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Article de méthode

Réactivation des cellules souches neurales dans les explants cérébraux de drosophiles en culture

3.4K vues

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DOI :

10.3791/63189

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18 mai 2022

 ,  , 

Dans cet article

Résumé

Une méthode pour réactiver les cellules souches neurales quiescentes dans les explants cérébraux de drosophiles en culture a été établie. En utilisant cette méthode, le rôle des signaux systémiques peut être découplé des signaux intrinsèques des tissus dans la régulation de la quiescence, de l’entrée et de la sortie des cellules souches neurales.

Résumé

Les cellules souches neurales (CSN) ont la capacité de proliférer, de se différencier, de subir une apoptose et même d’entrer et de sortir de la quiescence. Bon nombre de ces processus sont contrôlés par l’interaction complexe entre les programmes génétiques intrinsèques du NSC et les facteurs extrinsèques du NSC, locaux et systémiques. Dans l’organisme modèle génétique, Drosophila melanogaster, NSC, connus sous le nom de neuroblastes (NB), passent de la quiescence à la prolifération pendant la transition embryonnaire à larvaire. Pendant ce temps, les larves émergent de leurs coquilles d’œufs et commencent à ramper, à la recherche de nutriments alimentaires. En réponse à l’alimentation animale, le corps gras, un organe endocrinien avec une capacité de stockage des lipides, produit un signal, qui est libéré par voie systémique dans l’hémolymphe circulante. En réponse au signal dérivé du corps gras (FBDS), les peptides analogues à l’insuline de la drosophile (Dilps) sont produits et libérés par les neurones neurosécrétoires cérébraux et la glie, conduisant à l’activation en aval de la signalisation de croissance PI3-kinase dans les NB et leur niche gliale et trachéale. Bien qu’il s’agisse du modèle actuel de la façon dont les NB passent de la quiescence à la prolifération, la nature du signal extrinsèque FBDS reste insaisissable. Pour mieux comprendre comment les signaux systémiques extrinsèques du NB régulent la sortie de la quiescence, une méthode a été mise au point pour cultiver les premiers cerveaux larvaires in vitro avant l’alimentation des animaux. Avec cette méthode, des facteurs exogènes peuvent être fournis au milieu de culture et nb sortir de la quiescence testée. Nous avons constaté que l’insuline exogène est suffisante pour réactiver les NB de la quiescence dans les explants du cerveau entier. Parce que cette méthode est bien adaptée aux écrans à grande échelle, nous visons à identifier des indices extrinsèques supplémentaires qui régulent les décisions de quiescence nb par rapport aux décisions de prolifération. Étant donné que les gènes et les voies qui régulent les décisions de prolifération du NSC sont conservés de manière évolutive, les résultats de ce test pourraient fournir un aperçu de l’amélioration des thérapies régénératives en clinique.

Introduction

Les cellules souches sont d’un grand intérêt en raison de leur potentiel d’utilisation en médecine régénérative 1,2. De nombreux animaux, en particulier ceux qui ont une longue durée de vie, maintiennent des cellules souches dans leurs tissus adultes. Ces cellules souches résidentes fonctionnent pour maintenir l’homéostasie tissulaire et sont utilisées pour la réparation après une blessure physique ou une maladie 3,4. La plupart des cellules souches chez les animaux adultes sont quiescentes, un état relativement dormant caractérisé par l’arrêt du cycle....

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Protocole

1. Collecte de larves de drosophiles

REMARQUE: Préparez l’assiette de levure, la pâte de raisin et le condo Fly avant de commencer:

  1. Pâte de levure: Dans un petit récipient, mélanger 5 g de levure sèche active avec 10 mL d’eau pour former une pâte qui a la consistance du beurre d’arachide. Couvrez la pâte de levure avec une pellicule de plastique et utilisez un élastique pour la fixer fermement au récipient.
    REMARQUE: La pâte de levure fraîche se dilatera dans son récipient et se détachera du couvercle à moins d’être fermement attachée. La pâte de levure durera plusieurs jours à température ambiante (RT....

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Résultats

Des cerveaux de type sauvage de l’OregonR fraîchement éclos ont été disséqués et cultivés pendant 24 heures dans des milieux de Schneider supplémentés (SSM) avec de l’insuline. Les tissus ont été fixés et colorés conformément au protocole. Des anticorps primaires générés contre Deadpan (Dpn) pour détecter les NB et Scribble pour marquer les membranes cellulaires ont été utilisés. L’analogue de la thymidine 5-Ethynyl-2′-désoxyuridine (Edu) a été ajouté pour détecter l’entrée en phase S et la réactivation du NB. Nous avons.......

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Discussion

La méthode décrite ici pour cultiver des explants cérébraux peut être réalisée dans la plupart des environnements de laboratoire. Les outils nécessaires, ainsi que la procédure et la collecte de données, sont simples et directs. Avec cette méthode, on peut tester une variété d’hypothèses, y compris celles liées aux cascades de signalisation cellulaire et aux facteurs extrinsèques qui régulent la réactivation et la prolifération du NB. Ici, en utilisant des animaux OregonR de type sauvage, nous avons constaté que l’insuli.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont pas d’intérêts concurrents.

Remerciements

Nous reconnaissons le programme de financement LSAMP Bridges to Doctorate (CNK) ainsi que niH / NIGMS (R01-GM120421 et R35-GM141886). Nous sommes reconnaissants au Dr Conor Sipe pour la figure 1. Nous remercions également tous les membres du laboratoire Siegrist pour leur soutien et leur mentorat continus. Nous remercions tout particulièrement Chhavi Sood et Gary Teeters pour leur lecture attentive du manuscrit et pour leurs commentaires.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
10 et micro ; L Pointes de pipetteDenville SciP2102
1000 & micro ; L Pointes de pipetteDenville SciP2103-N
1000 µ ; L PipettorGilsonP1000
16 % paraformaldéhyde (10 x 10 mL)Microscopie électronique Sciences2912.60.0000Utilisé pour la fixation des cerveaux larvaires
20 µ ; L PipetteGilsonP20
200 & micro ; L Pointes de pipetteDenville Sci1158U56
Plaques de culture multipuits 24 puitsFisher Scientific50-197-4477
Boîtes de Pétri 35 mmFisher Scientific08-757-100AAssiette à raisin Ingrédients
4 ° ; C réfrigérateurFisher ScientificFournit une température idéale pour les incubations de >24 h dans une solution d’anticorps
63x ObjectifLecia
Levure sèche activeLa plupart des supermarchés
AgaroseFisher Scientific214010Grape Plate Ingredients
Click-iT EdU Kit de prolifération cellulaire pour l’imagerie, colorant Alexa Fluor 647Thermo Fisher ScientificC10340pour marquer les cellules en prolifération
Microscope confocalLeicaSP8
Coverslips 22 mm x 22 mm x 1 mm, 10 paquet de 4 ozFisher Scientific12-544-10Deux lamelles sont super collées aux extrémités de la lame de microscope. Cela crée un espace qui permet aux cerveaux de flotter dans l’anti-fondu tout en étant imagés.
Lamelles, 22 mm x 50 mm x 1 mmFisher Scientific12-545ELa lamelle est placée sur deux lamelles carrées sur la lame de microscope, ce qui garantit que le cerveau de l’anti-décoloration ne bouge pas pendant l’imagerie.
Microscope de dissectionZeissStemi 2000
Éthanol 200 proof (100 %), Decon Labs, bouteille de 1 gallonFisher Scientific2701Utilisé pour laver les larves avant la tenue de 24 heures dans un milieu de culture
Sérum de veau fœtal (10 %)SigmaF4135-100MLSupplément pour milieux de culture cellulaire.
Pince fine pour la dissectionOutils de science fine11295-20Forcepts utilisés dans les dissections. Ils fonctionnent mieux lorsqu’ils sont affûtés.
Bouteilles anti-mouches pour le croisementGenessee Scientific32-130Cette bouteille est utilisée comme un récipient qui permet aux mouches de pondre des œufs sur l’assiette de raisin.
Plat de dissection en verre (3 puits)Ceux-ci ne sont plus disponibles
GlutathionSigmaG6013Fournit une protection oxydative pendant la culture cellulaire.
Sérum de chèvreSigmaG9023- 10MLAgent bloquant
Plaques de raisinFabriqué en maisonFabriqué en maisonPlaques de jus de raisin/agarose pour la collecte des œufs fraîchement éclos
Image JImagej.net/fiji/downloadsTéléchargement gratuit :  ; https://fiji.scPlate-forme d’imagerie utilisée pour compter les cellules et la réactivation Edu
IncubateurThermo Fisher ScientificGarantit que la température, l’humidité et l’exposition à la lumière sont exactement les mêmes tout au long de l’expérience.
InsulineSigmaI0516Variable indépendante de l’expérience
HottePour l’aliquotage des milieux de culture
L-GlutamineSigmaG7513Fournit un soutien pendant la culture cellulaire
Nunc 72-well Microwell Mini TraysFisher Scientific12-565-154Les étapes d’immunocoloration sont effectuées dans ce plateau
ParafilmFisher ScientificS37440Film utilisé pour sceller les plaques afin d’empêcher l’évaporation
Pen-StrepSigmaP4458-100mlAntibiodiques utilisés pour prévenir la contamination bactérienne des cellules pendant la culture.
Tampon phosphate, pH7.4Fabriqué en interneSolvantutilisé pour laver la cervelle après les étapes de fixation et de coloration
PickFine Science Tools10140-01Utilisé pour retirer les larves de la plaque de raisin
Acide propioniqueFisher ScientificA-258Ingrédients
Lapin 405Abcamab175653Anticorps utilisés pour l’immunocoloration
Rat 555Abcamab150166Anticorps utilisés pour l’immunocoloration
Rb ScribbleUn cadeau de Chris DoeAnticorps utilisés pour l’immunocoloration
Rt DeadpanAbcamab195173Anticorps utilisés pour l’immunocoloration
Schneiders Culture MediumLife Tech21720024Contient des nutriments qui aident les cellules à croître et à proliférer
SlowFade Diamond Antifade (5 x 2 mL)Life TechS36963Réactif qui offre une protection contre la décoloration des fluorophores
Eau stérileAutoclave Milli-Q Eau fabriquée en interneNécessaire pour les solutions
SaccharoseFisherS2-12Assiette de raisin
Ingrédients Superfrost Lames de microscopeFisher Scientific12-544-7
SuperglueLa plupart des supermarchés
TegoseptGenesee Scientific20-259Grape Plate Ingrédients
Triton-X 100SigmaT9284-100MLPBT
Welch’s 100 % grapeLa plupart des supermarchésGrape Plate Ingrédients
à flux laminaire de la plaque de raisin grape juice

Références

  1. Suman, S., Domingues, A., Ratajczak, J., Ratajczak, M. Z. Potential clinical applications of stem cells in regenerative medicine. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1201, 1-22 (2019).
  2. Tabar, V., Studer, L. Plur....

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Réimpressions et autorisations

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