Summary

عزل الفطريات المشاركة في تدهور المواد المتمردة وفحصها من التنوع البيولوجي للتربة

Published: May 16, 2022
doi:

Summary

هنا ، نقدم بروتوكولا لفحص التنوع البيولوجي للتربة للبحث عن السلالات الفطرية المشاركة في تدهور المواد المتمردة. أولا ، يتم عزل السلالات الفطرية القادرة على النمو على الأحماض الدبالية أو الليجنوسليلوز. ثم يتم اختبار نشاطها في كل من الفحوصات الأنزيمية وعلى الملوثات مثل الهيدروكربونات والبلاستيك.

Abstract

التلوث البيئي هو مشكلة متزايدة، وتحديد الفطريات المشاركة في عملية المعالجة الحيوية هو مهمة أساسية. تستضيف التربة تنوعا لا يصدق من الحياة الميكروبية ويمكن أن تكون مصدرا جيدا لهذه الفطريات المعالجة بيولوجيا. يهدف هذا العمل إلى البحث عن فطريات التربة ذات إمكانات المعالجة الحيوية باستخدام اختبارات فحص مختلفة. تم استخدام وسائط الاستزراع المعدني المكملة بمواد متمردة كمصدر وحيد للكربون كاختبارات نمو. أولا ، تم طلاء تخفيفات التربة على أطباق بتري مع تعديل الوسط المعدني بالأحماض الدبالية أو الليجنوسليلوز. تم عزل المستعمرات الفطرية المتنامية واختبارها على ركائز مختلفة ، مثل الخلائط المعقدة من الهيدروكربونات (الفازلين وزيت المحركات المستخدم) ومساحيق البوليمرات البلاستيكية المختلفة (PET ، PP ، PS ، PUR ، PVC). ارتبطت الاختبارات الأنزيمية النوعية باختبارات النمو للتحقيق في إنتاج الإستراز واللاكات والبيروكسيديا والبروتياز. وتشارك هذه الإنزيمات في عمليات التحلل الرئيسية للمواد المتمردة، ويمكن أن يكون لإفرازها التأسيسي بواسطة السلالات الفطرية التي تم فحصها القدرة على استغلالها في المعالجة البيولوجية. وتم عزل واختبار أكثر من 100 سلالة، وتم العثور على العديد من العزلات ذات الإمكانات الجيدة للمعالجة البيولوجية. في الختام ، تعد اختبارات الفحص الموصوفة طريقة سهلة ومنخفضة التكلفة لتحديد السلالات الفطرية ذات إمكانات المعالجة الحيوية من التربة. بالإضافة إلى ذلك ، من الممكن تخصيص اختبارات الفحص للملوثات المختلفة ، وفقا للمتطلبات ، عن طريق إضافة مواد متمردة أخرى إلى الحد الأدنى من وسائط الاستزراع.

Introduction

التربة هي عنصر أساسي للحياة على الأرض وهي أساس العديد من النظم الإيكولوجية. يمكن اعتبار المعادن والمواد العضوية والكائنات الحية الدقيقة في التربة نظاما واحدا ، مع وجود ارتباطات وتفاعلات وثيقة تحدث بينها. تفاعلات هذه المركبات لها تأثير مهم على العمليات الأرضية والجودة البيئية وصحة النظام الإيكولوجي1. يشكل تلوث التربة مشاكل بيئية خطيرة في جميع أنحاء العالم. إن التطبيق العشوائي والطويل الأجل والمفرط للمواد المتمردة والسامة ، مثل المبيدات الحشرية والمنتجات البترولية والبلاستيك والمواد الكيميائية الأخرى ، له آثار خطيرة على بيئة التربة ، ونتيجة لذلك ، يمكن أن يغير ميكروبات التربة. تتكون المجتمعات الميكروبية في التربة من مجموعة واسعة من الكائنات الحية في حالات فسيولوجية مختلفة ، معظمها من البكتيريا والفطريات. العديد من الملوثات في التربة لديها استقرار متوسط إلى طويل الأجل ، ويمكن أن يؤدي استمرارها إلى تطوير آليات تكيفية تسمح للكائنات الحية الدقيقة باستخدام المواد المتمردة كمغذيات 2,3. وبالتالي ، يمكن النظر في هذه الكائنات الحية الدقيقة لتقنيات المعالجة الحيوية.

تحاول المعالجة البيولوجية التخفيف من آثار التلوث باستخدام الكائنات الحية الدقيقة وإنزيماتها لتدهور النفايات أو تحويلها إلى مركبات أقل سمية أو غير سامة. تمتلك أنواع مختلفة من العتائق والبكتيريا والطحالب والفطريات هذه القدرة على المعالجة الحيوية4. نتيجة لإجراءاتها الخاصة بالتحلل البيولوجي ، تعد الفطريات كائنات حية واعدة بشكل خاص للمعالجة الحيوية. يمكنهم مهاجمة ركائز مختلفة باستخدام شبكة hyphal الخاصة بهم ، مما يمكنهم من اختراق مصفوفة التربة بشكل أكثر كفاءة من الكائنات الحية الدقيقة الأخرى. بالإضافة إلى ذلك ، يمكنهم الوصول إلى interstics التي يتعذر الوصول إليها حيث يصعب إزالة الملوثات5 ، ويمكنهم أيضا البقاء على قيد الحياة في مستويات الرطوبة المنخفضة6. علاوة على ذلك ، تقوم الفطريات بتوليف أشرطة مختلفة من الإنزيمات غير المحددة ، عادة لتحلل المواد المتمردة الطبيعية مثل السليلوز واللجنين والأحماض الدبالية. يمكن أن تشارك تلك التي تفتقر إلى الركيزة المستهدفة في تدهور مجموعة واسعة من الملوثات المتمردة ، مثل الهيدروكربونات والبلاستيك والمبيدات الحشرية7،8،9،10. لذلك ، على الرغم من أن العديد من الأنواع الفطرية قد تم الإبلاغ عنها بالفعل كعوامل معالجة بيولوجية ، إلا أن هناك اهتماما متزايدا باستكشاف الأنواع التي لم تتم دراستها بعد لاختيار المرشحين للمعالجة البيولوجية للمواد الملوثة المتمردة. الأنواع المعروفة بالفعل أن لها خصائص المعالجة الحيوية تنتمي إلى الفصيلة Ascomycota 11,12,13 ، Basidiomycota 14,15 ، و Mucoromycota. على سبيل المثال ، من المعروف جيدا أن أجناس البنسليوم والرشاشيات تشارك في تدهور الهيدروكربونات الأليفاتية13 ، والبوليمرات البلاستيكية المختلفة 16،17،18 ، والمعادن الثقيلة19 ، والأصباغ20. وبالمثل ، كشفت الدراسات التي أجريت على الفطريات القاعدية ، مثل Phanerochaete chrysosporium و Trametes المبرقشة ، عن تورطها في أكسدة المواد المتمردة مثل الهيدروكربونات العطرية13 والبلاستيك21. مثال آخر على الفطريات المشاركة في عمليات التحلل البيولوجي هي zygomycetes Rhizopus spp. و Mucor spp. و Cunninghamella spp.22,23. على وجه الخصوص ، Cunninghamella قادر على أوكسيديز الهيدروكربونات العطرية ويعتبر كائنا نموذجيا لدراسة إزالة السموم من المنتجات من مجموعة واسعة من xenobiotics13.

هناك العديد من الإنزيمات الفطرية المشاركة في العمليات التحلل الرئيسية للمواد المتمردة24,25 ، مثل الإستراز ، اللاكاس ، البيروكسيديز ، والبروتياز. Laccases هي أوكسيديات تحتوي على النحاس تنتج في الخلية وتفرز لاحقا ، والتي تسمح بأكسدة مجموعة متنوعة من المركبات الفينولية والعطرية. يمكن أن تتحلل الفينول الأورثو وبارا ديفينول ، والفينولات المحتوية على المجموعة الأمينية ، واللجنين ، والديامينات المحتوية على مجموعة الأريل26. تستخدم البيروكسيديات بيروكسيد الهيدروجين كوسيط لتحلل اللجنين والمركبات العطرية الأخرى. هناك العديد من البيروكسيديا المختلفة ، ولكن تلك التي لديها أكبر قدرة على تحلل المواد السامة هي بيروكسيديز اللجنين وبيروكسيديز المنغنيز27.

تنتمي الإستراز والبروتياز إلى مجموعة الإنزيمات خارج الخلية أو الخارجية ، والتي تعمل خارج خلاياها الأصلية ولكنها لا تزال مرتبطة بها. يمكن لهذه الإنزيمات تحفيز التحلل المائي للجزيئات المتمردة الكبيرة إلى جزيئات أصغر. نظرا لخصوصية الركيزة المنخفضة ، يمكن لهذه الإنزيمات أن تلعب دورا رئيسيا في المعالجة الحيوية لمختلف الملوثات ، مثل أصباغ المنسوجات والنفايات السائلة المنبعثة من صناعات اللب والورق ودباغة الجلود والمنتجات البترولية والبلاستيك والمبيدات الحشرية28،29،30.

وقد تم بالفعل نشر عدد من طرق الفحص لاختيار السلالات الفطرية المعالجة بيولوجيا. فعلى سبيل المثال، استخدم وسط الأجار القائم على القش للكشف عن الفطريات البيضاء المتعفنة ذات الإمكانات العالية في تحلل الهيدروكربونات العطرية المتعددة الحلقات31؛ وتم وضع قطع صغيرة من الخشب المتعفن على مستخلص الشعير أجار (MEA) لعزل الفطريات المتعفنة بالخشب32. ومع ذلك ، فإن معظم الطرق التي تم اقتراحها بالفعل تختار فطريات محددة للغاية لنشاطها المثير للاهتمام. يقترح هذا البحث نهجا أوسع لاختيار فطريات التربة مع مجموعة أوسع من الإجراءات. تعتمد الطريقة على الطلاء الأولي للتخفيفات التسلسلية لعينات التربة على وسط معدل بالأحماض الدبالية أو الليجنوسليلوز الممزوج بالمضادات الحيوية لاختيار الفطريات مع القدرة على تحلل هذه المواد المتمردة الطبيعية. الأحماض الدبالية و lignocellulose ، في الواقع ، هي مواد مقاومة للغاية للتحلل البيولوجي لأنها تحتوي على هياكل جزيئية معقدة للغاية ، وهذا يسمح لها بأن تكون مؤشرات ممتازة على القدرة على التحلل للفطريات المختبرة33,34. بعد ذلك ، يتم فحص الفطريات المختارة في الاختبارات الأولى لتحديد تلك التي لديها القدرة على تحلل ملوثات معينة مثل الفازلين وزيت المحرك المستخدم والبلاستيك. وأخيرا ، يتم إجراء اختبارات إنزيمية نوعية للكشف عن السلالات الفطرية القادرة على إنتاج إنزيمات تشارك في عمليات التحلل البيولوجي للمواد المتمردة. لهذا الغرض ، يتم إجراء اختبارات البروتياز والإستراز ، في حين يتم استخدام حمض الغال و guaiacol كمؤشرات على إنتاج اللاك وإنزيم لجنينوليتيك الآخر35,36. يتم استخدام هذه الركائز لأنه تم العثور على علاقة قوية بين قدرة الفطريات على أكسدتها إلى شكلها البني اللون وامتلاك القدرة على تحلل الليجنينوليك37،38،39.

من خلال هذه البروتوكولات ، من الممكن عزل السلالات الفطرية ذات الإمكانات التحلل العالية ومجموعة واسعة من الإجراءات مباشرة من عينات التربة. يمكن أن يساعد عزل هذه السلالات الفطرية في العثور على مرشحين جدد لأغراض المعالجة البيولوجية.

Protocol

1. اختيار السلالات الفطرية القادرة على تحلل المواد المتمردة من التربة إعداد محلول المضادات الحيوية. ضع البنسلين (50 مجم / لتر) والستربتومايسين (40 مجم / لتر) والكلورتتراسيكلين (40 مجم / لتر) والنيومايسين (100 مجم / لتر) والكلورامفينيكول (100 مجم / لتر) في 250 مل من الماء المعقم منزوع ا…

Representative Results

وسمحت أساليب الوسائط الانتقائية (القسم 1 من البروتوكول) بفحص التنوع البيولوجي الغني للتربة واختيار الفطريات ذات القدرة العالية على المعالجة البيولوجية. مع حمض الدبالية ووسائط الليجنوسليلوز ، تم عزل أكثر من 100 سلالة فطرية. أنتجت هذه الفطريات إنزيمات تشارك في التحلل البيولوجي للمواد المتم?…

Discussion

التنوع البيولوجي الغني للتربة هو مصدر وفير للفطريات التي تمتلك العديد من القدرات الأيضية ، وبعضها يمكن أن يكون مرشحا محتملا للمعالجة البيولوجية. اختبارات الوسائط الانتقائية (القسم 1 من البروتوكول) هي طرق سهلة الأداء وفعالة لعزل الفطريات القادرة على النمو على البوليمرات المعقدة الطبيعية …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نحن نقدر Scuola di Alta Formazione Dottorale (SAFD) من جامعة بافيا والبروفيسور سولفيغ توسي لإتاحة الفرصة لهذا العمل.

Materials

96 microwell plate Greiner bio-one 650185
Agar VWR 84609.05
Bushnell-Haas Broth Fluka B5051
CaCl2 Sigma-Aldrich C5670
Chloroamphenicol Eurobio GABCRL006Z
Chlortetracycline Sigma-Aldrich Y0001451
CoCl2·6H2O Sigma-Aldrich C8661
CuCl2·2H2O Sigma-Aldrich C3279
Ethanol VWR Chemicals 20821.296
FeCl3·6H2O Sigma-Aldrich 236489
Filter 0.2 µm Whatman 10462200
gallic acid Sigma-Aldrich G7384
Glass cover slips Biosigma VBS634
Glass vials 15 mL SciLabware P35467
guaiacol Sigma-Aldrich G5502
High-density polyethylene (HDPE) Sigma-Aldrich 434272
Humic acids Aldrich Chemistry 53680
K2HPO4 Sigma-Aldrich P8281
KH2PO4 Sigma-Aldrich P5655
Lignocellulose / / Sterilized bioethanol production waste
L-shaped cell spreader Laboindustria S.p.a 21133
magnetic stirrer A.C.E.F 8235
Malt Extract Broth Sigma-Aldrich 70146
MgSO4·7H2O Sigma-Aldrich M2643
Micropipette 1000 μL Gilson FA10006M
Micropipette 200  μL Gilson FA10005M
MnCl2·4H2O Sigma-Aldrich M5005
Na2MoO4·2H2O Sigma-Aldrich M1651
NaCl Sigma-Aldrich S5886
Neomycin Sigma-Aldrich N0401000
Penicillin Sigma-Aldrich 1504489
peptone Sigma-Aldrich 83059
Polyethylene terephthalate (PET) Goodfellow ES306031
Petri dishes Laboindustria S.p.a 21050
Petrolatum (Paraffin liquid) A.C.E.F 009661
Potato Dextrose Broth Sigma-Aldrich P6685
Polystyrene (PS) Sigma-Aldrich 331651
Polyurethane (PUR) Sigma-Aldrich GF20677923
Polyvinyl chloride (PVC) Sigma-Aldrich 81388
Sterile falcon tube Greiner bio-one 227 261
Sterile glass vials 20 mL Sigma-Aldrich SU860051
Sterile point 1000  μL Gilson F172511
Sterile point 200  μL Gilson F172311
Sterile polyethylene bags WHIRL-PAK B01018
sterile syringe Rays 5523CM25
Streptomycin Sigma-Aldrich S-6501
Tween 80 Sigma-Aldrich P1754
Used engine oil / / complex mixture of hydrocarbons, engine additives, and metals, provided by an Italian private company
Vials 50 mL Sigma-Aldrich 33108-U
ZnCl2 Sigma-Aldrich Z0152

References

  1. Mohammadi, K., Heidari, G., Khalesro, S., Sohrabi, Y. Soil management, microorganisms and organic matter interactions: A review. African Journal of Biotechnology. 10 (86), 19840-19849 (2011).
  2. Daccò, C., Girometta, C., Asemoloye, M. D., Carpani, G., Picco, A. M., Tosi, S. Key fungal degradation patterns, enzymes and their applications for the removal of aliphatic hydrocarbons in polluted soils: A review. International Biodeterioration and Biodegradation. 147, (2020).
  3. Asemoloye, M. D., Ahmad, R., Jonathan, S. G. Synergistic action of rhizospheric fungi with Megathyrsus maximus root speeds up hydrocarbon degradation kinetics in oil polluted soil. Chemosphere. 187, 1-10 (2017).
  4. Abatenh, E., Gizaw, B., Tsegaye, Z., Wassie, M. The role of microorganisms in bioremediation – A review. Open Journal of Environmental Biology. 2, 038-046 (2017).
  5. Dix, N. J., Webster, J. . Fungal Ecology. , (1995).
  6. Magan, N., Esser, K., Lemke, P. A. Fungi in extreme environment. Environmental and Microbial Relationships. The Mycota. 4, 99-114 (2007).
  7. Aranda, E. Promising approaches towards biotransformation of polycyclic aromatic hydrocarbons with Ascomycota fungi. Current Opinion in Biotechnology. 38, 1-8 (2016).
  8. Hasan, I. F., AI-Jawhari, V., Kumar, M., Kumar, R., Prasad, Role of Filamentous Fungi to Remove Petroleum Hydrocarbons from the Environment. Microbial Action on Hydrocarbons. , (2018).
  9. Daccò, C., et al. Trichoderma: evaluation of its degrading abilities for the bioremediation of hydrocarbon complex mixtures. Applied Sciences. 10 (9), 3152 (2020).
  10. Alarcón, A., Davies, F. T., Autenrieth, R. L., Zuberer, D. A. Arbuscular mycorrhiza and petroleum-degrading microorganisms enhance phytoremediation of petroleum-contaminated soil. International Journal of Phytoremediation. 10, 251-263 (2008).
  11. Mancera-López, M. E., et al. Bioremediation of an aged hydro-carbon-contaminated soil by a combined system of biostimulation-bioaugmentation with filamentous fungi. International Biodeterioration and Biodegradation. 61, (2008).
  12. Hatami, E., Abbaspour, A., Dorostkar, V. Phytoremediation of a petroleum-polluted soil by native plant species in Lorestan Province, Iran. Environmental Science and Pollution Research. 26, 24323-24330 (2019).
  13. Prenafeta-Boldú, F. X., De Hoog, G. S., Summerbell, R. C. Fungal communities in hydrocarbon degradation. Microbial Communities Utilizing Hydrocarbons and Lipids: Members, Metagenomics and Ecophysiology. Handbook of Hydrocarbon and Lipid Microbiology. , 1-36 (2018).
  14. Gu, J., Ford, T., Mitton, D., Mitchell, R. Microbiological degradation of polymeric materials. Uhlig’s Corrosion Handbook. , 421-438 (2011).
  15. Tuomela, M., Hatakka, A. Oxidative fungal enzymes for bioremediation. Comprehensive Biotechnology: Environmental and Related Biotechnologies. 6, 224-239 (2019).
  16. DSouza, G. C., et al. Fungal biodegradation of low-density polyethylene using consortium of Aspergillus species under controlled conditions. Heliyon. 7 (5), 07008 (2021).
  17. El-Sayed, M. T., Rabie, G. H., Hamed, E. A. Biodegradation of low-density polyethylene (LDPE) using the mixed culture of Aspergillus carbonarius and A. fumigates. Environment, Development, and Sustainability. 23 (10), 14556-14584 (2021).
  18. Sepperumal, U., Markandan, M., Palraja, I. Micromorphological and chemical changes during biodegradation of polyethylene terephthalate (PET) by Penicillium sp. Journal of Microbiology and Biotechnology Research. 3 (4), 47-53 (2013).
  19. Leitão, A. L. Potential of Penicillium species in the bioremediation field. International Journal of Environmental Research and Public Health. 6 (4), 1393-1417 (2009).
  20. Chen, S. H., Ting, A. S. Y. Biosorption and biodegradation potential of triphenylmethane dyes by newly discovered Penicillium simplicissimum isolated from indoor wastewater sample. International Biodeterioration & Biodegradation. 103, 1-7 (2015).
  21. Orhan, Y., Buyukgungor, H. Enhancement of biodegradability of disposable polyethylene in controlled biological soil. International Biodeterioration and Biodegradation. 45, 49-55 (2000).
  22. Deshmukh, R., Khardenavis, A. A., Purohit, H. J. Diverse metabolic capacities of fungi for bioremediation. Indian journal of microbiology. 56 (3), 247-264 (2016).
  23. Viswanath, B., Rajesh, B., Janardhan, A., Kumar, A. P., Narasimha, G. Fungal laccases and their applications in bioremediation. Enzyme research. 2014, 163242 (2014).
  24. Ali, M., Husain, Q., Ishqi, H. M. Fungal peroxidases mediated bioremediation of industrial pollutants. Fungal Bioremediation. , (2019).
  25. Nousiainen, P., Kontro, J., Manner, H., Hatakka, A., Sipilä, J. Phenolic mediators enhance the manganese peroxidase catalyzed oxidation of recalcitrant lignin model compounds and synthetic lignin. Fungal Genetics and Biology. 72, 137-149 (2014).
  26. Srivastava, S., Kumar, M. Biodegradation of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs): A sustainable approach. Sustainable Green Technologies for Environmental Management. , (2019).
  27. Wei, R., Zimmermann, W. Microbial enzymes for the recycling of recalcitrant petroleum-based plastics: how far are we. Microbial Biotechnology. 10 (6), 1308-1322 (2017).
  28. Matsubara, M., Lynch, J. M., De Leij, F. A. A. M. A simple screening procedure for selecting fungi with potential for use in the bioremediation of contaminated land. Enzyme and Microbial Technology. 39 (7), 1365-1372 (2006).
  29. Mann, J., et al. Screening and selection of fungi for bioremediation of olive mill wastewater. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 26 (3), 567-571 (2010).
  30. Andlar, M., Rezić, T., Marđetko, N., Kracher, D., Ludwig, R., Šantek, B. Lignocellulose degradation: an overview of fungi and fungal enzymes involved in lignocellulose degradation. Engineering in Life Sciences. 18, 768-778 (2018).
  31. Goméz-Toribio, V., García-Martín, A. B., Martínez, M. J., Martínez, A. T., Guillén, F. Induction of extracellular hydroxyl radical production by white-rot fungi through quinone redox cycling. Applied and Environmental Microbiology. 75, 3944-3953 (2009).
  32. Belcarz, A., Ginalska, G., Kornillowicz-Kowalska, T. Extracellular enzyme activities of Bjerkandera adusta R59 soil strain, capable of daunomycin and humic acids degradation. Applied Microbiology and Biotechnology. 68 (5), 686-694 (2005).
  33. Stevenson, F. J. . Humus Chemistry: Genesis, Composition, Reactions. 2nd ed. , (1995).
  34. Andlar, M., et al. Lignocellulose degradation: An overview of fungi and fungal enzymes involved in lignocellulose degradation. Engineering in Life Sciences. 18 (11), 768-778 (2018).
  35. Lee, H., et al. Biotechnological procedures to select white rot fungi for the degradation of PAHs. Journal of Microbiological Methods. 97 (1), 56-62 (2014).
  36. Batista-García, R. A., et al. Simple screening protocol for identification of potential mycoremediation tools for the elimination of polycyclic aromatic hydrocarbons and phenols from hyperalkalophile industrial effluents. Journal of Environmental Management. 198, 1-11 (2017).
  37. Shleev, S. V., et al. Comparison of physico-chemical characteristics of four laccases from different basidiomycetes. Biochimie. 86 (9-10), (2004).
  38. Kiiskinen, L. L., Rättö, M., Kruus, K. Screening for novel laccase-producing microbes. Journal of Applied Microbiology. 97, (2004).
  39. Kumar, V. V., Rapheal, V. S. Induction and purification by three-phase partitioning of aryl alcohol oxidase (AAO) from Pleurotus ostreatus. Applied Biochemistry and Biotechnology. , 163 (2011).
  40. Loredo-Treviño, A., Gutiérrez-Sánchez, G., Rodríguez-Herrera, R., Aguilar, C. N. Microbial enzymes involved in polyurethane biodegradation: a review. Journal of Polymers and the Environment. 20 (1), 258-265 (2012).
  41. Garriga, M., et al. Technological and sensorial evaluation of Lactobacillus strains as starter cultures in fermented sausages. International Journal of Food Microbiology. 32 (1-2), 173-183 (1996).
  42. Zerdani, I., Faid, M., Malki, A. Feather wastes digestion by new isolated strains Bacillus sp. In microcco. African Journal of Biotechnology. 3 (1), 67-70 (2004).
  43. Nygren, C. M., Edqvist, J., Elfstrand, M., Heller, G., Taylor, A. F. Detection of extracellular protease activity in different species and genera of ectomycorrhizal fungi. Mycorrhiza. 17 (3), 241-248 (2007).
  44. Asemoloye, M. D., et al. Hydrocarbon degradation and enzyme activities of Aspergillus oryzae and Mucor irregularis isolated from Nigerian crude oil-polluted sites. Microorganisms. 8 (12), 1912 (2020).
check_url/fr/63445?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Temporiti, M. E. E., Daccò, C., Nicola, L. Isolation and Screening from Soil Biodiversity for Fungi Involved in the Degradation of Recalcitrant Materials. J. Vis. Exp. (183), e63445, doi:10.3791/63445 (2022).

View Video