Summary

Isolamento e coltura di cellule epiteliali gengivali umane primarie utilizzando Y-27632

Published: November 06, 2021
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Summary

Qui presentiamo un metodo modificato per l’isolamento e la coltura di cellule epiteliali gengivali umane aggiungendo l’inibitore della roccia, Y-27632, al metodo tradizionale. Questo metodo è più semplice, richiede meno tempo, migliora le proprietà delle cellule staminali e produce un numero maggiore di cellule epiteliali ad alto potenziale sia per il laboratorio che per le applicazioni cliniche.

Abstract

Il tessuto gengivale è la prima struttura che protegge i tessuti parodontali e svolge ruoli significativi in molte funzioni orali. L’epitelio gengivale è un’importante struttura del tessuto gengivale, specialmente nella riparazione e rigenerazione del tessuto parodontale. Studiare le funzioni delle cellule epiteliali gengivali ha un valore scientifico cruciale, come la riparazione dei difetti orali e la rilevazione della compatibilità dei biomateriali. Poiché le cellule epiteliali gengivali umane sono cellule cheratinizzate altamente differenziate, la loro durata è breve e sono difficili da passare. Finora, ci sono solo due modi per isolare e colturare cellule epiteliali gengivali, un metodo di espianto diretto e un metodo enzimatico. Tuttavia, il tempo necessario per ottenere cellule epiteliali utilizzando il metodo di espianto diretto è più lungo e il tasso di sopravvivenza cellulare del metodo enzimatico è inferiore. Clinicamente, l’acquisizione del tessuto gengivale è limitata, quindi è necessario un sistema di isolamento e coltura in vitro stabile, efficiente e semplice. Abbiamo migliorato il metodo enzimatico tradizionale aggiungendo Y-27632, un inibitore della chinasi rho-associata (ROCK), che può promuovere selettivamente la crescita delle cellule epiteliali. Il nostro metodo enzimatico modificato semplifica le fasi del metodo enzimatico tradizionale e aumenta l’efficienza della coltura delle cellule epiteliali, che presenta vantaggi significativi rispetto al metodo di espianto diretto e al metodo enzimatico.

Introduction

La gengiva umana, la struttura di difesa di prima linea che protegge il tessuto parodontale, non è solo una barriera fisica e chimica1, ma secerne anche diverse classi di mediatori infiammatori che partecipano alle risposte immunitarie e costituiscono una barriera immunitaria2,3. L’epitelio gengivale svolge un ruolo importante nella riparazione e rigenerazione del tessuto parodontale. Pertanto, studiare la difesa e l’immunità dell’epitelio gengivale è di grande importanza per comprendere l’insorgenza, la diagnosi e il trattamento della parodontite. L’isolamento e la coltura di cellule epiteliali gengivali dal tessuto gengivale umano è il primo passo necessario per studiare l’epitelio gengivale. Tale procedura richiede operazioni di base come la produzione di cellule di semi per l’ingegneria tissutale, modelli in vitro di malattie associate parodontali e materiali per la riparazione di difetti parodontali.

Le cellule epiteliali gengivali primarie sono caratterizzate da un basso tasso di divisione in vitro4, i ricercatori hanno cercato un metodo di isolamento e coltivazione ottimale per decenni. Ad oggi, due diverse tecniche, un metodo di espianto diretto e un metodo enzimatico, sono comunemente utilizzate nei laboratori per ottenere cellule epiteliali gengivali primarie in vitro4,5. Il metodo di espianto diretto presenta vantaggi come la necessità di una minore quantità di campioni di tessuto e una semplice procedura di isolamento, ma presenta gli svantaggi di un tempo di coltura più lungo e della suscettibilità alla contaminazione5. Sebbene il metodo enzimatico ridavi il tempo di coltura richiesto, l’efficienza è relativamente bassa e varia a seconda degli enzimi e del mezzo utilizzato. Kedjarune et al.6 hanno dimostrato che il metodo di espianto diretto, che richiede più tempo prima della sottocoltura (2 settimane), sembra avere più successo per la coltivazione di cellule epiteliali gengivali rispetto al metodo enzimatico. Tuttavia, confrontando questi due metodi, Klingbeil et al.7 hanno scoperto che il metodo enzimatico aveva i migliori risultati per le colture primarie di cellule epiteliali orali ed era possibile ottenere la resa cellulare ottimale nel più breve periodo di tempo (11,9 giorni contro 14,2 giorni).

Pertanto, era importante sviluppare un metodo più conveniente ed efficace per l’isolamento e la coltura delle cellule epiteliali orali4. Abbiamo precedentemente riportato che l’aggiunta di Y-27632, un inibitore della proteina chinasi rho-associata (ROCK), semplifica la procedura di isolamento delle cellule epidermiche primarie umane e dei cheratinociti dai tessuti cutanei adulti8,9,10. Abbiamo sviluppato G-medium, un nuovo mezzo di inoculazione condizionato che separa spontaneamente le cellule epidermiche da quelle dermiche e supporta la crescita e la resa delle cellule epidermiche primarie8,9,10. Nel presente studio, abbiamo sviluppato una nuova tecnica di isolamento e coltura senza siero per le cellule epiteliali gengivali combinando G-medium con Y-27632. In sostanza, il nostro metodo si basa su una semplificazione del tradizionale metodo enzimatico in due fasi, quindi abbiamo confrontato il nostro nuovo metodo con il metodo dell’espianto diretto. Questo metodo enzimatico modificato riduce significativamente il tempo necessario per separare le cellule epiteliali gengivali dal tessuto gengivale e aumenta l’efficienza della coltura delle cellule epiteliali gengivali.

Protocol

I tessuti umani utilizzati in questo protocollo sono tessuti gengivali adulti freschi scartati dalle estrazioni dei denti colpiti nel Dipartimento di Chirurgia Maxillo-Facciale secondo le linee guida del Comitato Etico della Ricerca Umana dell’Istituzione (Protocollo n. GR201711, Data: 27-02-2017). 1. Preparativi Raccogliere tessuti gengivali adulti freschi in provette da 15 mL contenenti 10 mL di soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) integrata con penicillina…

Representative Results

La Figura 1 mostra un diagramma schematico del metodo di espianto diretto e del metodo enzimatico modificato. Il metodo di espianto diretto non ha bisogno di alcun enzima digestivo durante l’intero processo. Al contrario, il metodo enzimatico tradizionale di solito ha bisogno di due serie di enzimi digestivi, dispasi e collagenasi, per separare il foglio epiteliale dallo strato di fibroblasti sottostante, e quindi tripsina per rilasciare le cellule epiteliali in sospensione. Il nostro nuovo …

Discussion

Il tessuto gengivale è una struttura chiave che mantiene l’integrità parodontale e la salute. Le cellule epiteliali gengivali hanno ruoli significativi nella riparazione e rigenerazione del tessuto parodontale e possono essere utilizzate nella ricerca scientifica e nelle applicazioni cliniche e campi correlati, tra cui biologia orale, farmacologia, tossicologia e carenze della mucosa orale18. Pertanto, è necessario sviluppare un metodo stabile ed efficiente per raccogliere le cellule epiteliali…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato supportato dal Key Program della Shandong Province Natural Science Foundation (ZR2019ZD36) e dal Key Research and Development Program of Shandong Province (2019GSF108107) a X.W.; il programma chiave di ricerca e sviluppo della provincia di Shandong (2018GSF118240) a J.G.; Progetto di sviluppo medico e sanitario scientifico e tecnologico della provincia di Shandong (2018WS163) a Z.X. e il progetto di sviluppo medico e sanitario scientifico e tecnologico della provincia di Shandong (2019WS045) a J.S.

Materials

Names Abbreviations & Comments
Countess automated cell counter Shanghai Ruiyu Bio-science&Technology Co.Ltd. BBA0218AC Automatic cell counting
CO2 Incubator Thermo Scientific 51026333 For cell incubation
Sorvall ST 16R Centrifuge Thermo Scientific 75004380 Cell centrifuge
Cell Culture Dish Eppendorf 30702115 For cell culture
50 ml Centrifuge Tube KIRGEN 171003 For cell centrifugation
1.5 ml microcentrifuge Tubes KIRGEN 190691J For cell digestion
Cell Strainer Corning incorporated 431792 Cell filtration
Phosphate buffered solution Solarbio Life Science P1020-500 Washing solution
DMEM Thermo Scientific C11995500 Component of neutralization medium
Defined K-SFM Life Technologies 10785-012 Gingival epithelial  cells culture medium
Penicillin Streptomycin Thermo Scientific 15140-122 Antibiotics
Fetal Bovine Serum Biological Industries 04-001-1AC5 Component of neutralization medium
0.05% Trypsin Life Technologies 25300-062 For HGGEPCs dissociation
Dilution Medium Life Technologies 50-9701 For coating matrix
Dispase Gibco 17105-041 For HGGEPCs isolation
Collagenase Type I Life Technologies 17100-017 For HGGEPCs isolation
F12 Nutrient Mix, Hams Life Technologies 31765035 Component of G-medium
B27 Supplement Life Technologies 17504044 Growth factor in G-medium
FGF-2 Millipore Merck Biosciences 341595 Growth factor in G-medium
Y-27632 Gene Operation IAD1011 ROCK inhibitor
Fungizone Gibco 15290026 Preparation for G-medium
EGF Recombinant Human Protein Gibco PHG0311 Growth factor in G-medium
Cell Counting Kit-8 Dojindo Molecular Technologies CK04 For Cell proliferation assay
Rabbit Anti-Human CK18 Abcam ab82254 For immunofluorescence staining to check differentiation marker of HGGEPCs
Rabbit Anti-Human Cytokeratin10 Abcam ab76318 For immunofluorescence staining to check differentiation marker of HGGEPCs
Mouse anti-human Vimentin Cell Signaling Technology 3390 For immunofluorescence staining of Gingival fibroblasts
Rabbit Anti-Human pan-ck BD 550951 For immunofluorescence staining to check differentiation marker of HGGEPCs
rabbit anti-Ki67 Abcam 15580 For immunofluorescence staining to check differentiation marker of HGGEPCs
rabbit anti-p63 Biolegend 619002 For immunofluorescence staining to check differentiation marker of HGGEPCs
rabbit anti-p75NGFR Abcam ab52987 For immunofluorescence staining to check differentiation marker of HGGEPCs

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Citer Cet Article
Xie, Z., Shi, J., Zong, M., Xu, Q., Liu, C., Wen, J., Zhang, Q., Liu, P., Liu, G., Guo, J., Wu, X. Isolation and Culture of Primary Human Gingival Epithelial Cells using Y-27632. J. Vis. Exp. (177), e62978, doi:10.3791/62978 (2021).

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