Summary

Design och utveckling av en modell för att studera effekten av extra syre på cystisk fibros luftvägsmikrobiomet

Published: August 03, 2021
doi:

Summary

Målet med detta protokoll är att utveckla ett modellsystem för effekten av hyperoxia på cystisk fibros luftvägarna mikrobiella samhällen. Konstgjorda sputum medium efterliknar sammansättningen av sputum, och hyperoxic kultur villkor modellera effekterna av kompletterande syre på lung mikrobiella samhällen.

Abstract

Luftvägarna mikrobiella samhällen tros spela en viktig roll i utvecklingen av cystisk fibros (CF) och andra kroniska lungsjukdomar. Mikrober har traditionellt klassificerats baserat på deras förmåga att använda eller tolerera syre. Extra syre är en vanlig medicinsk terapi som ges till personer med cystisk fibros (pwCF); Befintliga studier på syre och luftvägsmikrobiomet har dock fokuserat på hur hypoxi (lågt syre) snarare än hyperoxi (högt syre) påverkar de övervägande aeroba och fakultetsmässiga anaeroba lungmikrobiella samhällena. För att ta itu med denna kritiska kunskapslucka utvecklades detta protokoll med hjälp av ett artificiellt sputum medium som efterliknar sammansättningen av sputum från pwCF. Användningen av filtersterilisering, som ger ett transparent medium, gör det möjligt för optiska metoder att följa tillväxten av encelliga mikrober i suspensionskulturer. För att skapa hyperoxiska förhållanden utnyttjar detta modellsystem etablerade anaeroba odlingstekniker för att studera hyperoxiska förhållanden; Istället för att avlägsna syre tillsätts syre till kulturer genom daglig sparning av serumflaskor med en blandning av komprimerat syre och luft. Sputum från 50 pwCF genomgick daglig sparging under en 72-h period för att verifiera förmågan hos denna modell att upprätthålla differentiella syreförhållanden. Hagelgevär metagenomisk sekvensering utfördes på odlade och uncultured sputum prover från 11 pwCF att verifiera förmågan hos detta medium att stödja tillväxten av commensal och patogena mikrober som ofta finns i cystisk fibros sputum. Tillväxt kurvor erhölls från 112 isolat erhålls från pwCF att verifiera förmågan hos detta konstgjorda sputum medium att stödja tillväxten av gemensamma cystisk fibros patogener. Vi finner att denna modell kan odla en mängd olika patogener och commensals i CF sputum, återhämtar ett samhälle som mycket liknar uncultured sputum under normoxic villkor, och skapar olika kultur fenotyper under varierande syre villkor. Detta nya tillvägagångssätt kan leda till en bättre förståelse av oförutsedda effekter som orsakas av användning av syre i pwCF på luftvägarna mikrobiella samhällen och gemensamma luftvägarna patogener.

Introduction

Cystisk fibros (CF) är en genetisk sjukdom som kännetecknas av en oförmåga att rensa tjock slem från lungorna, vilket leder till upprepade infektioner och progressiv lungfunktionsnedgång som ofta resulterar i behovet av lungtransplantation eller död. Luftvägsmikrobiomet hos personer med cystisk fibros (pwCF) verkar spåra sjukdomsaktivitet1, med en minskning av mikrobiell mångfald i samband med negativa långsiktiga resultat2,3. I kliniska studier av pwCF har kompletterande syreterapi associerats med mer avancerad sjukdom4,5, men traditionellt har användningen av syreterapi setts som helt enkelt en markör för sjukdomens svårighetsgrad6. Nyligen genomförda studier från en klinisk studie av patienter med andningssvikt har visat att högre patientens syrenivåer paradoxalt nog är förknippade med en ökning av allvarliga bakterieinfektioner och högre dödlighet7, vilket tyder på att extra syre kan bidra till sjukdomspatogenes. Effekten av extra syre på cystisk fibros lung mikrobiom och tillhörande lung- och luftvägarna mikrobiella samhällen har inte studerats väl.

Mekanistiska studier kan ofta inte utföras direkt på mänskliga ämnen på grund av logistiska svårigheter och potentiella etiska frågor i samband med interventioner av okänd medicinsk nytta eller skada. Translationella metoder som integrerar mänskliga biospecimens i modellsystem kan erbjuda viktiga biologiska insikter i dessa fall. Medan förmågan att använda eller tolerera syre traditionellt har varit en viktig komponent i mikrobiell klassificering, är lite känt om hur den terapeutiska introduktionen av extra syre till miljön kan störa luftvägarna mikrobiella samhällen. För att belysa de okända effekterna av extra syre på pwCF:s luftvägsmikrobiomer behövde vi ta itu med två stora utmaningar. För det första skapandet av ett odlingsmedium som fysiologiskt approximerar sammansättningen av CF sputum; För det andra, skapandet av ett modellsystem som gör det möjligt att upprätthålla förhöjda syrekoncentrationer i kulturen under längre tidsperioder.

Konstgjorda sputum media (ASM) används ofta för att efterlikna lung sputum ex vivo8,9,10, men det finns ingen tydlig konsensus om ett specifikt recept. Detta protokoll beskriver en konstgjord sputum medium recept och beredning strategi noggrant utformad för fysiologiskt approximim sputum från pwCF. I tabell 1 beskrivs de valda receptvärdena baserat på publicerad litteratur. Grundläggande kemiska komponenter och pH matchades med värden som identifierats genom studier av human CF sputum11,12,13. Låg koncentration fysiologiska näringsämnen tillsattes med äggula, som inkluderades som 0,25% av den slutliga volymen10, liksom vitamin och spårmetallblandningar14,15. Mucin, nyckelkomponenten i sputum16, inkluderades vid 1% w/v14. Även om det var mer arbetsintensivt valdes filtersterilisering över den mer konventionella metoden med värmesterilisering för att minska potentiella problem från värmeinducerad denaturering av väsentliga mediekomponenter10. En ytterligare fördel med filtersterilisering är att det genererar media som är transparenta (värmesterilisering kan skapa grumliga medier på grund av utfällning och koagulering av salter och proteiner), vilket gör att detta konstgjorda sputummedium kan användas för att följa mikrobiell tillväxt baserat på ökningar av grumlighet.

Detta modellsystem för den hyperoxiska kulturen är baserat på anaeroba odlingstekniker där syre tillsätts snarare än avlägsnas, vilket skapar en modell för effekten av kompletterande syreanvändning för pwCF. Figur 1 och det tillhörande syresparningsprotokollet beskriver komponenterna i ett syresparsystem, som kan erhållas till låg kostnad från allmänna laboratorie- och sjukhusleverantörer. Detta system möjliggör blandning av komprimerat syre och luft till fasta koncentrationer som sträcker sig från 21%-100% syre. Integreringen av en syresensor möjliggör verifiering av koncentrationen av utgångsgasblandningen, samt kontroll av utflödesgassammansättningen hos tidigare spargade serumflaskor för att verifiera att syreförhållandena har hållits inom önskat intervall.

Detta protokoll beskriver förfaranden för att skapa ett artificiellt sputum medium, konstruktion och användning av ett syre sparging system, och tillämpningen av båda att odla CF sputum under differentiella syreförhållanden.

Protocol

Denna studie fick godkännande från Partners Institutional Review Board (protokoll # 2018P002934). Inklusionskriteriumet inkluderade vuxna patienter med cystisk fibros som gav skriftligt informerat samtycke till studien. Det fanns inget uteslutningskriterium. Enligt protokoll riktlinjer samlades alla sputum prover från patienter med cystisk fibros under ett planerat öppenvårdsbesök med sin kliniska leverantör. 1. Konstgjord Sputum Medium Förberedelse OBS: De kv…

Representative Results

Dessa protokoll tillämpades på 50 expectorated sputum prover från pwCF presenterar för rutinmässig vård till en öppenvården cystisk fibros klinik vid Massachusetts General Hospital i Boston, Massachusetts. Varje patients sputum odlades under 21%, 50% och 100% syre villkor med hjälp av konstgjorda sputum medium, med 0,5 mL alikvoter tas från varje kultur vid 24 h, 48 h och 72 h kultur tid för testning. Kulturer fotograferades när extraktioner gjordes för att spåra visuella förändringar. Dessutom togs en 0,…

Discussion

I denna studie utvecklades en in vitro-modell för att studera effekten av hyperoxia på lungmikrobiella samhällen. Denna modell, baserad på artificiell sputum medium och daglig sparning av serumflaskor, upprätthåller förhöjda syrekoncentrationer och stöder tillväxten av mikrober som identifierats i sputum från pwCF.

Det finns flera kritiska steg i detta tillvägagångssätt. Först är valet att använda filtersterilisering snarare än värmesterilisering av det konstgjorda …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

En del av detta arbete utfördes på Marine Biological Lab med stöd från Marine Biological Lab, DOE (DE-SC0016127), NSF (MCB1822263), HHMI (bidragsnummer 5600373) och en gåva från Simons Foundation.

Materials

BME Vitamins (100x) Solution MilliporeSigma B6891 Concentrated solution of supplemental vitamins.
Crimper, 30 mm DWK Life Sciences 224307 Crimper for attaching aluminum seals to serum bottles.
D-(+)-Glucose MilliporeSigma G7021 Solid glucose powder (dextrorotatory isomer).
Diaphragm Pump ME 2 NT VACUUBRAND 20730003 Vacuum pump for vacuum filtration.
Egg Yolk Emulsion HiMedia FD045 Sterile emulsion of 30% egg yolk in saline.
Ferritin, Cationized from Horse Spleen MilliporeSigma F7879 Ferritin (iron-storage protein) solution.
FIREBOY plus Safety Bunsen Burner Integra Biosciences 144000 Bunsen burner with user interface and safety features.
Hydrion pH Paper (1.0–14.0) Micro Essential Laboratory 94 pH testing paper for the range of 1.0–14.0.
Hydrion pH Paper (4.0–9.0) Micro Essential Laboratory 55 pH testing paper for the range of 4.0–9.0.
Hydrion pH Paper (6.0–8.0) Micro Essential Laboratory 345 pH testing paper for the range of 6.0–8.0.
Hypodermic Needle-Pro EDGE Safety Device, 18 G Smiths Medical 401815 18 G needles with safety caps.
In-Line Pressure Gauge MilliporeSigma 20469 Gas pressure gauge for monitoring bottle pressure.
Innova 42 Incubated Shaker Eppendorf 2231000756 Combination incubator/orbital shaker.
Luer-Lok Syringe with Attached Needle Becton Dickinson 309580 Combination 3 mL syringe and 18 G needle.
Luer Valve Assortment World Precision Instruments 14011 Valves for gas flow tubing.
LSE Orbital Shaker ThermoFisher Scientific 6780-NP Orbital shaker to agitate media during filtration.
Magnesium Sulfate Heptahydrate MilliporeSigma M2773 Solid epsom salt (magnesium sulfate heptahydrate).
Medical Air Single Stage Regulator with Flowmeter Western Enterprises M1-346-15FM Air flow rate regulator with 15 L/min meter.
MEM Amino Acids (50x) Solution MilliporeSigma M5550 Concentrated solution of essential amino acids.
MEM Non-Essential Amino Acids (100x) Solution MilliporeSigma M7145 Concentrated solution of non-essential amino acids.
Millex-GP Filter, 0.22 µm MilliporeSigma SLMP25SS 0.22 µm polyethersulfone membrane sterile syringe filter.
Milli-Q Academic MilliporeSigma ZMQS60E01 Milli-Q sterile water filtration system.
MiniOX 3000 Oxygen Monitor MSA 814365 Gas flow oxygen percentage monitor.
MOPS Buffer (1 M, pH 9.0) Boston BioProducts BBM-90 MOPS buffer for adjusting media pH.
Mucin from Porcine Stomach MilliporeSigma M2378 Mucin (glycosylated gel-forming protein) powder.
Natural Polypropylene Barbed Fitting Kit Harvard Apparatus 72-1413 Connectors for gas flow tubing.
Nextera XT DNA Library Preparation Kit Illumina FC-131-1096 Library preparation for identification during sequencing.
NovaSeq 6000 Sequencing System Illumina 770-2016-025-N Shotgun sequencing platform for generating sample reads.
Oxygen Single Stage Regulator with Flowmeter Western Enterprises M1-540-15FM Oxygen flow rate regulator with 15 L/min meter.
Oxygen Tubing with 2 Standard Connectors SunMed 2001-01 Tubing for connecting gas system components.
Phosphate buffered saline, 10x, pH 7.4 Molecular Biologicals International MRGF-6235 Concentrated phosphate-buffered saline solution.
PC 420 Hot Plate/Stirrer Marshall Scientific CO-PC420 Combination hot plate/stirrer.
Potassium Chloride MilliporeSigma P9541 Solid potassium chloride salt.
PTFE Disposable Stir Bars ThermoFisher Scientific 14-513-95 Disposable magnetic stir bars.
PTFE Thread Seal Teflon Tape VWR 470042-938 Teflon tape for reinforcing gas system connections.
Q-Gard 2 Purification Cartridge MilliporeSigma QGARD00D2 Purification cartridge for Milli-Q system.
Reusable Media Storage Bottles ThermoFisher Scientific 06-423A Bottles for mixing and storing culture media.
Rubber Stopper, 30 mm, Gray Bromobutyl DWK Life Sciences 224100-331 Rubber stoppers for serum bottles.
Serum Bottle with Molded Graduations, 500 mL DWK Life Sciences 223952 Glass serum bottles for sealed culturing.
Small Bore Extension Set Braun Medical 471960 Tubing extension with luer lock connectors.
Sodium Chloride MilliporeSigma S3014 Solid sodium chloride salt.
Spike-in Control I (High Microbial Load) ZymoBIOMICS D6320 Spike-in microbes (I. halotolerans and A. halotolerans) for absolute microbial load calculations
Stericup Quick Release Sterile Vacuum Filtration System MilliporeSigma S2GPU02RE 250 mL 0.22 µm vacuum filtration chamber.
Super Sani-Cloth Germicidal Disposable Wipes Professional Disposables International H04082 Disposable germicidal wipes for sterilization.
Trace Metals Mixture, 1000x ThermoFisher Scientific NC0112668 Concentrated solution of physiological trace metals.
Unlined Aluminum Seal, 30 mm DWK Life Sciences 224187-01 Aluminum seals crimped over top of rubber stoppers.
USP Medical Grade Air Tank Airgas AI USP200 Compressed air tank for input to sparging system.
USP Medical Grade Oxygen Tank Airgas OX USP200 Compressed oxygen tank for input to sparging system.

References

  1. Carmody, L. A., et al. Fluctuations in airway bacterial communities associated with clinical states and disease stages in cystic fibrosis. PLoS One. 13 (3), 0194060 (2018).
  2. Acosta, N., et al. Sputum microbiota is predictive of long-term clinical outcomes in young adults with cystic fibrosis. Thorax. 73 (11), 1016-1025 (2018).
  3. Muhlebach, M. S., et al. Initial acquisition and succession of the cystic fibrosis lung microbiome is associated with disease progression in infants and preschool children. PLoS Pathogens. 14 (1), 1006798 (2018).
  4. Zolin, A., Bossi, A., Cirilli, N., Kashirskaya, N., Padoan, R. Cystic fibrosis mortality in childhood. Data from European cystic fibrosis society patient registry. International Journal of Environmental Research and Public Health. 15 (9), (2018).
  5. Ramos, K. J., et al. Heterogeneity in survival in adult patients with cystic fibrosis with FEV1 30% of predicted in the United States. Chest. 30 (6), 1320-1328 (2017).
  6. Ramos, K. J., et al. Predictors of non-referral of patients with cystic fibrosis for lung transplant evaluation in the United States. Journal of Cystic Fibrosis. 15 (2), 196-203 (2016).
  7. Girardis, M., et al. Effect of conservative vs conventional oxygen therapy on mortality among patients in an intensive care unit: The Oxygen-ICU randomized clinical trial. JAMA. 316 (15), 1583-1589 (2016).
  8. Comstock, W. J., et al. The WinCF model – An inexpensive and tractable microcosm of a mucus plugged bronchiole to study the microbiology of lung infections. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (123), e55532 (2017).
  9. Diraviam Dinesh, S. Artificial sputum medium. Protocol Exchange. , (2010).
  10. Kirchner, S., et al. Use of artificial sputum medium to test antibiotic efficacy against Pseudomonas aeruginosa in conditions more relevant to the cystic fibrosis lung. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (64), e3857 (2012).
  11. Grandjean Lapierre, S., et al. Cystic fibrosis respiratory tract salt concentration: An Exploratory Cohort Study. Médecine. 96 (47), 8423 (2017).
  12. Palmer, K. L., Aye, L. M., Whiteley, M. Nutritional cues control Pseudomonas aeruginosa multicellular behavior in cystic fibrosis sputum. Journal of Bacteriology. 189 (22), 8079-8087 (2007).
  13. Van Sambeek, L., Cowley, E. S., Newman, D. K., Kato, R. Sputum glucose and glycemic control in cystic fibrosis-related diabetes: a cross-sectional study. PLoS One. 10 (3), 0119938 (2015).
  14. Flynn, J. M., Niccum, D., Dunitz, J. M., Hunter, R. C. Evidence and role for bacterial mucin degradation in cystic fibrosis airway disease. PLoS Pathogens. 12 (8), 1005846 (2016).
  15. Gallagher, T., et al. Liquid chromatography mass spectrometry detection of antibiotic agents in sputum from persons with cystic fibrosis. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 65 (2), (2021).
  16. Voynow, J. A., Rubin, B. K. Mucins, mucus, and sputum. Chest. 135 (2), 505-512 (2009).
  17. Sui, H. Y., et al. Impact of DNA extraction method on variation in human and built environment microbial community and functional profiles assessed by shotgun metagenomics sequencing. Frontiers in Microbiology. 11, 953 (2020).
  18. McIver, L. J., et al. bioBakery: a meta’omic analysis environment. Bioinformatics. 34 (7), 1235-1237 (2018).
  19. Truong, D. T., et al. MetaPhlAn2 for enhanced metagenomic taxonomic profiling. Nature Methods. 12 (10), 902-903 (2015).
  20. Stammler, F., et al. Adjusting microbiome profiles for differences in microbial load by spike-in bacteria. Microbiome. 4 (1), 28 (2016).
  21. Henke, M. O., Renner, A., Huber, R. M., Seeds, M. C., Rubin, B. K. MUC5AC and MUC5B mucins are decreased in cystic fibrosis airway secretions. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 31 (1), 86-91 (2004).
  22. Henderson, A. G., et al. Cystic fibrosis airway secretions exhibit mucin hyper concentration and increased osmotic pressure. Journal of Clinical Investigation. 124 (7), 3047-3060 (2014).
  23. Matthews, L. W., Spector, S., Lemm, J., Potter, J. L. Studies on pulmonary secretions. I. The over-all chemical composition of pulmonary secretions from patients with cystic fibrosis, bronchiectasis, and laryngectomy. American Review of Respiratory Disease. 88, 199-204 (1963).
  24. Ibanez de Aldecoa, A. L., Zafra, O., Gonzalez-Pastor, J. E. Mechanisms and regulation of extracellular DNA release and its biological roles in microbial communities. Frontiers in Microbiology. 8, 1390 (2017).
  25. Tunney, M. M., et al. Detection of anaerobic bacteria in high numbers in sputum from patients with cystic fibrosis. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 177 (9), 995-1001 (2008).
  26. Worlitzsch, D., et al. Effects of reduced mucus oxygen concentration in airway Pseudomonas infections of cystic fibrosis patients. Journal of Clinical Investigation. 109 (3), 317-325 (2002).
check_url/fr/62888?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Vieira, J., Gallagher, T., Sui, H., Jesudasen, S., Whiteson, K., O’Toole, G. A., Hanselmann, K., Lai, P. S. Design and Development of a Model to Study the Effect of Supplemental Oxygen on the Cystic Fibrosis Airway Microbiome. J. Vis. Exp. (174), e62888, doi:10.3791/62888 (2021).

View Video