Summary

Un test di micropatterning per la misurazione della chiralità cellulare

Published: March 11, 2022
doi:

Summary

Presentiamo un protocollo per la determinazione della chiralità multicellulare in vitro, utilizzando la tecnica del micropatterning. Questo test consente la quantificazione automatica dei bias sinistra-destra di vari tipi di cellule e può essere utilizzato a scopo di screening.

Abstract

La chiralità è una proprietà cellulare intrinseca, che raffigura l’asimmetria in termini di polarizzazione lungo l’asse sinistro-destro della cellula. Poiché questa proprietà unica attira sempre più attenzione a causa dei suoi ruoli importanti sia nello sviluppo che nella malattia, un metodo di quantificazione standardizzato per caratterizzare la chiralità cellulare farebbe progredire la ricerca e le potenziali applicazioni. In questo protocollo, descriviamo un test di caratterizzazione della chiralità multicellulare che utilizza array di cellule micropatterned. I micropattern cellulari sono fabbricati su vetrini rivestiti in titanio / oro tramite stampa a microcontatto. Dopo la semina sulle isole geometricamente definite (ad esempio, a forma di anello) rivestite di proteine, le cellule migrano direzionalmente e formano un allineamento distorto verso la direzione in senso orario o antiorario, che può essere automaticamente analizzato e quantificato da un programma MATLAB scritto su misura. Qui descriviamo in dettaglio la fabbricazione di substrati micropatterned, la semina cellulare, la raccolta di immagini e l’analisi dei dati e mostriamo risultati rappresentativi ottenuti utilizzando le celle NIH / 3T3. Questo protocollo è stato precedentemente convalidato in diversi studi pubblicati ed è uno strumento efficiente e affidabile per lo studio della chiralità cellulare in vitro.

Introduction

L’asimmetria sinistra-destra (LR) della cellula, nota anche come manualità cellulare o chiralità, descrive la polarità cellulare nell’asse LR ed è riconosciuta come una proprietà biofisica fondamentale, conservata, 1,2,3,4,5. La chiralità cellulare è stata osservata sia in vivo che in vitro su più scale. Precedenti risultati hanno rivelato il vortice chirale del citoscheletro di actina in singole cellule seminate su isole circolari6, la migrazione distorta e l’allineamento delle cellule entro i confiniconfinati 7,8,9,10,11 e il loop asimmetrico del tubo di calore di pollo12.

A livello multicellulare, la chiralità cellulare può essere determinata dalla migrazione direzionale o dall’allineamento, dalla rotazione cellulare, dalla dinamica citoscheletrica e dal posizionamento degli organelli cellulari 7,8,9,10,11,12,13. Abbiamo stabilito un test14 basato sulla micropatterning per caratterizzare in modo efficiente il bias chirale delle celluleaderenti 7,8,9,10. Con i micropattern a forma di anello che confinano geometricamente i cluster cellulari, le cellule mostrano collettivamente una migrazione direzionale e un allineamento distorto. È stato sviluppato un programma MATLAB per rilevare e misurare automaticamente l’allineamento delle celle nelle immagini a contrasto di fase dell’anello. La direzione dell’allineamento cellulare locale è quantificata con un angolo distorto, a seconda della sua deviazione dalla direzione circonferenziale. A seguito di analisi statistica, il modello ad anello delle celle viene designato come bias in senso antiorario (CCW) o bias in senso orario (CW).

Questo test è stato utilizzato per caratterizzare la chiralità di più fenotipi cellulari (Tabella 1) e l’asimmetria LR delle cellule è risultata essere fenotipo-specifica 7,11,15. Inoltre, l’interruzione della dinamica e della morfologia dell’actina può provocare un’inversione del bias chirale 7,8 e lo stress ossidativo può alterare anche la chiralità cellulare9. A causa della semplicità della procedura e della robustezza dell’approccio 7,8,9,10, questo test di chiralità 2D fornisce uno strumento efficiente e affidabile per determinare e studiare la chiralità multicellulare in vitro.

Lo scopo di questo protocollo è dimostrare l’uso di questo metodo per caratterizzare la chiralità cellulare. Questo protocollo descrive come fabbricare array cellulari modellati tramite la tecnica di stampa a microcontatto e condurre analisi di chiralità in modo automatizzato utilizzando il programma MATLAB.

Protocol

1. Fabbricazione di francobolli polidimetilsilossano (PDMS)16 Disegna una serie di anelli su microscala utilizzando il software CAD, con un diametro interno di 250 μm e un diametro esterno di 450 μm. Il modello utilizzato in questo protocollo è un array 10 x 10 con una distanza di 850 μm tra gli anelli. Stampare una maschera di trasparenza del modello alla risoluzione desiderata utilizzando il servizio di stampa di maschere di un’azienda di microfabbricazione (vedere <stron…

Representative Results

Quindici minuti dopo la semina delle cellule NIH/3T3, l’adesione cellulare sul modello ad anello è stata confermata visivamente dall’imaging a contrasto di fase. Dopo la successiva coltura di 24 ore, le cellule sui modelli sono diventate confluenti e allungate con allineamenti chiaramente asimmetrici, sbilanciati verso la direzione in senso orario (Figura 2). La migrazione direzionale delle cellule attaccate viene registrata mediante imaging time-lapse, la motilità cellulare e la morfogene…

Discussion

Il test di patterning a forma di anello qui descritto fornisce uno strumento di facile utilizzo per la caratterizzazione quantitativa della chiralità multicellulare, in grado di produrre risultati altamente affidabili e ripetibili. La rapida generazione di microambienti identici definiti e l’analisi imparziale consentono l’elaborazione automatizzata ad alta produttività di campioni di grandi dimensioni. Questo protocollo discute la fabbricazione dei micropattern ad anello, il pattern cellulare e l’analisi automatica de…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato finanziato dal National Institutes of Health (OD/NICHD DP2HD083961 e NHBLI R01HL148104). Leo Q. Wan è un Pew Scholar in Biomedical Sciences (PEW 00026185), supportato dal Pew Charitable Trusts. Haokang Zhang è supportato dall’American Heart Association Predoctoral Fellowship (20PRE35210243).

Materials

200 proof ethanol Koptec DSP-MD-43
BZX microscope system Keyence BZX-600
Dulbecco's modified eagle medium (DMEM), high glucose Gibco 11965092
Electron beam evaporator Temscal BJD-1800 Gold-titanum film coating
Fetal bovine serum VWR 89510-186
Fibronectin from bovine plasma Sigma F1141-5MG
Glass microscope slides VWR 10024-048
Glass tweezers Exelta 390BSAPI
Gold evaporation pellets International Advanced Materials AU18
HS-(CH2)11-EG3-OH (EG3) Prochimia TH 001-m11.n3-0.2
MATLAB Mathworks MATLAB_R2020b
NIH/3T3 cells ATCC CRL-1658
OAI contact aligner OAI 200 UV photolithography
Octadecanethiol (C18) Sigma O1858-25ML
Orbital shaker VWR 89032-088
Phosphate buffered saline (PBS) Research product international P32080-100T
Polydimethylsiloxane Sylgard 184 Dow Corning DC4019862
Silicon Wafer University Wafer ID#809
Sodium pyruvate Thermo fisher scientific 11360-070
SU-8 3050 photoresist MicroChem Y311075 0500L1GL
Titanium evaporation pellets International Advanced Materials TI14
Transparency mask (with feature) Outputicity.com N/A Mask printing service
Trypsin-EDTA (0.25%) Thermo fisher scientific 25200-072

References

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check_url/fr/63105?article_type=t

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Citer Cet Article
Zhang, H., Ronaldson-Bouchard, K., Vunjak-Novakovic, G., Wan, L. Q. A Micropatterning Assay for Measuring Cell Chirality. J. Vis. Exp. (181), e63105, doi:10.3791/63105 (2022).

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