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Article de méthode

Purification biochimique et caractérisation protéomique des noyaux de fibrilles amyloïdes du cerveau

3.3K vues

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DOI :

10.3791/63816

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28 avril 2022

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Dans cet article

Résumé

Cette méthode de purification biochimique avec analyse protéomique basée sur la spectrométrie de masse facilite la caractérisation robuste des noyaux de fibrilles amyloïdes, ce qui peut accélérer l’identification de cibles pour la prévention de la maladie d’Alzheimer.

Résumé

Les inclusions fibrillaires protéiques sont des caractéristiques pathologiques clés de multiples maladies neurodégénératives. Dans les premiers stades de la maladie d’Alzheimer (MA), les peptides bêta-amyloïdes forment des protofibrilles dans l’espace extracellulaire, qui agissent comme des graines qui se développent progressivement et mûrissent en grandes plaques amyloïdes. Malgré cette compréhension de base, les connaissances actuelles sur la structure, la composition et les modèles de dépôt des fibrilles amyloïdes dans le cerveau sont limitées. Une barrière majeure a été l’incapacité d’isoler les fibrilles amyloïdes hautement purifiées des extraits de cerveau. Des approches basées sur la purification par affinité et la capture laser par microdissection ont déjà été utilisées pour isoler les amyloïdes, mais sont limitées par la petite quantité de matériau qui peut être récupérée. Ce nouveau protocole robuste décrit la purification biochimique des noyaux de plaque amyloïde à l’aide de la solubilisation au dodécylsulfate de sodium (SDS) avec ultracentrifugation et ultrasons du gradient de densité de saccharose et donne des fibrilles très pures de patients atteints de MA et de tissus cérébraux modèles de DA. L’analyse protéomique ascendante basée sur la spectrométrie de masse (SEP) du matériau purifié représente une stratégie robuste pour identifier presque tous les composants protéiques primaires des fibrilles amyloïdes. Des études protéomiques antérieures sur les protéines de la couronne amyloïde ont révélé une collection de protéines étonnamment grande et fonctionnellement diversifiée. Notamment, après avoir affiné la stratégie de purification, le nombre de protéines co-purifiantes a été réduit de plus de 10 fois, ce qui indique la grande pureté du matériau insoluble isolé SDS. La coloration négative et la microscopie électronique immuno-or ont permis de confirmer la pureté de ces préparations. D’autres études sont nécessaires pour comprendre les attributs spatiaux et biologiques qui contribuent au dépôt de ces protéines dans les inclusions amyloïdes. Dans l’ensemble, cette stratégie analytique est bien positionnée pour améliorer la compréhension de la biologie amyloïde.

Introduction

L’amyloïde est un arrangement supramoléculaire extrêmement stable que l’on trouve dans un panel diversifié de protéines, dont certaines conduisent à des changements pathologiques1. L’accumulation d’agrégats amyloïdes intra- ou extracellulaires est observée dans plusieurs maladies neurodégénératives2. Les agrégats amyloïdes sont hétérogènes et sont enrichis d’un grand nombre de protéines et de lipides3. Au cours des dernières années, l’intérêt pour le protéome amyloïde a suscité un intérêt considérable parmi les neuroscientifiques de base et translationnels. Plusieurs méthodes ont été mises au poin....

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Protocole

Ce protocole implique l’utilisation de tissus cérébraux humains ou vertébrés. Toutes les recherches ont été effectuées conformément aux directives institutionnelles approuvées par l’Université Northwestern. Le flux de travail actuel est normalisé à l’aide d’extraits corticaux du cerveau de souris et de la région cérébrale de l’hippocampe APP-knock in (App NL-G-F/NL-G-F)11. Ce protocole a été optimisé pour les extraits de cerveau de souris âgées de 6 à 9 mois, et il peut purifier efficacement les amyloïdes des animaux mâles et femelles.

REMARQUE : Pour une meilleure compréhension de la procédure ex....

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Résultats

Ici, une méthode détaillée pour l’isolement et la purification des fibrilles amyloïdes à l’aide d’une méthode modifiée de purification par ultracentrifugation par gradient de densité de saccharose est résumée (voir la figure 1). L’innovation dans cette méthode est l’inclusion d’étapes de lavage par ultrasons à l’aide d’un système de sonication au bain-marie suivi d’une solubilisation SDS, qui élimine de nombreuses protéines faiblement associées des fibrilles amyloïdes qui co-purifient avec l.......

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Discussion

Développer une compréhension claire de la structure et de la composition amyloïdes est difficile pour les biologistes structuraux et les biochimistes en raison des complexités biologiques et des limites expérimentales dans l’extraction des fibrilles purifiées des tissus cérébraux de laMA 16,17. Les fibrilles amyloïdes sont polymorphes au niveau moléculaire, montrant une population hétérogène de longueurs et de complexités variables18,19

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par la subvention niH R01AG061865 à R.J.V. et J.N.S. Les auteurs remercient les membres du groupe de recherche Vassar et Savas de l’Université Northwestern pour leurs discussions réfléchies. Nous remercions également sincèrement dr(s). Ansgar Seimer et Ralf Langen de l’Université de Californie du Sud pour leur contribution cruciale. Nous remercions le Dr Farida Korabova pour la préparation des échantillons et l’imagerie par microscopie électronique à coloration négative au Northwestern University Center for Advanced Microscopy.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Acclaim PepMap 100 C18 Colonne HPLC 0,075 mm x 20  ; mmThermo Scientific164535D’autres instruments, produits chimiques et anticorps d’autres fabricants peuvent être utilisés
Bicarbonate d’ammoniumSigma-Aldrich9830
Anticorps anti-amyloïde bêta (1-16) 6E10Biolegend803001
Bêta-amyloïde (17-24) Anticorps 4G8Biolegend800701
bêta-amyloïde (N terminus 82E1) anticorpsIBL America10323
anticorps LOC anti-fibrille amyloïde  ; EMD MilliporeAB2287
BCA kitThermo Fisher Scientific23225
Bioruptor Pico PlusDiagenodeB01020001
Chlorure de CalciumSigma-Aldrich  ; C1016
CollagénaseSigma-AldrichC0130
Complète  ; Cocktail d’inhibiteurs de protéaseSigma-Aldrich11697498001
Dnase IThermo Fisher ScientificEN0521
EDTASigma-AldrichEDS
Chlorhydrate de guanidineSigma-AldrichG4505
HyperSep C18 CartouchesThermo Fisher Scientific60108-302
Pipeline de protéomique intégrée - IP2  ;http://www.integratedproteomics.com/
Iodoacétamide (IAA)Sigma-AldrichI1149
K54 Système d’homogénéisation tissulaire MotorCole ParmerGlas-Col 099C
MaxQuanthttps://www.maxquant.org/
Micro BCA kitThermo Fisher Scientific23235
Nanoviper 75 &mu ; m x 50  ; cmThermo Scientific164942
Optima L-90K UltracentrifugeuseBeckman CoulterBR-8101P-E
Orbitrap Fusion TribridSpectromètre de masseThermo ScientificIQLAAEGAAPFADBMBCX
Pierce C18 Spin ColumnsThermo Fisher Scientific89870
Precellys 24 Homogénéisateur de tissusBertin InstrumentsP000062-PEVO0-A
ProteaseMAX(TM) Surfactant Trypsin EnhancerPromegaV2072
RawConverterhttp://www.fields.scripps.edu/rawconv/
Azoture de sodiumVWR97064-646
Dodécylsulfate de sodium (SDS)Sigma-Aldrich74255
Sorvall Legend Micro 21R MicrocentrifugeuseThermo Fisher ScientificConcentrateur sous
vide 75002446 SpeedLabconco7315021
Tris-2-carboxyéthylphosphine (TCEP)Sigma-AldrichC4706-2G
Tris-HClThermo Fisher Scientific15568025
Trypsin Gold-Mass spec gradePromegaV5280
UltiMate 3000 RSLCnano SystemThermo Scientific
ULTIM3000RSLCNANO

Références

  1. Willbold, D., Strodel, B., Schröder, G. F., Hoyer, W., Heise, H. Amyloid-type protein aggregation and prion-like properties of amyloids. Chemical Reviews. 121 (13), 8285-8307 (2021).
  2. Rambaran, R. N., Serpell, L. C. Amyloid fibrils: abnormal protein assembly. Prion. 2 (3), 112....

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Réimpressions et autorisations

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