Summary

サッカリーナ・ラティッシマの胚における標的レーザーアブレーション

Published: March 11, 2022
doi:

Summary

胚中の特定の細胞の破壊は、細胞の運命に関与する細胞相互作用を研究するための強力なツールである。本プロトコールは、褐色藻類サッカリーナ・ラティッシマの初期胚における標的細胞のレーザーアブレーションのための技術を記載する。

Abstract

サッカリーナ・ラティッシマでは、胚は薄層または刃と呼ばれる単層細胞シートとして発達する。各胚細胞は観察が容易であり、その隣人と容易に区別でき、そして個別に標的化することができる。何十年もの間、レーザーアブレーションは胚発生を研究するために使用されてきました。ここでは、褐色藻類S. latissimaの初期胚について、細胞特異的レーザーアブレーションのプロトコルが開発された。提示された研究には、(1)サッカリナ胚の調製、培養条件を含む重要なパラメータの説明、(2)レーザーアブレーション設定、および(3)タイムラプス顕微鏡を用いた照射胚のその後の成長のモニタリングが含まれる。さらに、イメージングプラットフォームからラボに胚を輸送するための最適な条件に関する詳細が提供されており、その後の胚発生に深く影響する可能性があります。ラミナリア目に属する藻類は、サッカリナに似た胚発生パターンを示すため、このプロトコルはこの分類群の他の種に容易に転移することができる。

Introduction

レーザーアブレーションは、胚発生を研究するために何十年もの間使用されてきました。胚細胞にレーザー光を照射すると、胚発生中の再生能と細胞系譜の改変を監視し、標的アブレーションが細胞分裂と細胞運命に及ぼす影響を調べることができます。レーザーアブレーション法で使用されるモデル生物は、典型的には動物であり、例えば昆虫1,2線虫3,4、脊椎動物5,6、および時には植物7,8である。さらに、1994年と1998年に褐色藻類のヒバコにレーザーマイクロアブレーションアプローチを使用して、初期胚の光偏光における細胞壁の役割を実証した9,10

褐藻類は、16億年前に真核生物の木の根元で発散したグループStramenopilesに属します。その結果、それらは、動植物11などの他の多細胞生物から系統学的に独立している。Saccharina latissimaは、より一般的に昆布として知られているLaminarialesに属し、彼らは30メートル以上のサイズに達する、地球上で最大の生物の一つですサッカリナ属は、食品や飼料などの多くの用途に使用される大きな海藻であり、その多糖類は、世界中の農業、薬理学、化粧品産業で使用するために抽出されています1213。その栽培は、主にアジアで、そして最近ではヨーロッパで、外洋に幼体を放出する前に孵化場で胚を準備する必要があります。すべての昆布と同様に、それは、一倍体配偶子が成長し、受精のために配偶子を生成する微視的な配偶子植物期と、海底または岩石に取り付けられたホールドファストから大きな平面ブレードが発達する二倍体の巨視的胞子植物期からなる二相性ライフサイクルを有する。この胞子植物は成熟時に一倍体胞子を放出し、それによってライフサイクル141516を完了させる。

S. latissimaはいくつかの 興味深い形態学的特徴を提示する17。その胚は、異なる組織型の出現と一致する多層構造を獲得する前に、単層平面シート151819として発達する。さらに、ラミナリア目は褐藻類の唯一の分類群の1つであり、その胚は母体の配偶子植物組織に付着したままである(デスマレスティアレスとスポロクナレスも15)。この機能は、この発生過程における母体組織の役割を研究し、褐藻類の母体制御機構を動物および植物の制御機構と比較する機会を提供する。

この記事では、初期の昆布胚におけるレーザーアブレーションのための最初の完全なプロトコルを提示します。UV nsパルス技術を含むこのプロトコルは、胚発生中のそれぞれの役割を研究するために、個々の胚細胞の特異的な破壊をもたらす。この手順は、ラミナリア目における胚発生中の細胞相互作用および細胞運命を調査するための信頼できるアプローチを提供する。

Protocol

1. サッカリーナ・ラティッシマ・ガメトフィテスの生産 S . latissima の成熟した胞子植物を野生から採取する(前述の20、21)。選択した胞子植物に着生植物(ブレードの表面に見える小さな生物)または内部寄生虫(漂白された領域またはブレード上の斑点に見られる)がないことを確認してください。 メス…

Representative Results

S. latissimaの配偶子植物が増殖し、配偶子形成が誘導されて接合体および胚が産生された。配偶子形成の誘導の12日後、胚はレーザーアブレーションを受けた。ここで、実験は、S. latissima胚の全体的な発達における特定の細胞の役割を評価することを目的とした。最も頂端細胞、最も基底細胞、および中央値細胞を標的とした。タイルスキャン後、対象となる胚であるシャーレ全?…

Discussion

局所細胞レーザーアブレーションは、高い精度で時間的および空間的アブレーションを可能にします。しかし、その効率は、標的細胞のアクセス不能によって妨げられる可能性がある。例えば、すべての細胞は三次元胚のものである。このプロトコルは、レーザービームですべての細胞を簡単に区別して個別に破壊することができる単層薄層を発達させる藻 類Saccharina latissimaの胚で開?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

S.B.の博士号助成金は、ブルターニュ地方(ARED助成金番号COH20020)とソルボンヌ大学から資金提供を受けています。博士課程 I.T.is 助成金は、ブルターニュ地域(ARED助成金番号COH18020)とノルヴェジアンNMBU大学によって資金提供されています。このプロジェクトは、通商産業省の学際的プログラムを通じてCNRSから財政的支援を受けています。MRicは、フランス国立研究庁(ANR-10-INBS-04)が支援する国家インフラフランスバイオイメージングのメンバーです。

Materials

25 mm glass bottom petri dish NEST 801001
Autoclaved sea water Collected offshore near the Astan buoy (48°44.934 N 003°57.702 W) close to Roscoff, France, at a depth of 20 m.
Cell scraper MED 2 83.3951
Cell strainer 40 µm Corning / Falcon 352340
Culture cabinets Snijders Scientific Plant Growth Cabinet ECD01 Any other brand is suitable provided that the light intensity, the photoperiod and the temperature can be controlled.
LSM 880 Zeiss confocal microscope Carl Zeiss microscopy, Jena, Germany Ablation and imaging were performed using a 40x/1.2 water objective
Pellet pestles Sigma Aldrich Z359947 Blue polypropylene (autoclavable)
Provasoli supplement Recipe is available here: http://www.sb-roscoff.fr/sites/www.sb-roscoff.fr/files/documents/station-biologique-roscoff-preparation-du-provasoli-2040.pdf
Pulsed 355 laser (UGA-42 Caliburn 355/25) Rapp OptoElectronic, Wedel, Germany
Scalpel Paramount PDSS 11
SysCon software Rapp OptoElectronic, Wedel, Germany Laser-driver software
ZEN software Carl Zeiss microscopy, Jena, Germany Imaging software, used together with the SysCon software; Black 2.3 version

References

  1. Montell, D. J., Keshishian, H., Spradling, A. C. Laser ablation studies of the role of the Drosophila oocyte nucleus in pattern formation. Science. 254 (5029), 290-293 (1991).
  2. Shivakumar, P. C., Lenne, P. F. Laser ablation to probe the epithelial mechanics in drosophila. Methods In Molecular Biology. 1478, 241-251 (2016).
  3. Bargmann, C. I., Avery, L. Laser killing of cells in Caenorhabditis elegans. Modern Biological Analysis of an Organism. 48, 225-250 (1995).
  4. Fouad, A. D., Liu, A., Du, A., Bhirgoo, P. D., Fang-Yen, C. Thermal laser ablation with tunable lesion size reveals multiple origins of seizure-like convulsions in Caenorhabditis elegans. Scientific Reports. 11 (1), 5084 (2021).
  5. Johnson, C. S., Holzemer, N. F., Wingert, R. A. Laser ablation of the zebrafish pronephros to study renal epithelial regeneration. Journal of Visualized Experiments. (54), e2845 (2011).
  6. Mondia, J. P., Adams, D. S., Orendorff, R. D., Levin, M., Omenetto, F. G. Patterned femtosecond-laser ablation of Xenopus laevis melanocytes for studies of cell migration, wound repair, and developmental processes. Biomedical Optics Express. 2 (8), 2383-2391 (2011).
  7. Reinhardt, D., Frenz, M., Mandel, T., Kuhlemeier, C. Microsurgical and laser ablation analysis of leaf positioning and dorsoventral patterning in tomato. Development. 132 (1), 15-26 (2005).
  8. Berg, C., Hage, W., Weisbeek, P., Scheres, B. Laser ablation in Arabidopsis roots: a tool to study cell-to-cell communication. Cellular integration of signalling pathways in plant development. Proceedings of the NATO Advanced Study Institute. , 237-250 (1998).
  9. Berger, F., Taylor, A., Brownlee, C. Cell fate determination by the cell wall in early fucus development. Science. 263 (5152), 1421-1423 (1994).
  10. Bouget, F. Y., Berger, F., Brownlee, C. Position dependent control of cell fate in the Fucus embryo: role of intercellular communication. Development. 125 (11), 1999-2008 (1998).
  11. Bringloe, T., et al. Phylogeny and evolution of the brown algae. Critical Reviews in Plant Sciences. 39 (4), 281-321 (2020).
  12. Saifullah, S., Olsen, Y., Surilayani, D., Handå, A. Carbohydrate of the brown seaweed, saccharina latissima: a review. Joint proceedings of the 2nd and the 3rd International Conference on Food Security Innovation (ICFSI 2018-2019). , 180-182 (2021).
  13. Zhang, X., Thomsen, M. Techno-economic and environmental assessment of novel biorefinery designs for sequential extraction of high-value biomolecules from brown macroalgae Laminaria digitata, Fucus vesiculosus, and Saccharina latissima. Algal Research. 60, 102499 (2021).
  14. Kanda, T. On the gametophytes of some japanese species of laminariales. Scientific papers of the Institute of Algological Research, Faculty of Science. 1 (2), 221-260 (1936).
  15. Fritsch, F. E. . The structure and reproduction of the algae. Volume 2. , (1945).
  16. Bartsch, I., et al. The genus Laminaria sensu lato : recent insights and developments. European Journal of Phycology. 43 (1), 1-86 (2008).
  17. Theodorou, I., Charrier, B., Boutet, A., Schierwater, B. Chapter 2: Brown algae: ectocarpus and saccharina as experimental models for developmental biology. Handbook of Marine Model Organisms in Experimental Biology – Established and Emerging. , 485 (2021).
  18. Drew, G. H. The reproduction and early development of laminaria digitata and laminaria saccharina. Annals of Botany. 24 (1), 177-189 (1910).
  19. Yendo, K. The development of costaria, undaria, and laminaria. Annals of Botany. 25 (99), 691-715 (1911).
  20. Forbord, S., Steinhovden, K., Rød, K., Handå, A., Skjermo, J., Charrier, B., Wichard, T., Reddy, C. R. K. Cultivation protocol for Saccharina latissima. Protocols for Macroalgae Research. , 37-59 (2018).
  21. Bartsch, I., Charrier, B., Wichard, T., Reddy, C. R. K. Derivation of clonal stock cultures and hybridization of kelps. Protocols for Macroalgae Research. , 61-78 (2018).
  22. Theodorou, I., Opsahl-Sorteberg, H. -. G., Charrier, B. Preparation of zygotes and embryos of the kelp saccharina latissima for cell biology approaches. Bio-protocol. 101, 4132 (2021).
  23. Lüning, K., Dring, M. J. Reproduction induced by blue light in female gametophytes of Laminaria saccharina. Planta. 104 (3), 252-256 (1972).
  24. de Medeiros, G., et al. Cell and tissue manipulation with ultrashort infrared laser pulses in light-sheet microscopy. Scientific Reports. 10 (1), 1942 (2020).
  25. Liang, X., Michael, M., Gomez, G. A. Measurement of mechanical tension at cell-cell junctions using two-photon laser ablation. Bio-protocol. 6 (24), 2068 (2016).
  26. Ebbing, A., Pierik, R., Bouma, T., Kromkamp, J. C., Timmermans, K. How light and biomass density influence the reproduction of delayed Saccharina latissima gametophytes (Phaeophyceae). Journal of Phycology. 56 (3), 709-718 (2020).
  27. Rabillé, H., Billoud, B., Tesson, B., Le Panse, S., Rolland, &. #. 2. 0. 1. ;., Charrier, B. The brown algal mode of tip growth: Keeping stress under control. PLoS Biology. 17 (1), 2005258 (2019).
check_url/fr/63518?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Boscq, S., Dutertre, S., Theodorou, I., Charrier, B. Targeted Laser Ablation in the Embryo of Saccharina latissima. J. Vis. Exp. (181), e63518, doi:10.3791/63518 (2022).

View Video