Ce protocole décrit une méthode facile à utiliser pour examiner l’oxydation du substrat en suivant la production de 14CO2 in vitro.
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Article de méthode
Ce protocole décrit une méthode facile à utiliser pour examiner l’oxydation du substrat en suivant la production de 14CO2 in vitro.
Les mitochondries hébergent la machinerie du cycle de l’acide tricarboxylique (TCA) et de la chaîne de transport d’électrons (ETC), qui génèrent de l’adénosine triphosphate (ATP) pour maintenir l’homéostasie énergétique. Le glucose, les acides gras et les acides aminés sont les principaux substrats énergétiques alimentant la respiration mitochondriale dans la plupart des cellules somatiques. Les preuves montrent que différents types de cellules peuvent avoir une préférence distincte pour certains substrats. Cependant, l’utilisation du substrat par diverses cellules du squelette n’a pas été étudiée en détail. De plus, comme le métabolisme cellulaire est adapté aux changements physiologiques et physiopathologiques, des évaluations directes de la dépendance au substrat dans les cellules squelettiques peuvent fournir des informations importantes sur la pathogenèse des maladies osseuses.
Le protocole suivant est basé sur le principe de la libération de dioxyde de carbone par les molécules de substrat après phosphorylation oxydative. En utilisant des substrats contenant des atomes de carbone marqués radioactivement (14C), la méthode fournit un test sensible et facile à utiliser pour le taux d’oxydation du substrat en culture cellulaire. Une étude de cas avec des préostéoblastes calvariaires primaires par rapport à des macrophages dérivés de la moelle osseuse (MGM) démontre une utilisation différente des principaux substrats entre les deux types de cellules.
La phosphorylation oxydative (OXPHOS) chez les eucaryotes est le processus par lequel les nutriments sont décomposés à l’intérieur des mitochondries pour libérer de l’énergie chimique sous forme d’ATP par la consommation d’oxygène. Le catabolisme de divers substrats à l’intérieur des mitochondries par le cycle de l’acide tricarboxylique (TCA) génère directement peu de molécules d’ATP, mais stocke plutôt de l’énergie par réduction des transporteurs d’électrons nicotinamide adénine dinucléotide (NAD+) et flavine adénine dinucléotide (FAD+). Les porteurs réduits sont ensuite oxydés par ETC situé sur la membrane interne des mitochondries pour génére....
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L’utilisation de matières radioactives (RAM) nécessite l’approbation préalable d’un comité de sûreté désigné dans chaque établissement. Les RAM utilisés dans ce protocole ont été approuvés par Environmental Health & Radiation Safety (EHRS) de l’Université de Pennsylvanie. L’utilisation d’animaux nécessite l’approbation préalable du Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux (IACUC) de l’établissement d’origine. L’étude suivante a été approuvée par l’IACUC à l’hôpital pour enfants de Philadelphie.
1. Préparation de solutions mères pour 14substrats marqués C
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Dans cet exemple, la méthode de piégeage du CO2 est utilisée pour comparer l’oxydation du substrat par les préostéoblastes calvariaires primaires par rapport aux MBM, qui sont fréquemment utilisés pour la différenciation in vitro des ostéoblastes ou des ostéoclastes, respectivement. Une fois que les cellules primaires sont passées et cultivées dans cMEMα pendant la nuit, elles atteignent généralement 80 à 90% de la confluence et présentent leur morphologie caractéristique. Les préostéoblastes calvaria.......
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Le protocole fournit une méthode facile à utiliser pour déterminer le taux d’oxydation des principaux substrats énergétiques. C’est une alternative plus simple aux autres protocoles qui utilisent des flacons contenant un puits central et coiffés de bouchons en caoutchouc 14,15,16. Bien que l’exemple d’étude ici soit réalisé avec une culture cellulaire, la méthode peut être facilement adaptée pour les explantes tissulaires ou les.......
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Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.
Le travail a été soutenu en partie par la subvention R01 AR060456 (FL) des NIH. Nous remercions le Dr Michael Robinson et Elizabeth Krizman (The Children’s Hospital of Philadelphia) pour leur généreuse aide avec le compteur de scintillation.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 0,22 et micro ; m filtres | Sigma-Aldrich | SLGVM33RS | Utilisé pour filtrer la solution BSA |
| 0,25 % Trypsine-EDTA | Gibco | 25200056 | Dissocier les cellules des plaques de culture cellulaire |
| 1,5 mL Tubes Eppendorf | PR1MA | PR MCT17 RB | Utilisé pour l’incubation réactionnelle |
| Plaques de 10 cm | TPP | 93100 | Utilisé pour la culture cellulaire |
| Seringue 10 mL | BD | 302995 | Utilisé pour rincer la moelle osseuse des os longs |
| 10 % FBS | Atlanta biologicals | S11550 | Pour la préparation de milieux de culture cellulaire |
| 14C-Glucose | PerkinElmer | NEC042X050UC | Utilisé pour fabriquer des milieux |
| chauds14C-glutamine | PerkinElmer | NEC451050UC | Utilisé pour fabriquer des milieux |
| chauds14C-oléate | PerkinElmer | NEC317050UC | Utilisé pour fabriquer des supports chauds |
| Aiguille 23 G | BD | 305120 | Utilisé pour rincer la moelle des os longs Plaques |
| 24 puits | TPP | 92024 | Utilisé pour la culture cellulaire |
| 70 &mu ; Passoires à cellules m | MIDSCI | 70CELL | Utilisé pour filtrer le surnageant pendant la digestion cavariale |
| Colorant Acridine Orange/Iodure de propidium (AO/PI) | Nexcelom Biosciences | CS2-0106 | Colore les cellules vivantes pour déterminer la densité des graines |
| Sérum bovin Ablumin | Proliant Biologicals | 68700 | Utilisé pour la conjugaison des acides gras |
| Cellomètre Auto 2000 | Nexcelom Biosciences | Déterminer le nombre de cellules viables | |
| Centrifugeuse | Thermo Fisher | Legend Micro 21R | Utilisé pour granuler les cellules |
| Collagénase de type II | Worthington | LS004176 | Dissocier les cellules du tissu |
| Custom MEM alpha | GIBCO | SKU : ME 18459P1 | Utilisé pour créer des milieux chauds personnalisés |
| Dulbecco’s Phosphate-Buffered Saline | Gibco | 10010023 | Utilisé pour dissoudre et diluer les réactifs, et laver les plats de culture |
| Papier filtre | Millipore-Sigma | WHA1001090 | Pièges à CO2 avec hydroxyde de sodium |
| Glucose | Sigma-Aldrich | g7528 | Utilisé pour fabriquer des supports personnalisés |
| HEPES | Gibco | 15630080 | Traps CO2 pendant la culture cellulaire |
| L-carnitine | Sigma-Aldrich | C0283 | Supplémenté pour l’oxydation des acides gras |
| L-Glutamine | Sigma-Aldrich | g3126 | Utilisé pour fabriquer des milieux personnalisés |
| MEM alpha | Thermo | A10490 | Milieu de culture cellulaire |
| Parafilm | Pecheney Plastic Packaging | PM998 | Utilisé pour sceller les boîtes de culture cellulaire |
| Pénicilline-Streptomycine | Thermo Fisher | 15140122 | Empêche la contamination dans la culture cellulaire |
| Acide perchlorique | Sigma-Aldrich | 244252 | Libère du CO2 lors d’un dosage métabolique |
| Pyruvate | Sigma-Aldrich | p5280 | Utilisé pour fabriquer des supports personnalisés |
| Compteur de scintillation | Beckman Coulter | LS6500 | Détermine la radioactivité du papier filtre |
| Fluide à scintillation | MP Biomedicals | 882453 | Absorber l’énergie émise par les RAM et la réémettre sous forme d’éclairs de lumière |
| Fiole à scintillation | Fisher Scientific | 03-337-1 | Récipients de réaction pour fluide à scintillation |
| Carbonate de sodium | Sigma-Aldrich | S5761 | Tampon d’équilibre pour hydroxyde de |
| sodium | Sigma-Aldrich | 58045 | Piège le CO2 pendant le dosage de l’oléate |
| de sodiumSANTA CRUZ | SC-215879 | BSA préparation d’acides gras conjugués | |
| Filtration sous vide 1000 | TPP | 99950 | Filtre cMEM&alpha ; |
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