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Article de méthode

In vivo Imagerie de tissus biologiques avec fluorescence combinée à deux photons et microscopie à diffusion Raman stimulée

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DOI :

10.3791/63411

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20 décembre 2021

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Dans cet article

Résumé

La microscopie à diffusion Raman stimulée (SRS) permet une imagerie sans étiquette des biomolécules en fonction de leur vibration intrinsèque de liaisons chimiques spécifiques. Dans ce protocole, la configuration instrumentale d’un SRS intégré et d’un microscope à fluorescence à deux photons est décrite pour visualiser les structures cellulaires dans la moelle épinière de souris vivantes.

Résumé

La microscopie à diffusion Raman stimulée (SRS) permet une imagerie sans étiquette des tissus biologiques dans son microenvironnement naturel basée sur la vibration moléculaire intrinsèque, fournissant ainsi un outil parfait pour l’étude in vivo des processus biologiques à résolution subcellulaire. En intégrant l’imagerie par fluorescence excitée à deux photons (TPEF) dans le microscope SRS, l’imagerie in vivo bimodale des tissus peut acquérir des informations biochimiques et biophysiques critiques à partir de multiples perspectives qui aident à comprendre les processus dynamiques impliqués dans le métabolisme cellulaire, la réponse immunitaire et le remodelage des tissus, etc. Dans ce protocole vidéo, la configuration d’un système de microscope TPEF-SRS ainsi que la méthode d’imagerie in vivo de la moelle épinière animale sont introduites. La moelle épinière, en tant que partie du système nerveux central, joue un rôle essentiel dans la communication entre le cerveau et le système nerveux périphérique. La gaine de myéline, abondante en phospholipides, entoure et isole l’axone pour permettre la conduction saltatoire des potentiels d’action. L’imagerie in vivo des gaines de myéline dans la moelle épinière est importante pour étudier la progression des maladies neurodégénératives et des lésions de la moelle épinière. Le protocole décrit également la préparation animale et les méthodes d’imagerie TPEF-SRS in vivo pour acquérir des images biologiques à haute résolution.

Introduction

La microscopie Raman1,2 est en train de devenir une puissante méthode sans étiquette pour imager les tissus biologiques en fonction des fréquences caractéristiques de diverses liaisons chimiques dans les biomolécules. En raison de sa capacité d’imagerie non invasive et bien adaptative, la microscopie Raman a été largement utilisée pour l’imagerie de composants enrichis en lipides dans des tissus biologiques tels que la gaine de myéline3,4,5, les adipocytes6,7 et les gouttelettes

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Protocole

Toutes les procédures animales effectuées dans ce travail sont menées conformément aux directives du Laboratory Animal Facility de l’Université des sciences et technologies de Hong Kong (HKUST) et ont été approuvées par le Comité d’éthique animale de HKUST. Une formation à la sécurité pour la manipulation laser est nécessaire pour configurer et utiliser le microscope TPEF-SRS. Portez toujours des lunettes de sécurité laser avec une plage de longueurs d’onde appropriée lorsque vous traitez avec un laser.

1. Configuration du microscope TPEF-SRS (pour le schéma de configuration, voir La figure 1

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Résultats

L’imagerie bimodale in vivo des axones de la colonne vertébrale ainsi que des gaines de myéline est réalisée à l’aide de souris transgéniques Thy1-YFPH, qui expriment l’EYFP dans les neurones afférents des ganglions de la racine dorsale (Figure 3). Ces neurones afférents marqués relaient l’information sensorielle du nerf périphérique à la moelle épinière, la branche centrale étant située dans la colonne dorsale de la moelle épinière. Avec le microscope TPEF-SRS, la gaine de myéline .......

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Discussion

Dans ce protocole, la configuration de base du microscope TPEF-SRS est décrite en détail. Pour l’imagerie SRS, la pompe et les faisceaux stokes se chevauchent temporellement et spatialement à l’intérieur de l’OPO. Cependant, ce chevauchement peut être perturbé après le passage dans le système de microscope. Par conséquent, l’optimisation spatiale et temporelle de la colocalisation de la pompe et des faisceaux de Stokes est nécessaire et essentielle pour obtenir une imagerie SRS optimale. Le délai temporel entre la pompe .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer et n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le Hong Kong Research Grants Council par le biais de subventions 16103215, 16148816, 16102518, 16102920, T13-607/12R, T13-706/11-1, T13-605/18W, C6002-17GF, C6001-19E, N_HKUST603/19, la Commission de l’innovation et de la technologie (ITCPD/17-9), le programme de domaine d’excellence du Comité des subventions universitaires (AoE/M-604/16, AOE/M-09/12) et l’Université des sciences et technologies de Hong Kong (HKUST) par le biais de la subvention RPC10EG33.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
#2 PinceDumont11223-20Pour laminectomie
Objectif 10XNikonCFI Plan Apo Lambda 10X
25X objectifOlympusXLPLN25XSVMP2
Crème de brûlureBetadine
Appareil photoSony&alpha ; 6300
Amplificateur de courantStanford researchSR570
Modules photomultiplicateurs de courantHamamatsuH11461-01
D2 665 nm miroir dichroïque passe-longSemrockFF665-Di02-25x36Pour diriger le signal d’épifluorescence vers le module de détection
D3 Miroir dichroïque passe-court 700 nmEdmund69-206Pour séparer le SRS de Chemin de détection TPEF
Crème épilanteVeet
FS1 975 nm filtre passe-courtEdmund86-108Pour faisceau de blocage
FS1 Filtre passe-bandeSemrockFF01-850/310Pour faisceau de blocage
Fs2 Filtre passe-bandeSemrockFF01-525/50Pour sélection du signal YFP
Fs2 Filtre passe-courtSemrockFF01-715/SP-25Pour bloquer le faisceau laser d’excitation fs
Plaque demi-ondeThorlabsSAHWP05M-1700
Photodétecteur haute vitesseMenloSystemsFPD 310-FPour le contrôle de la modulation du faisceau Stokes
Lunette de visée IODINEIR FJW FIND-R-SCOPE Visionneuse infrarouge 2X Kit Modèle 84499C2X
ThorlabsCPA1
L1ThorlabsAC254-060-B-ML
L10ThorlabsLA4052-A
L2ThorlabsLA1422-B
L3ThorlabsAC254-050-B
L4ThorlabsAC254-060-B-ML
L7f=100 mm, revêtement AB
L8ThorlabsLA4874-A
L9ThorlabsAC254-035-B-ML
Amplificateur à verrouillageAPE
MirrorThorlabsPF10-03-P01
Flipper motoriséThorlabsMFF101/M
Carte d’acquisition multifonctionnelleNational InstrumentPCIe-6363
OscilloscopeTektronixTDS2012C
PhotodiodeAPEPour la détection du signal SRS
Source laser picosecondeAPEpicoEmerald
Séparateur de faisceau polarisantThorlabsCCM1-PBS252/M
Capteur de puissanceNewport843-R
SalineBraun
Objectif de balayage L5ThorlabsSL50-CLS2
Miroir de balayageCambridge Technology6215H
Gel de siliconeWorld Precision Inc.KWIK-SIL
Ti :sapphire fs laserCoherentChameleon Ultra II
Lentille tube L6ThorlabsTTL200-S8
BÉTADINE Iris

Références

  1. Raman, C. V., Krishnan, K. S. The optical analogue of the compton effect. Nature. 121 (3053), 711(1928).
  2. Turrell, G., Corset, J. Raman Microscopy: Developments and Applications. , Academic Press. (1996).
  3. Tian, F., et al.

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Réimpressions et autorisations

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