culture dishes 60 x 15mm Corning 353802
Cell culture dishes, 35 x 10 mm Corning 353801
Cell culture plates 12-well Corning 3512
CFX96 Touch Real-Time PCR Detection System Biorad 1855196
Chicken serum Sigma-Aldrich C5405
CHIR-99021 (CT99021) HCl Selleckchem S2924
Collagen I, High Concentration, Rat Tail, 100mg Corning 354249
Collagenase A Roche 10103586001
Confocal Laser Scanning Microscope, TCS SP5 Leica
Cover glasses, 24 × 50 mm Vwr 631-0146
DAPT γ‑secretase inhibitor Sigma Aldrich D5942
DC101 anti mouse VEGFR-2 Clone BioXcell BP0060
DC101 isotype rat IgG1 BioXcell BP0290
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D2438-5X Biohazard: adequate safety instructions should be taken when handling
DPBS (10x), no calcium, no magnesium Gibco, Thermofisher scientific 14200067
EDTA 40 mM Gibco, Thermofisher scientific 15575-038
Embryonic stem-cell Fetal Bovine Serum Gibco, Thermofisher scientific 16141-079 Should be lot-tested for maximum ES cell viability and growth. Heat inactivate at 60°C and store at −20 °C for up to 1 year
Eppendorf Microcentrifuge 5415R Eppendorf AG  Z605212
Erythropoietin, human (hEPO), 250 U (2.5 µg) (1 mL) Roche 11120166001
ESGRO Recombinant Mouse LIF Protein (10⁷ units  1 mL) Milipore, Merck ESG1107
Falcon tubes 15 mL Greiner Bio-One 188271
Falcon tubes 50 mL Greiner Bio-0ne 227270
Filter tip ,clear ,sterile F.Gilson, P-200 Greiner Bio-One 739288
Filter tip ,clear ,sterile F.Gilson, P10 Greiner Bio-One 771288
Filter tip ,clear ,sterile F.Gilson, P1000 Greiner Bio-One 740288
FITC conjugated anti-α Smooth Muscle Actin (SMA) (clone 1A4) Sigma Aldrich F3777
FITC conjugated rat anti-mouse CD45 (clone 30-F11) Biolegend 103107
FITC Rat IgG2b, κ Isotype Ctrl Antibody (clone RTK4530) Biolegend 400605
Fluorscent mounting media DAKO S3023
Gascompress Cutisoft 45846
Gauze Cutisoft 10 x 10 cm Bsn Medical 45844_00
Gel blotting paper, Grade GB003 Whatman WHA10547922
Gelatin solution, type B Sigma-Aldrich G1393-100 ml
Glasgow's MEM (GMEM) Gibco, Thermofisher scientific 21710082
IHC Zinc Fixative BD Pharmigen 550523
IncuSafe CO2 Incubator PHCBi MCO-170AICUV-PE
Interleukin-6, human (hIL-6) Roche 11138600001
L-Glutamine 200 mM Gibco, Thermofisher scientific 25030-024
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100x) Gibco, Thermofisher scientific 11140035
Microscope slide box Kartell Labware 278
Microscope slide, Starfrost Knittel glass VS113711FKB.0
Mm_Cdh5_1_SG QuantiTect Primer Assay Qiagen QT00110467
Mm_Eng_1_SG QuantiTect Primer Assay Qiagen QT00148981
Mm_Epha4_1_SG QuantiTect Primer Assay Qiagen QT00093576
Mm_Ephb2_1_SG QuantiTect Primer Assay Qiagen QT00154014
Mm_Flt1_1_SG QuantiTect Primer Assay Qiagen QT00096292
Mm_Flt4_1_SG QuantiTect Primer Assay Qiagen QT00099064
Mm_Gapdh_3_SG QuantiTect Primer Assay Qiagen QT01658692
Mm_Kdr_1_SG QuantiTect Primer Assay Qiagen QT00097020
Mm_Notch1_1_SG QuantiTect Primer Qiagen QT00156982
Mm_Nr2f2_1_SG QuantiTect Primer Assay Qiagen QT00153104
Mm_Pecam1_1_SG QuantiTect Primer Qiagen QT01052044
Mm_Tek_1_SG QuantiTect Primer Assay Qiagen QT00114576
Mouse (ICR) Inactivated Embryonic Fibroblasts  (2 M) Gibco, Thermofisher scientific A24903 Store vials in liquid nitrogen (195.79 °C) indefinitely
Mouse embryonic stem cell line 7AC5/EYFP (ATCC SCRC-1033) ATCC SCRC-1033 Generated by Dr A Nagy, Samuel Lunenfeld Research Institute, Mount Sinai Hospital, 600 University Ave, Toronto, Ontario, M5G 1X5, Canada. [Hadjantonakis, A. K., et al. Mechanisms of Development. 76 (1–2), 79–90 (1998)].
Mouse embryonic stem cell lines Acvrl1 +/- and Acvrl1 +/+ Generated at Leiden University Medical Centre [Thalgott, J.H. et al. Circulation. 138 (23), 2698–2712 (2018)].
Mouse embryonic stem cells line E14 Provided by M Letarte laboratory and generated according to Cho, S. K., et al. Blood. 98 (13), 3635–3642 (2001).
Mouse embryonic stem cells line R1 (ATCC SCRC-1011) ATCC SCRC-1011 Generated by Dr A Nagy, Samuel Lunenfeld Research Institute, Mount Sinai Hospital, 600 University Ave, Toronto, Ontario, M5G 1X5, Canada. [Nagy, A., et al. Procedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (18), 8424–8428 (1993)].
Mouse embryonic stem cells line Z/Red (strain 129/Ola) Generated by Dr A Nagy, Samuel Lunenfeld Research Institute, Mount Sinai Hospital, 600 University Ave, Toronto, Ontario, M5G 1X5, Canada [Vintersten, K., et al. Genesis. 40 (4), 241–246 (2004)].
NanoDrop 1000 UV/VIS Spectrophotometer Thermo Fischer Scientific ND-1000
PD0325901 Selleckchem S1036
PDGF-BB, Recombinant Human Peprotech 100-14B
Pecam-1 antibody, Rat Anti-Mouse BD Biosciences 550274
Penicillin-streptomycin (10,000 U/mL) Gibco, Thermofisher scientific 15140122
Petri dish, PS, 94/16 mm, standard ,with vents, sterile Greiner Bio-One 633181
Pipetboy acu 2 Integra-Biosciences 155 019
Pipetman G Multichannel P8 x 200G Gilson F144072
Pipetman G Starter Kit, 4 Pipette Kit, P2G, P20G, P200G, P1000G Gilson F167360
Recombinant Human BMP-4 Protein R&D Systems 314-BP
RNeasy Plus mini Kit QIAGEN 74134
Serological pipettes, 10 mL Greiner Bio-One 607 180
Serological pipettes, 25 mL Greiner Bio-One 760 180
Serological pipettes, 5 mL Greiner Bio-One 606 180
Sodium hydroxide (NaOH) Merck 106498
Sodium pyruvate 100 mM Gibco, Thermofisher scientific 11360039
Test tubes 5ml round-bottom with cell-strainer cap Corning 352235
Thermal cycler, T100 Biorad 1861096
Triton X-100 (BioXtra) Sigma Aldrich T9284
Trypan Blue Solution, 0.4% Gibco, Thermofisher scientific 15250061
Trypsin (2.5%) Gibco, Thermofisher scientific 15090046
Vacuum Filter/Storage Bottle System, 500 mL Corning 430758
VEGFA165 , recombinant murine Peprotech 450-32
Water, Sterile Fresenius-Kabi B230531
Waterbath, Lab-Line Digital Thermo Fischer Scientific 18052A

References

  1. Moffat, J. G., Vincent, F., Lee, J. A., Eder, J., Prunotto, M. Opportunities and challenges in phenotypic drug discovery: an industry perspective. Nature Reviews Drug Discovery. 16 (8), 531-543 (2017).
  2. Horvath, P., et al. Screening out irrelevant cell-based models of disease. Nature Reviews. Drug Discovery. 15 (11), 751-769 (2016).
  3. Low, L. A., Mummery, C., Berridge, B. R., Austin, C. P., Tagle, D. A. Organs-on-chips: into the next decade. Nature Reviews. Drug Discovery. , (2020).
  4. Ma, C., Peng, Y., Li, H., Chen, W. Organ-on-a-Chip: A new paradigm for drug development. Trends in Pharmacological Sciences. 42 (2), 119-133 (2021).
  5. Swinney, D. C., Anthony, J. How were new medicines discovered. Nature Reviews Drug Discovery. 10 (7), 507-519 (2011).
  6. Hussain, S., et al. High-content image generation for drug discovery using generative adversarial networks. Neural Networks: The Official Journal of the INternational Neural Network Society. 132, 353-363 (2020).
  7. Scheeder, C., Heigwer, F., Boutros, M. Machine learning and image-based profiling in drug discovery. Current Opinion in Systems Biology. 10, 43-52 (2018).
  8. Wagner, B. K., Schreiber, S. L. The power of sophisticated phenotypic screening and modern mechanism-of-action methods. Cell Chemical Biology. 23 (1), 3-9 (2016).
  9. Scannell, J. W., Bosley, J. When quality beats quantity: Decision theory, drug discovery, and the reproducibility crisis. PLoS One. 11 (2), 0147215 (2016).
  10. Webster, J. D., Santagostino, S. F., Foreman, O. Applications and considerations for the use of genetically engineered mouse models in drug development. Cell and Tissue Research. 380 (2), 325-340 (2020).
  11. Howland, D. S., Munoz-Sanjuan, I. Mind the gap: models in multiple species needed for therapeutic development in Huntington’s disease. Movement Disorders: Official Journal of the Movement Disorder Scoiety. 29 (11), 1397-1403 (2014).
  12. Galaris, G., Thalgott, J. H., Lebrin, F. P. G. Pericytes in hereditary hemorrhagic telangiectasia. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1147, 215-246 (2019).
  13. Thalgott, J. H., et al. Decreased expression of vascular endothelial growth factor receptor 1 contributes to the pathogenesis of hereditary hemorrhagic telangiectasia type 2. Circulation. 138 (23), 2698-2712 (2018).
  14. Lebrin, F., et al. Thalidomide stimulates vessel maturation and reduces epistaxis in individuals with hereditary hemorrhagic telangiectasia. Nature Medicine. 16 (4), 420-428 (2010).
  15. Czechanski, A., et al. Derivation and characterization of mouse embryonic stem cells from permissive and nonpermissive strains. Nature Protocols. 9 (3), 559-574 (2014).
  16. Elling, U., et al. A reversible haploid mouse embryonic stem cell biobank resource for functional genomics. Nature. 550 (7674), 114-118 (2017).
  17. Cheng, J., et al. Targeting pericytes for therapeutic approaches to neurological disorders. Acta Neuropathologica. 136 (4), 507-523 (2018).
  18. Chade, A. R. Small vessels, big role: Renal microcirculation and progression of renal injury. Hypertension. 69 (4), 551-563 (2017).
  19. Jourde-Chiche, N., et al. Endothelium structure and function in kidney health and disease. Nature Reviews. Nephrology. 15 (2), 87-108 (2019).
  20. van Duinen, V., et al. Standardized and scalable assay to study perfused 3D angiogenic sprouting of iPSC-derived endothelial cells in vitro. Journal of Visualized Experiment: JoVE. (153), e59678 (2019).
  21. Chappell, J. C., Taylor, S. M., Ferrara, N., Bautch, V. L. Local guidance of emerging vessel sprouts requires soluble Flt-1. Developmental Cell. 17 (3), 377-386 (2009).
  22. Sato, Y., Rifkin, D. B. Inhibition of endothelial cell movement by pericytes and smooth muscle cells: activation of a latent transforming growth factor-beta 1-like molecule by plasmin during co-culture. Journal of Cell Biology. 109 (1), 309-315 (1989).
  23. Tchaikovski, V., Olieslagers, S., Bohmer, F. D., Waltenberger, J. Diabetes mellitus activates signal transduction pathways resulting in vascular endothelial growth factor resistance of human monocytes. Circulation. 120 (2), 150-159 (2009).
  24. Staton, C. A., Reed, M. W., Brown, N. J. A critical analysis of current in vitro and in vivo angiogenesis assays. International Journal of Experimental Pathology. 90 (3), 195-221 (2009).
  25. Herbert, S. P., Stainier, D. Y. Molecular control of endothelial cell behaviour during blood vessel morphogenesis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 12 (9), 551-564 (2011).
  26. Nakatsu, M. N., Hughes, C. C. An optimized three-dimensional in vitro model for the analysis of angiogenesis. Methods in Enzymology. 443, 65-82 (2008).
  27. Nakatsu, M. N., Davis, J., Hughes, C. C. Optimized fibrin gel bead assay for the study of angiogenesis. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (186), (2007).
  28. Gau, D., et al. Pharmacological intervention of MKL/SRF signaling by CCG-1423 impedes endothelial cell migration and angiogenesis. Angiogenesis. 20 (4), 663-672 (2017).
  29. Torres-Estay, V., et al. Androgens modulate male-derived endothelial cell homeostasis using androgen receptor-dependent and receptor-independent mechanisms. Angiogenesis. 20 (1), 25-38 (2017).
  30. Merjaneh, M., et al. Pro-angiogenic capacities of microvesicles produced by skin wound myofibroblasts. Angiogenesis. 20 (3), 385-398 (2017).
  31. Rezzola, S., et al. In vitro and ex vivo retina angiogenesis assays. Angiogenesis. 17 (3), 429-442 (2014).
  32. Wang, X., Phan, D. T. T., George, S. C., Hughes, C. C. W., Lee, A. P. 3D Anastomosed microvascular network model with living capillary networks and endothelial cell-lined microfluidic channels. Methods in Molecular Biology. 1612, 325-344 (2017).
  33. Nicosia, R. F., Ottinetti, A. Growth of microvessels in serum-free matrix culture of rat aorta. A quantitative assay of angiogenesis in vitro. Laboratory Investigation; A Journal of Technical Methods and Pathology. 63 (1), 115-122 (1990).
  34. Nicosia, R. F. The aortic ring model of angiogenesis: a quarter century of search and discovery. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 13 (10), 4113-4136 (2009).
  35. Nowak-Sliwinska, P., et al. Consensus guidelines for the use and interpretation of angiogenesis assays. Angiogenesis. 21 (3), 425 (2018).
  36. Belair, D. G., Schwartz, M. P., Knudsen, T., Murphy, W. L. Human iPSC-derived endothelial cell sprouting assay in synthetic hydrogel arrays. Acta Biomaterialia. 39, 12-24 (2016).
  37. Bezenah, J. R., Kong, Y. P., Putnam, A. J. Evaluating the potential of endothelial cells derived from human induced pluripotent stem cells to form microvascular networks in 3D cultures. Scientific Reports. 8 (1), 2671 (2018).
  38. Henderson, A. R., Choi, H., Lee, E. Blood and lymphatic vasculatures on-chip platforms and their applications for organ-specific in vitro modeling. Micromachines (Basel). 11 (2), 147 (2020).
  39. Lin, D. S. Y., Guo, F., Zhang, B. Modeling organ-specific vasculature with organ-on-a-chip devices. Nanotechnology. 30 (2), 024002 (2019).
  40. Pollet, A., den Toonder, J. M. J. Recapitulating the vasculature using organ-on-chip technology. Bio-ingénierie. 7 (1), 17 (2020).
  41. Cochrane, A., et al. Advanced in vitro models of vascular biology: Human induced pluripotent stem cells and organ-on-chip technology. Advanced Drug Delivery Reviews. 140, 68-77 (2019).
check_url/fr/62554?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Galaris, G., Thalgott, J. H., Teston, E., Lebrin, F. P. In Vitro Three-Dimensional Sprouting Assay of Angiogenesis Using Mouse Embryonic Stem Cells for Vascular Disease Modeling and Drug Testing. J. Vis. Exp. (171), e62554, doi:10.3791/62554 (2021).

View Video