Summary

Échafaudages 3D macroporeux interconnectés à partir de tiges de microgel

Published: June 16, 2022
doi:

Summary

Les tiges de microgel avec des groupes réactifs complémentaires sont produites via la microfluidique avec la capacité de s’interconnecter en solution aqueuse. Les microgels anisométriques se coincent et s’interconnectent en constructions stables avec des pores plus grands par rapport aux systèmes sphériques. Les microgels modifiés avec GRGDS-PC forment des constructions 3D macroporeuses qui peuvent être utilisées pour la culture cellulaire.

Abstract

Un système à deux composants de microgels fonctionnalisés issus de la microfluidique permet une interconnexion rapide dans des constructions macroporeuses 3D dans des solutions aqueuses sans autres additifs. La gélification continue sur puce photoinitiée permet de faire varier le rapport d’aspect du microgel, ce qui détermine les propriétés des blocs de construction pour les constructions obtenues. Les monomères de méthacrylate de glycidyle (GMA) ou de méthacrylate de 2-aminoéthyle (AMA) sont copolymérisés dans le réseau de microgels à base de polymères étoilés de polyéthylèneglycol (PEG) pour obtenir une fonctionnalité époxy ou amine. Un flux d’huile de focalisation est introduit dans la structure de sortie microfluidique pour assurer une collecte continue des tiges de microgel fonctionnalisées. Sur la base d’une publication récente, les constructions à base de tiges de microgel entraînent des pores plus grands de plusieurs centaines de micromètres et, en même temps, conduisent à une stabilité globale plus élevée de l’échafaudage par rapport à un modèle sphérique. De cette façon, il est possible de produire des constructions à volume plus élevé avec plus de volume libre tout en réduisant la quantité de matériau nécessaire. Les échafaudages macroporeux interconnectés peuvent être ramassés et transportés sans dommage ni désintégration. Les groupes amine et époxy non impliqués dans l’interconnexion restent actifs et peuvent être utilisés indépendamment pour la post-modification. Ce protocole décrit une méthode optimisée pour la fabrication de tiges de microgel pour former des échafaudages macroporeux interconnectés qui peuvent être utilisés pour des expériences cellulaires ultérieures.

Introduction

Pour étudier le comportement coopératif complexe des cellules dans les constructions 3D, les plates-formes d’échafaudage doivent montrer des performances constantes en termes de reproductibilité, avoir une géométrie appropriée pour la migration cellulaire et, en même temps, permettre une certaine flexibilité en termes d’altération des paramètres pour étudier leur influence sur le tissu vivant1. Au cours des dernières années, le concept de particules recuites macroporeuses (MAP), décrit pour la première fois par Segura et al., s’est développé en une plate-forme efficace et polyvalente pour la production d’échafaudages 3D2. La composition sur mesure des microgels, qui sont les éléments constitutifs de l’échafaudage 3D final, prédéfinit des propriétés telles que la rigidité de la construction, la réactivité chimique sélective du réseau de gel et la taille finale des pores de l’échafaudage 2,3,4,5,6. Les peptides adhésifs cellulaires en tant que signaux pour les interactions échafaudage-cellule sont incorporés dans le réseau polymère des microgels pour permettre la fixation cellulaire et peuvent être modifiés pour étudier leurs effets spécifiques sur les cellules en culture. Les échafaudages 3D sont stabilisés par interconnexion des microgels injectables recuits grâce à des liaisons covalentes ou supramoléculaires, ce qui donne des constructions robustes et définies pour la culture cellulaire 2,3,5,7,8.

La microfluidique s’est imposée comme l’une des méthodes les plus précises et les plus adaptables pour la préparation d’hydrogels granulaires définis9. La possibilité de produire de plus grandes quantités des blocs de construction requis dans un processus continu tout en maintenant leur monodispersité chimique, mécanique et physique contribue considérablement à la pertinence de ce processus. De plus, la taille et la forme des microgels produits peuvent être manipulées par diverses méthodes telles que les émulsions discontinues, la microfluidique, la lithographie, la pulvérisation électrodynamique ou la fragmentation mécanique, qui déterminent la géométrie des blocs de construction et, par conséquent, la structure 3D de l’échafaudage final 1,10.

Récemment, le concept d’échafaudages 3D macroporeux composés de tiges de microgel fonctionnalisées qui s’interconnectent rapidement dans des solutions aqueuses sans autres additifs a été rapporté11. L’anisotropie des tiges de microgel a entraîné des porosités et des distributions de pores plus élevées avec des tailles de pores plus grandes par rapport à l’utilisation de microgels sphériques dans cette étude11. De cette façon, moins de matériau crée des pores plus grands avec une variété de géométries de pores différentes tout en maintenant la stabilité de l’échafaudage 3D. Le système se compose de deux types de tiges de microgel avec des groupes fonctionnels primaires complémentaires d’amine et d’époxy qui sont consommés dans la réaction d’interconnexion lorsqu’ils entrent en contact les uns avec les autres. Les groupes fonctionnels qui ne participent pas au processus d’interconnexion restent actifs et peuvent être utilisés pour une post-modification sélective avec des peptides adhésifs cellulaires ou d’autres facteurs bioactifs. Les cellules fibroblastiques se fixent, se propagent et prolifèrent lorsqu’elles sont cultivées à l’intérieur des échafaudages 3D, se développant d’abord sur la surface du microgel et remplissant la plupart des macropores après 5 jours. Une étude préliminaire de co-culture de fibroblastes humains et de cellules endothéliales veineuses ombilicales humaines (HUVEC) a montré des résultats prometteurs pour la formation de structures en forme de vaisseaux dans les échafaudages 3D interconnectés11.

Protocol

1. Matériel et préparations nécessaires pour la microfluidique Pour la procédure microfluidique décrite, utiliser des seringues en verre de 1 mL et 5 mL et des pousse-seringues. La formation de gouttelettes sur puce est observée à l’aide d’un microscope inversé équipé d’une caméra à haute vitesse. Créer la conception de la puce microfluidique (Figure 1B) à l’aide d’un logiciel de conception assistée par ordinateur et produire un g…

Representative Results

Figure 2 : Structure d’échafaudage macroporeux réticulé. (A) Projection 3D d’une pile Z de microscopie confocale de 500 μm de l’échafaudage macroporeux interconnecté. La barre d’échelle représente 500 μm. (B) Échafaudage interconnecté composé de ~10 000 tiges de microgel sur un verre de couvertur…

Discussion

L’une des étapes critiques de ce protocole est la qualité du méthacrylate de 2-aminoéthyle (AMA) utilisé comme comonomère pour la fonctionnalisation des amines primaires. L’AMA doit être une poudre à grain fin et de préférence incolore livrée dans un récipient en verre brun étanche aux gaz. Il faut éviter d’utiliser un matériau verdâtre et grumeleux, car il altère considérablement la réaction de gélification et affecte négativement la reproductibilité des résultats. En cas de mauvaise gélifi…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous exprimons notre gratitude aux coauteurs de nos travaux précédents sur lesquels cette méthodologie est basée, Céline Bastard, Luis P. B. Guerzoni, Yonca Kittel, Rostislav Vinokur, Nikolai Born et Tamás Haraszti. Nous remercions la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) pour son financement dans le cadre des projets B5 et C3 SFB 985 « Microgels fonctionnels et systèmes de microgels ». Nous reconnaissons le financement du Comité sénatorial de la concurrence de Leibniz (SAW) dans le cadre du Professorinnenprogramm (SAW-2017-PB62: BioMat). Nous reconnaissons sincèrement le financement de la Commission européenne (EUSMI, 731019). Ces travaux ont été réalisés en partie au Center for Chemical Polymer Technology (CPT), soutenu par l’UE et le Land de Rhénanie-du-Nord-Westphalie (subvention EFRE 30 00 883 02).

Materials

ABIL EM 90 Evonik 144243-53-8 non-ionic surfactant
2-Aminoethyl methacrylate hydrochloride TCI Chemicals A3413 >98.0%(T)(HPLC)
8-Arm PEG-acrylate 20 kDa Biochempeg Scientific Inc. A88009-20K ≥ 95 %
AutoCAD 2019 Autodesk computer-aided design (CAD) software; modeling of microfluidic designs
CHROMAFIL MV A-20/25 syringe filter CHROMAFILCarl Roth GmbH+Co.KG XH49.1 pore size 0.20 µm; Cellulose Mixed Esters (MV)
Cover glass Marienfeld-Superior type No. 1
EMS Swiss line core sampling tool 0.75 mm Electron Microscopy Sciences 0.77 mm inner diameter, 1.07 mm outer diameter
Ethanol absolut VWR Chemicals
FL3-U3-13Y3M 150 FPS series high-speed camera FLIR Systems
Fluoresceinamine isomer I Sigma-Aldrich 201626
Fluorescein isothiocyanate Thermo Fisher Scientific 46424
25G x 5/8’’ 0,50 x 16 mm needles BD Microlance 3
Glycidyl methacrylate Sigma-Aldrich 779342 ≥97.0% (GC)
GRGDS-PC CPC Scientific FIBN-015A
Hamilton 1000 Series Gastight syringes Thermo Fisher Scientific 10772361/10500052 PFTE Luer-Lock
Hexane Sigma-Aldrich 1,04,367
Lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate Sigma-Aldrich 900889 ≥95 %
Motic AE2000 trinocular microscope Ted Pella, Inc. 22443-12
Novec 7100 Sigma-Aldrich SHH0002
Oil Red O Sigma-Aldrich O9755
Paraffin VWR Chemicals 24679320
Pavone Nanoindenter Platform Optics11Life
Phosphate buffered saline Thermo Fisher Scientific AM9624
Polyethylene Tubing 0.38×1.09mm medical grade dropletex ID 0.38 mm OD 1.09 mm
2-Propanol Sigma-Aldrich 190764 ACS reagent, ≥99.5%
Protein LoBind Tubes Eppendorf 30108132
Pump 11 Pico Plus Elite Programmable Syringe Pump Harvard Apparatus
RPMI 1640 medium Gibco 11530586
SYLGARD 184 silicone elastomer kit Dow SYLGARD 634165S
Trichloro-(1H,1H,2H,2H-perfluoroctyl)-silane Sigma-Aldrich 448931
UVC LED sterilizing box UVLED Optical Technology Co., Ltd. 9S SZH8-S2

References

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Citer Cet Article
Rommel, D., Vedaraman, S., Mork, M., De Laporte, L. Interlinked Macroporous 3D Scaffolds from Microgel Rods. J. Vis. Exp. (184), e64010, doi:10.3791/64010 (2022).

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