Summary

Induktion af myokardieinfarkt og myokardieiskæmi-reperfusionsskade hos mus

Published: January 19, 2022
doi:

Summary

Her beskriver vi en enkel og reproducerbar metode, der kan fremkalde myokardieinfarkt eller myokardieiskæmi-reperfusionsskade hos mus ved præcisionsligering af venstre forreste nedadgående koronararterie gennem mikromanipulation.

Abstract

Akut myokardieinfarkt er en almindelig hjerte-kar-sygdom med høj dødelighed. Myokardiereperfusionsskade kan modvirke de gavnlige virkninger af hjerterefluks og fremkalde sekundær myokardieskade. En simpel og reproducerbar model af myokardieinfarkt og myokardieiskæmi-reperfusionsskade er et godt værktøj for forskere. Her beskrives en tilpasselig metode til at skabe en myokardieinfarkt (MI) model og MIRI ved præcisionsligering af den venstre forreste nedadgående koronararterie (LAD) gennem mikromanipulation. Nøjagtig og reproducerbar ligaturpositionering af LAD hjælper med at opnå ensartede resultater for hjerteskade. Ændringer i ST-segmentet kan hjælpe med at identificere modellens nøjagtighed. Serumniveauet af hjertetroponin T (cTnT) bruges til at vurdere myokardieskaden, hjerte-ultralyd anvendes til at evaluere myokardiesystolisk funktion, og Evans-Blue / triphenyltetrazoliumchloridfarvning bruges til at måle infarktstørrelse. Generelt reducerer denne protokol procedurens varighed, sikrer kontrollerbar infarktstørrelse og forbedrer musens overlevelse.

Introduction

Akut myokardieinfarkt (AMI) er en almindelig hjerte-kar-sygdom på verdensplan og bærer høj dødelighed1. Fremskridt inden for teknologier gør tidlig og effektiv revaskularisering tilgængelig for AMI-patienter. Efter disse behandlinger hos nogle patienter kan myokardieiskæmi-reperfusionsskade (MIRI) forekomme2. Det er således af stor betydning at forstå virkningsmekanismerne og hvordan man kan forbedre MI/MIRI. Mus bruges i vid udstrækning som modeller på grund af deres lave omkostninger, hurtige yngletid og lethed til at foretage genetiske ændringer3. Forskere har udviklet forskellige metoder til at modellere MIRI og MI i dyr 4,5,6,7,8,9. Denne strategi fremmer forskning, men de forskellige kriterier og metoder, der anvendes, komplicerer fortolkningen af resultater blandt forskerhold.

Hos mus er MI blevet induceret af isoproterenol10, kryoskade 11,12 eller cauterization13. MI kan let induceres af isoproterenol, men den patofysiologiske proces er forskellig fra den i klinisk MI. Kryoskade-induceret MI har dårlig konsistens, fremkalder overdreven myokardieskade omkring venstre forreste nedadgående koronararterie (LAD) og kan let fremkalde arytmi. Cauterization-induceret MI er helt forskellig fra den naturlige proces med myokardieinfarkt, og den inflammatoriske reaktion i det brændende område er mere intens; Derudover har den kirurgiske tilgang tekniske vanskeligheder. Desuden er der nogle laboratorier14, der udvikler MI-model i minigrise ved hjælp af ballonblokering eller embolisering eller trombosemetode gennem interventionsteknik. Alle disse metoder kan forårsage koronararterieokklusion direkte, men behov for koronar angiografi enheder og frem for alt de for tynde mus koronararterier gør disse operationer ikke praktiske. For MIRI var forskellene mellem forskellige modeller ret beskedne, såsom brug af åndedrætsværn / mikromanipulation eller ikke 5,6.

Her beskrives en enkel og pålidelig metode, der kan inducere MI og MIRI-modellen, tilpasset fra tidligere publicerede metoder 4,5,6,7,8,9,15. Denne metode kan simulere patofysiologiske processer ved direkte blokade af LAD gennem ligering. Desuden kan denne model ved at lindre ligeringen også simulere reperfusionsskade. I denne protokol anvendes et dissekerende mikroskop til LAD-visualisering. Derefter kan forskeren let identificere LAD. Derefter fører nøjagtig ligering af LAD til reproducerbar og forudsigelig blodokklusion og ventrikulær iskæmi. Desuden kan elektrokardiografi (EKG) ændringer anvendes til at bekræfte iskæmi og reperfusion ud over farveændringerne af LAD observeret under et mikroskop. Denne strategi fører til en kortere procedurevarighed, lavere risiko for kirurgiske komplikationer og færre eksperimentelle mus, der er nødvendige. Metoderne til troponin-T-test, hjerteultralyd og triphenyltetrazoliumchlorid (TTC) farvning er også beskrevet. Samlet set er denne protokol nyttig til undersøgelser af MI / MIR-mekanismen såvel som til lægemiddelopdagelse.

Protocol

Dyreforsøg er blevet godkendt af Animal Care and Utilization Committee of Huazhong University of Science and Technology (Wuhan, Kina). BEMÆRK: C57BL/6J-hanmus (8-10 uger) bruges som modeller. Mus har fri adgang til mad og vand og opdrættes under specifikke patogenfrie forhold. Rummet opretholdes under kontrolleret temperatur (22 °C ± 2 °C) og fugtighed (45% -65%). Mus udsættes for et 12-timers lys / mørkt miljø på Animal Care Facility of Tongji Medical School (Wuhan, Kina) i henhold …

Representative Results

Den eksperimentelle arbejdsgang er vist i figur 1A. Forskeren kan planlægge tidsknudepunkterne i henhold til det eksperimentelle design ved studiestart. Varigheden af LAD ligation er i overensstemmelse med forskningsformålet. For MI kan forskningen ignorere reperfusionstrinnet. Hjerte ultralyd er tilgængelig på forskellige stadier af undersøgelsen, fordi det er ikke-invasivt, mens Evans-Blue / TTC farvning kun kan udføres, når musen ofres. For forskning, der fokuserer på fibrose og v…

Discussion

I de senere år har oprettelsen af modeller for MI og MIRI i klinisk og videnskabelig forskning udviklet sig hurtigt20,21. Der er dog stadig nogle spørgsmål, såsom virkningsmekanismerne og forbedringen af MI/MIRI, der skal løses. Her beskrives en modificeret protokol til etablering af en murinmodel af MI og MIRI. Flere nøglepunkter skal overvejes nøje.

Det første nøglepunkt er endotracheal intubation. Nogle procedurer<sup class…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af National Natural Science Foundation of China (82070317, 81700390 til Jibin Lin, 8210021880 til Bingjie Lv og 82000428 til Boyuan Wang) og National Key R&D Program of China (2017YFA0208000 til Shaolin He).

Materials

0.9 % sodium chloride solution Kelun Industry Group,China
4% paraformaldehyde fixing solution Servicebio,China G1101
4-0 silk suture Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products,China C412
8-0 suture Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products,China H801
Buprenorphine IsoReag,China IR-11190
Camera Canon,Japan EOS 80D
Depilatory cream Veet,French
Elecsys Troponin T hs STAT Roche,Germany
Electrochemical luminescence immunoanalyzer Roche,Germany Elecsys 2010
Evans blue Sigma,America E2129
Eye scissors Shanghai Medical Instruments,China JC2303
Haemostatic forceps Shanghai Medical Instruments,China J31020
High frequency in vivo imaging systems Visualsonics,Canada Vevo2100
Ibuprofen PerFeMiKer,China CLS-12921
Intravenous catheter Introcan,Germany 4254090B
Ketamine Sigma-Aldrich,America  K2753
Medical alcohol Huichang ,China
Microneedle holders Shanghai Medical Instruments,China WA2040
Microscopic shears Shanghai Medical Instruments,China WA1040
Microsurgical forceps Shanghai Medical Instruments,China WA3020
Mouse electrocardiograph Techman,China BL-420F
Needle holders Shanghai Medical Instruments,China JC3202
operating floor Chico,China ZK-HJPT
PE-10 tube Huamei,China
Pentobarbital Merck,America 1030001
Rodent Ventilator Shanghai Alcott Biotech,China ALC-V8S-P
Stereo microscope Aomei Industry,China SZM0745-STL3-T3
Surgical thermostatic heating pad Globalebio, China GE0-20W
Triphenyltetrazolium chloride Servicebio,China G1017
Xylazine Huamaike Biochemicals and Life Science Research Prouducts,China 323004

References

  1. Reed, G. W., Rossi, J. E., Cannon, C. P. Acute myocardial infarction. Lancet. 389 (10065), 197-210 (2017).
  2. Ibanez, B., Heusch, G., Ovize, M., Van de Werf, F. Evolving therapies for myocardial ischemia/reperfusion injury. Journal of the American College of Cardiology. 65 (14), 1454-1471 (2015).
  3. Bryda, E. C. The mighty mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research. Missouri Medicine. 110 (3), 207-211 (2013).
  4. Kim, S. C., et al. A murine closed-chest model of myocardial ischemia and reperfusion. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (65), e3896 (2012).
  5. Xu, Z., Alloush, J., Beck, E., Weisleder, N. A murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury through ligation of the left anterior descending artery. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (86), e51329 (2014).
  6. Xu, Z., McElhanon, K. E., Beck, E. X., Weisleder, N. A murine model of myocardial ischemia-reperfusion injury. Methods in Molecular Biology. 1717, 145-153 (2018).
  7. Muthuramu, I., Lox, M., Jacobs, F., De Geest, B. Permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice: a model of post-myocardial infarction remodelling and heart failure. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (94), e52206 (2014).
  8. Reichert, K., et al. Murine left anterior descending (LAD) coronary artery ligation: An improved and simplified model for myocardial infarction. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (122), e55353 (2017).
  9. Lugrin, J., Parapanov, R., Krueger, T., Liaudet, L. Murine myocardial infarction model using permanent ligation of left anterior descending coronary artery. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (150), e59591 (2019).
  10. Li, X., et al. Cardioprotective effects of Puerarin-V on isoproterenol-induced myocardial infarction mice is associated with regulation of PPAR-Y/NF-Kappa B pathway. Molecules. 23 (12), 3322 (2018).
  11. Vanden Bos, E. J., Mees, B. M., de Waard, M. C., de Crom, R., Duncker, D. J. A novel model of cryoinjury-induced myocardial infarction in the mouse: A comparison with coronary artery ligation. American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 289 (3), 1291-1300 (2005).
  12. Wang, D., et al. A cryoinjury model to study myocardial infarction in the mouse. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (151), e59958 (2019).
  13. Brooks, W. W., Garibaldi, B. A., Conrad, C. H. Myocardial injury in the mouse induced by transthoracic cauterization. Laboratory Animal Science. 48 (4), 374-378 (1998).
  14. Tao, B., et al. Preclinical modeling and multimodality imaging of chronic myocardial infarction in minipigs induced by novel interventional embolization technique. EJNMMI Research. 6 (1), 59 (2016).
  15. Gao, E., et al. A novel and efficient model of coronary artery ligation and myocardial infarction in the mouse. Circulation Research. 107 (12), 1445-1453 (2010).
  16. Scofield, S. L., Singh, K. Confirmation of myocardial ischemia and reperfusion injury in mice using surface pad electrocardiography. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (117), e54814 (2016).
  17. Gnyawali, S. C., et al. High-frequency high-resolution echocardiography: First evidence on non-invasive repeated measure of myocardial strain, contractility, and mitral regurgitation in the ischemia-reperfused murine heart. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (41), e1781 (2010).
  18. Pistner, A., Belmonte, S., Coulthard, T., Blaxall, B. Murine echocardiography and ultrasound imaging. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (42), e2100 (2010).
  19. Shibata, R., et al. Adiponectin protects against myocardial ischemia-reperfusion injury through AMPK- and COX-2-dependent mechanisms. Nature Medicine. 11 (10), 1096-1103 (2005).
  20. Anderson, J. L., Morrow, D. A. Acute myocardial infarction. New England Journal of Medicine. 376 (21), 2053-2064 (2017).
  21. Frank, A., et al. Myocardial ischemia reperfusion injury: From basic science to clinical bedside. Seminars in Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 16 (3), 123-132 (2012).
  22. Mares, R. G., et al. Studying the innate immune response to myocardial infarction in a highly efficient experimental animal model. Romanian Journal of Cardiology. 31 (3), 573-585 (2021).
  23. Fernandez, B., et al. The coronary arteries of the C57bl/6 mouse strains: Implications for comparison with mutant models. Journal of Anatomy. 212 (1), 12-18 (2008).
  24. Zhang, R., Hess, D. T., Reynolds, J. D., Stamler, J. S. Hemoglobin S-nitrosylation plays an essential role in cardioprotection. Journal of Clinical Investigation. 126 (12), 4654-4658 (2016).
  25. Sorop, O., et al. Experimental animal models of coronary microvascular dysfunction. Cardiovascular Research. 116 (4), 756-770 (2020).
  26. Sicard, P., et al. Right coronary artery ligation in mice: A novel method to investigate right ventricular dysfunction and biventricular interaction. American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 316 (3), 684-692 (2019).
  27. Chen, J., Ceholski, D. K., Liang, L., Fish, K., Hajjar, R. J. Variability in coronary artery anatomy affects consistency of cardiac damage after myocardial infarction in mice. American Journal of Physiology: Heart and Circulatory Physiology. 313 (2), 275-282 (2017).
  28. Kato, R., Foex, P. Myocardial protection by anesthetic agents against ischemia-reperfusion injury: An update for anesthesiologists. Canadian Journal of Anaesthesia. 49 (8), 777-791 (2002).
check_url/fr/63257?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Lv, B., Zhou, J., He, S., Zheng, Y., Yang, W., Liu, S., Liu, C., Wang, B., Li, D., Lin, J. Induction of Myocardial Infarction and Myocardial Ischemia-Reperfusion Injury in Mice. J. Vis. Exp. (179), e63257, doi:10.3791/63257 (2022).

View Video