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Article de méthode

Évaluation de l’oxydation du substrat énergétique in vitro avec piégeage de 14CO2

2.1K vues

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DOI :

10.3791/63568

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23 mars 2022

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit une méthode facile à utiliser pour examiner l’oxydation du substrat en suivant la production de 14CO2 in vitro.

Résumé

Les mitochondries hébergent la machinerie du cycle de l’acide tricarboxylique (TCA) et de la chaîne de transport d’électrons (ETC), qui génèrent de l’adénosine triphosphate (ATP) pour maintenir l’homéostasie énergétique. Le glucose, les acides gras et les acides aminés sont les principaux substrats énergétiques alimentant la respiration mitochondriale dans la plupart des cellules somatiques. Les preuves montrent que différents types de cellules peuvent avoir une préférence distincte pour certains substrats. Cependant, l’utilisation du substrat par diverses cellules du squelette n’a pas été étudiée en détail. De plus, comme le métabolisme cellulaire est adapté aux changements physiologiques et physiopathologiques, des évaluations directes de la dépendance au substrat dans les cellules squelettiques peuvent fournir des informations importantes sur la pathogenèse des maladies osseuses.

Le protocole suivant est basé sur le principe de la libération de dioxyde de carbone par les molécules de substrat après phosphorylation oxydative. En utilisant des substrats contenant des atomes de carbone marqués radioactivement (14C), la méthode fournit un test sensible et facile à utiliser pour le taux d’oxydation du substrat en culture cellulaire. Une étude de cas avec des préostéoblastes calvariaires primaires par rapport à des macrophages dérivés de la moelle osseuse (MGM) démontre une utilisation différente des principaux substrats entre les deux types de cellules.

Introduction

La phosphorylation oxydative (OXPHOS) chez les eucaryotes est le processus par lequel les nutriments sont décomposés à l’intérieur des mitochondries pour libérer de l’énergie chimique sous forme d’ATP par la consommation d’oxygène.  Le catabolisme de divers substrats à l’intérieur des mitochondries par le cycle de l’acide tricarboxylique (TCA) génère directement peu de molécules d’ATP, mais stocke plutôt de l’énergie par réduction des transporteurs d’électrons nicotinamide adénine dinucléotide (NAD+) et flavine adénine dinucléotide (FAD+). Les porteurs réduits sont ensuite oxydés par ETC situé sur la membrane interne des mitochondries pour génére....

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Protocole

L’utilisation de matières radioactives (RAM) nécessite l’approbation préalable d’un comité de sûreté désigné dans chaque établissement. Les RAM utilisés dans ce protocole ont été approuvés par Environmental Health & Radiation Safety (EHRS) de l’Université de Pennsylvanie. L’utilisation d’animaux nécessite l’approbation préalable du Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux (IACUC) de l’établissement d’origine. L’étude suivante a été approuvée par l’IACUC à l’hôpital pour enfants de Philadelphie.

1. Préparation de solutions mères pour 14substrats marqués C

  1. Préparer une solution mère d’a....

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Résultats

Dans cet exemple, la méthode de piégeage du CO2 est utilisée pour comparer l’oxydation du substrat par les préostéoblastes calvariaires primaires par rapport aux MBM, qui sont fréquemment utilisés pour la différenciation in vitro des ostéoblastes ou des ostéoclastes, respectivement. Une fois que les cellules primaires sont passées et cultivées dans cMEMα pendant la nuit, elles atteignent généralement 80 à 90% de la confluence et présentent leur morphologie caractéristique. Les préostéoblastes calvaria.......

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Discussion

Le protocole fournit une méthode facile à utiliser pour déterminer le taux d’oxydation des principaux substrats énergétiques. C’est une alternative plus simple aux autres protocoles qui utilisent des flacons contenant un puits central et coiffés de bouchons en caoutchouc 14,15,16. Bien que l’exemple d’étude ici soit réalisé avec une culture cellulaire, la méthode peut être facilement adaptée pour les explantes tissulaires ou les.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Le travail a été soutenu en partie par la subvention R01 AR060456 (FL) des NIH. Nous remercions le Dr Michael Robinson et Elizabeth Krizman (The Children’s Hospital of Philadelphia) pour leur généreuse aide avec le compteur de scintillation.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
0,22 et micro ; m filtresSigma-AldrichSLGVM33RSUtilisé pour filtrer la solution BSA
0,25 % Trypsine-EDTAGibco25200056Dissocier les cellules des plaques de culture cellulaire
1,5 mL Tubes EppendorfPR1MAPR MCT17 RBUtilisé pour l’incubation réactionnelle
Plaques de 10 cmTPP93100Utilisé pour la culture cellulaire
Seringue 10 mLBD302995Utilisé pour rincer la moelle osseuse des os longs
10 % FBSAtlanta biologicalsS11550Pour la préparation de milieux de culture cellulaire
14C-GlucosePerkinElmerNEC042X050UCUtilisé pour fabriquer des milieux
chauds14C-glutaminePerkinElmerNEC451050UCUtilisé pour fabriquer des milieux
chauds14C-oléatePerkinElmerNEC317050UCUtilisé pour fabriquer des supports chauds
Aiguille 23 GBD305120Utilisé pour rincer la moelle des os longs Plaques
24 puitsTPP92024Utilisé pour la culture cellulaire
70 &mu ; Passoires à cellules mMIDSCI70CELLUtilisé pour filtrer le surnageant pendant la digestion cavariale
Colorant Acridine Orange/Iodure de propidium (AO/PI)Nexcelom BiosciencesCS2-0106Colore les cellules vivantes pour déterminer la densité des graines
Sérum bovin AbluminProliant Biologicals68700Utilisé pour la conjugaison des acides gras
Cellomètre Auto 2000Nexcelom BiosciencesDéterminer le nombre de cellules viables
CentrifugeuseThermo FisherLegend Micro 21RUtilisé pour granuler les cellules
Collagénase de type IIWorthingtonLS004176Dissocier les cellules du tissu
Custom MEM alphaGIBCOSKU : ME 18459P1Utilisé pour créer des milieux chauds personnalisés
Dulbecco’s Phosphate-Buffered SalineGibco10010023Utilisé pour dissoudre et diluer les réactifs, et laver les plats de culture
Papier filtreMillipore-SigmaWHA1001090Pièges à CO2 avec hydroxyde de sodium
GlucoseSigma-Aldrichg7528Utilisé pour fabriquer des supports personnalisés
HEPESGibco15630080Traps CO2 pendant la culture cellulaire
L-carnitineSigma-AldrichC0283Supplémenté pour l’oxydation des acides gras
L-GlutamineSigma-Aldrichg3126Utilisé pour fabriquer des milieux personnalisés
MEM alphaThermoA10490Milieu de culture cellulaire
ParafilmPecheney Plastic PackagingPM998Utilisé pour sceller les boîtes de culture cellulaire
Pénicilline-StreptomycineThermo Fisher15140122Empêche la contamination dans la culture cellulaire
Acide perchloriqueSigma-Aldrich244252Libère du CO2 lors d’un dosage métabolique
PyruvateSigma-Aldrichp5280Utilisé pour fabriquer des supports personnalisés
Compteur de scintillationBeckman CoulterLS6500Détermine la radioactivité du papier filtre
Fluide à scintillationMP Biomedicals882453Absorber l’énergie émise par les RAM et la réémettre sous forme d’éclairs de lumière
Fiole à scintillationFisher Scientific03-337-1Récipients de réaction pour fluide à scintillation
Carbonate de sodiumSigma-AldrichS5761Tampon d’équilibre pour hydroxyde de
sodiumSigma-Aldrich58045Piège le CO2 pendant le dosage de l’oléate
de sodiumSANTA CRUZSC-215879BSA préparation d’acides gras conjugués
Filtration sous vide 1000TPP99950Filtre cMEM&alpha ;
à moyen

Références

  1. Hargreaves, M., Spriet, L. L. Skeletal muscle energy metabolism during exercise. Nature Metabolism. 2 (9), 817-828 (2020).
  2. Jeukendrup, A. E. Regulation of fat metabolism in skeletal muscle. Annals of the New York Academy of Sciences. 967, 217-235 (2002).

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Réimpressions et autorisations

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