Summary

En rørledning til undersøgelse af strukturer og signalveje for sphingosin-1-phosphatreceptorer

Published: June 08, 2022
doi:

Summary

S1P udøver sine forskellige fysiologiske virkninger gennem S1P-receptorer (S1PRs) underfamilien. Her beskrives en rørledning for at forklare strukturerne og funktionen af S1PR’er.

Abstract

Lysophospholipider (LPL’er) er bioaktive lipider, der inkluderer sphingosin-1-phosphat (S1P), lysophosphatidinsyre osv. S1P, et metabolisk produkt af sphingolipider i cellemembranen, er en af de bedst karakteriserede LPL’er, der regulerer en række cellulære fysiologiske reaktioner via signalveje medieret af sphingosin-1-phosphatreceptorer (S1PR’er). Dette implicerede, at S1P-S1PRs signalsystem er et bemærkelsesværdigt potentielt terapeutisk mål for lidelser, herunder multipel sklerose (MS), autoimmune lidelser, kræft, betændelse og endda COVID-19. S1PR’er, en lille delmængde af klasse A G-proteinkoblet receptor (GPCR) familien, består af fem undertyper: S1PR1, S1PR2, S1PR3, S1PR4 og S1PR5. Manglen på detaljerede strukturelle oplysninger hindrer imidlertid lægemiddelopdagelsen rettet mod S1PR’er. Her anvendte vi kryo-elektronmikroskopimetoden til at løse strukturen af S1P-S1PRs-komplekset og belyste mekanismen for aktivering, selektiv lægemiddelgenkendelse og G-proteinkobling ved hjælp af cellebaserede funktionelle assays. Andre lysophospholipidreceptorer (LPLR’er) og GPCR’er kan også undersøges ved hjælp af denne strategi.

Introduction

Sphingosin-1-phosphat (S1P), et metabolisk produkt af sphingolipider i cellemembranen, er et allestedsnærværende lysophosphatid signalmolekyle, der involverer forskellige biologiske aktiviteter, herunder lymfocythandel, vaskulær udvikling, endotelintegritet og puls 1,2,3. S1P udøver sine forskellige fysiologiske virkninger gennem fem S1P-receptorundertyper (S1PR’er 1-5); S1PR’er findes i en række væv og udviser unikke præferencer for downstream G-proteiner 4,5. S1PR1 er primært koblet med Gi-proteinet, som efterfølgende hæmmer cAMP-produktionen; S1PR2 og S1PR3 er koblet med Gi, Gq og G12/13, og S1PR4 og S1PR5 transduce signal gennem Gi og G12/136.

S1P-S1PR-signalering er et kritisk terapeutisk mål for flere sygdomme, herunder autoimmune lidelser7, betændelse8, kræft9 og endda COVID-1910. I 2010 blev fingolimod (FTY720) licenseret som et førsteklasses lægemiddel rettet mod S1PR’er til behandling af tilbagefald multipel sklerose (MS)11. Det er imidlertid i stand til at binde til alle S1PR’er undtagen S1PR2, mens uspecifik binding til S1PR3 resulterer i ødem i hjernebarken, vaskulær og bronchial indsnævring og lungeepitellækage12. Som en alternativ strategi til at øge terapeutisk selektivitet er subtypespecifikke ligander til receptoren blevet produceret. Siponimod (BAF312) blev godkendt i 2019 til behandling med tilbagefald af MS13; det er effektivt rettet mod S1PR1 og S1PR5, mens det ikke har nogen affinitet for S1PR3 og udviser færre bivirkninger i klinisk praksis14. I 2020 godkendte den amerikanske Food and Drug Administration ozanimod til MS-terapi15. Det er blevet rapporteret, at ozanimod har en 25 gange større selektivitet for S1PR1 end for S1PR516. Især i forbindelse med den nuværende COVID-19-pandemi er det blevet opdaget, at agonistlægemidler rettet mod S1PR’er kan bruges til behandling af COVID-19 ved hjælp af immunmodulerende terapiteknikker17. I sammenligning med fingolimod har ozanimod vist overlegenhed med hensyn til at sænke symptomer hos COVID-19-patienter og gennemgår nu kliniske forsøg10. Forståelse af det strukturelle grundlag og funktionen af S1PR’er lægger et væsentligt fundament for at udvikle et lægemiddel, der selektivt er målrettet mod S1PR’er18.

Mange teknikker bruges til at undersøge de strukturelle oplysninger om biomacromolecules, herunder røntgenkrystallografi, nuklear magnetisk resonans (NMR) og elektronmikroskopi (EM). Fra marts 2022 er der mere end 180.000 strukturer deponeret på Protein Databank (PDB), og de fleste af dem er blevet løst ved røntgenkrystallografi. Men med den første næsten-atomare opløsningsstruktur af TPRV1 (3.4 Å-opløsning) rapporteret af Yifan Cheng og David Julius i 201319 er kryo-elektronmikroskopi (cryo-EM) blevet en almindelig teknik til proteinstrukturer, og det samlede antal EM PDB-strukturer var mere end 10.000. De kritiske gennembrudsområder er udviklingen af nye kameraer til billeddannelse kendt som direkte elektrondetekteringskameraer og nye billedbehandlingsalgoritmer. Cryo-EM har revolutioneret strukturbiologi og strukturbaseret lægemiddelopdagelse i det sidste årti20. Da forståelse af, hvordan makromolekylære komplekser opfylder deres komplicerede roller i den levende celle, er et centralt tema i biologiske videnskaber, har cryo-EM potentialet til at afsløre konformationer af dynamiske molekylære komplekser, især for transmembranproteiner21. G-protein koblede receptorer (GPCR’er) er den største superfamilie af transmembranproteiner og målene for mere end 30% af de aktuelt markedsførte lægemidler22. Udviklingen af cryo-EM har bidraget til et udbrud af højopløsningsstrukturer af GPCR-G-proteinkomplekser, hvilket muliggør strukturel bestemmelse for ‘uhåndterlige’ mål, der stadig ikke er tilgængelige for røntgenkrystallografisk analyse i lægemiddeldesign23. Derfor giver cryo-EM-applikationen en chance for at bestemme den tredimensionelle struktur af GPCR’er under næsten indfødte forhold ved tæt på atomopløsning24. Fremskridt inden for cryo-EM gør det muligt at visualisere mekanistiske underlag for GPCR-stimulering eller -hæmning og yderligere fordele ved at afdække de nye bindingssteder for GPCR-målrettet lægemiddelskabelse25.

Baseret på de enorme fremskridt inden for cryo-EM-teknologi har vi identificeret strukturer af forpinte S1PR1-, S1PR3- og S1PR5-Gi-signalkomplekser for nylig26,27. Hos mennesker findes S1PR’er i forskellige væv og udviser unikke præferencer for downstream G-proteiner 4,5. S1PR1 er primært kombineret med Gi-proteinet, som efterfølgende hæmmer produktionen af 3′,5′-cyklisk adenosinmonophosphat (cAMP). S1PR3 og S1PR5 er også i stand til at koble med Gi 6,28. Da Gi-koblet receptoraktivering nedsætter produktionen af cAMP29, blev der introduceret et Gi-hæmning cAMP-assay til måling af cAMP-hæmningseffekter til indfangning af funktionelle ændringer26,27. Ved hjælp af en mutant version af Photinus pyralis luciferase, hvor en cAMP-bindende proteindel er indsat, tilbyder dette cAMP-assay en enkel og pålidelig metode til overvågning af GPCR-aktivitet gennem ændringer i intracellulær cAMP-koncentration30. Det er et følsomt og ikke-radioaktivt funktionelt assay og kan anvendes til at overvåge realtids downstream-signalering af en lang række GPCR’er til lægemiddelopdagelsesformål31.

Her gives et resumé af de kritiske metoder til løsning af aktiverings- og lægemiddelgenkendelsesmetoderne for S1PR’er, primært inklusive kryo-EM-manipulationer og et Gi-hæmnings-cAMP-assay. Denne artikel har til formål at give omfattende eksperimentel vejledning til yderligere udforskninger af GPCR’ernes strukturer og funktioner.

Protocol

1. Oprensning af S1PRs-G proteinkompleks For at rense det humane S1PRs-G-proteinkompleks klones cDNA’erne for S1PR1, der mangler C-terminale rester 338-382, vildtypen S1PR3, S1PR5 afkortet med 345-398 ved C-endestation, og vildtype Gi1 i pFastBac1-vektoren og cDNA’erne for vildtype Gβ1 og Gγ2 i pFastBacdual-vektoren (Materialetabel).BEMÆRK: Alle konstruktioner til S1PR’er indeholder også hæmagglutinin (HA) signalsekvens efterfulgt af et Flag epitope tag ved N-terminale…

Representative Results

Før frysning af prøven af S1PRs-Gi-komplekset skal den rensede prøve adskilles ved størrelsesekskluderingskromatografi (SEC) og analyseres med gelfiltreringskromatografi. Figur 2 viser S1PR3-Gi-komplekset som et eksempel. Topfraktionen af det homogene GPCR-G-proteinkompleks var sædvanligvis placeret ved ~ 10,5 ml af størrelsesekskluderingskromatografien (figur 2A). SDS-sideanalyse af S1PR3-Gi-komplekset (figur 2B) afslører fi…

Discussion

Denne protokol beskriver en primær rørledning til bestemmelse af strukturerne af S1PR’er ved kryo-EM og måling af aktiveringsstyrken af S1PR’er ved Gi-medieret cAMP-hæmningsassay. Nogle trin er afgørende for eksperimentets succes.

For at rense S1PRs-Gi-komplekset bør virusets kvalitet og sf9-cellernes sundhed lægges større vægt på. Ekspressionen af receptoren reduceres dramatisk i dårlige sf9-celler . Sf9-cellernes sundhed blev vurderet ved at måle deres …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dataene fra S1PRs-Gi-komplekset blev høstet på West China Cryo-EM Center i Sichuan University og Cryo-EM Center ved Southern University of Science and Technology (SUSTech) og behandlet på Duyu High-Performance Computing Center i Sichuan University. Dette arbejde blev støttet af Natural Science Foundation of China (32100965 til L.C., 32100988 til W.Y., 31972916 til ZS) og fuldtids postdoc-forskningsfond ved Sichuan University (2021SCU12003 til L.C.)

Materials

0.05% trypsin-EDTA GIBCO Cat# 25300054
0.22 µM filter Thermo Fisher Scientific Cat# 42213-PS
100 kDa cut-off concentrator Thermo Fisher Scientific Cat# 88533
6-well plate Corning Cat# 43016
96-well plate Corning Cat# 3917
Aprotinin Sigma-Aldrich Cat# 9087-70-1
Apyrase NEB Cat# M0398S
Baculovirus transfection reagent Thermo Fisher Scientific Cat# 10362100 For the preparation of P0 baculovirus
Benzamidine Sigma-Aldrich Cat# B6506
CHO-K1 ATCC N/A
CHS Sigma-Aldrich Cat# C6512
CryoSPARC Punjani, A., et al.,2017 https://cryosparc.com/
DH5α competent E.coli Thermo Fisher Scientific Cat# EC0112
D-Luciferin-Potassium Salt Sigma- Aldrich Cat# 50227
DMSO Sigma- Aldrich Cat# D2438
EDTA Thermo Fisher Scientific Cat# S311-500
ESF921 cell culture medium Expression Systems Cat#  96-001
Excel microsoft N/A
F12 medium Invitrogen Cat# 11765
FBS Cell Box Cat# SAG-01U-02
Flag resin Sigma- Aldrich Cat# A4596
Forskolin APExBIO Cat# B1421
Gctf Zhang, 2016  https://www.mrc-lmb.cam.ac.uk/kzhang/Gctf/
GDN Anatrace Cat# GDN101
Gel filtration column GE healthcare Cat# 28990944
Gen5 3.11 BIO-TEK N/A
Gentamicin Solarbio Cat# L1312
GloSensor cAMP assay kit Promega Cat# E1291 Gi-inhibition cAMP assay kit
GloSensor plasmid Promega Cat# E2301 Sensor plasmid
Grace’s medium GIBCO Cat# 11595030
GraphPad Prism 8 Graphpad N/A
HBSS Thermo Fisher Scientific Cat# 88284
HEPES Sigma- Aldrich Cat# H4034
jetPRIME Reagent Polyplus Transfection Cat# 114-15 transfection reagent
Janamycin Solarbio Cat# K1030
LB medium Invitrogen Cat# 12780052
Leupeptin Sigma-Aldrich Cat# L2884
LMNG Anatrace Cat# NG310
MotionCor2 (Zheng et al., 2017) https://emcore.ucsf.edu/ucsf-software
NanoCab Thermo Fisher Scientific Cat# 1121822
PBS Invitrogen Cat# 14190-144
pcDNA3.1-HA-FLAG-S1PRs GenScript N/A
pFastBac1-Gαi GenScript N/A
pFastBac1-HA-FLAG-T4L-S1PRs-His10 GenScript N/A
pFastBacdual-Gβ1γ2 GenScript N/A
PureLink HiPure Plasmid Miniprep Kit Invitrogen Cat# K210003 For the preparation of plasmids and P0 baculovirus
Q5 site-Directed Mutagenesis kit NEB Cat# E0554S For the preparation of plasmids
Quantifoil Quantifoil Cat# 251448
RELION-3.1 (Zivanov et al., 2018) https://www2.mrc-lmb.cam.ac.uk/relion
S1PRs cDNA addgene N/A
scFv16 Invitrogen Cat# 703976
Sf9 Expression Systems N/A
Siponimod Selleck Cat# S7179
sodium cholate Sigma-Aldrich Cat# C1254
Synergy H1 microplate reader BIO-TEK N/A
Synthetic T4L DNA (sequence) N/A N/A Aacatcttcgagatgctgcgcatcgacgaagg
cctgcgtctcaagatttacaagaataccgaagg
ttattacacgattggcatcggccacctcctgaca
aagagcccatcactcaacgctgccaagtctga
actggacaaagccattggtcgcaacaccaac
ggtgtcattacaaaggacgaggcggagaaac
tcttcaaccaagatgtagatgcggctgtccgtgg
catcctgcgtaatgccaagttgaagcccgtgt
atgactcccttgatgctgttcgccgtgcagcctt
gatcaacatggttttccaaatgggtgagaccgg
agtggctggttttacgaactccctgcgcatgctcc
agcagaagcgctgggacgaggccgcagtga
atttggctaaatctcgctggtacaatcagacacc
taaccgtgccaagcgtgtcatcactaccttccg
tactggaacttgggacgcttac
TCEP Thermo Fisher Scientific Cat# 77720
Tetracycline Solarbio Cat# T8180
Vitrobot Mark IV Thermo Fisher Scientific N/A

References

  1. Verstockt, B., et al. Sphingosine 1-phosphate modulation and immune cell trafficking in inflammatory bowel disease. Nature Reviews: Gastroenterology & Hepatology. , 1-16 (2022).
  2. Rosen, H., Stevens, R. C., Hanson, M., Roberts, E., Oldstone, M. B. Sphingosine-1-phosphate and its receptors: structure, signaling, and influence. Annual Review of Biochemistry. 82, 637-662 (2013).
  3. Cartier, A., Hla, T. Sphingosine 1-phosphate: Lipid signaling in pathology and therapy. Science. 366 (6463), 5551 (2019).
  4. Jozefczuk, E., Guzik, T. J., Siedlinski, M. Significance of sphingosine-1-phosphate in cardiovascular physiology and pathology. Pharmacological Research. 156, 104793 (2020).
  5. Kihara, Y., Maceyka, M., Spiegel, S., Chun, J. Lysophospholipid receptor nomenclature review: IUPHAR Review 8. British Journal of Pharmacology. 171 (15), 3575-3594 (2014).
  6. Bryan, A. M., Del Poeta, M. Sphingosine-1-phosphate receptors and innate immunity. Cellular Microbiology. 20 (5), 12836 (2018).
  7. Pelletier, D., Hafler, D. A. Fingolimod for multiple sclerosis. New England Journal of Medicine. 366 (4), 339-347 (2012).
  8. Obinata, H., Hla, T. Sphingosine 1-phosphate and inflammation. International Immunology. 31 (9), 617-625 (2019).
  9. Pyne, N. J., Pyne, S. Sphingosine 1-phosphate and cancer. Nature Reviews: Cancer. 10 (7), 489-503 (2010).
  10. Abu-Farha, M., et al. The role of lipid metabolism in COVID-19 virus infection and as a drug target. International Journal of Molecular Sciences. 21 (10), 3544 (2020).
  11. Chun, J., Kihara, Y., Jonnalagadda, D., Blaho, V. A. Fingolimod: lessons learned and new opportunities for treating Multiple Sclerosis and other disorders. Annual Review of Pharmacology and Toxicology. 59, 149-170 (2019).
  12. Murakami, A., et al. Sphingosine 1-phosphate (S1P) regulates vascular contraction via S1P3 receptor: investigation based on a new S1P3 receptor antagonist. Molecular Pharmacology. 77 (4), 704-713 (2010).
  13. Cao, L., et al. Siponimod for multiple sclerosis. Cochrane Database of Systematic Reviews. 11, (2021).
  14. Scott, L. J. Siponimod: a review in secondary progressive Multiple Sclerosis. CNS Drugs. 34 (11), 1191-1200 (2020).
  15. Lamb, Y. N. Ozanimod: first approval. Drugs. 80 (8), 841-848 (2020).
  16. Scott, F. L., et al. Ozanimod (RPC1063) is a potent sphingosine-1-phosphate receptor-1 (S1P1) and receptor-5 (S1P5) agonist with autoimmune disease-modifying activity. British Journal of Pharmacology. 173 (11), 1778-1792 (2016).
  17. McGowan, E. M., Haddadi, N., Nassif, N. T., Lin, Y. Targeting the SphK-S1P-SIPR pathway as a potential therapeutic approach for COVID-19. International Journal of Molecular Sciences. 21 (19), 7189 (2020).
  18. O’Sullivan, C., Dev, K. K. The structure and function of the S1P1 receptor. Trends in Pharmacological Sciences. 34 (7), 401-412 (2013).
  19. Liao, M., Cao, E., Julius, D., Cheng, Y. Structure of the TRPV1 ion channel determined by electron cryo-microscopy. Nature. 504 (7478), 107-112 (2013).
  20. Bai, X. C., McMullan, G., Scheres, S. H. How cryo-EM is revolutionizing structural biology. Trends in Biochemical Sciences. 40 (1), 49-57 (2015).
  21. Murata, K., Wolf, M. Cryo-electron microscopy for structural analysis of dynamic biological macromolecules. Biochimica et Biophysica Acta General Subjects. 1862 (2), 324-334 (2018).
  22. Zhang, M., et al. Cryo-EM structure of an activated GPCR-G protein complex in lipid nanodiscs. Nature Structural & Molecular Biology. 28 (3), 258-267 (2021).
  23. Renaud, J. P., et al. Cryo-EM in drug discovery: achievements, limitations and prospects. Nature Reviews: Drug Discovery. 17 (7), 471-492 (2018).
  24. Ishchenko, A., Gati, C., Cherezov, V. Structural biology of G protein-coupled receptors: new opportunities from XFELs and cryoEM. Current Opinion in Structural Biology. 51, 44-52 (2018).
  25. Yang, D., et al. G protein-coupled receptors: structure- and function-based drug discovery. Signal Transduction and Targeted Therapy. 6 (1), 7 (2021).
  26. Yuan, Y., et al. Structures of signaling complexes of lipid receptors S1PR1 and S1PR5 reveal mechanisms of activation and drug recognition. Cell Research. 31 (12), 1263-1274 (2021).
  27. Zhao, C., et al. Structural insights into sphingosine-1-phosphate recognition and ligand selectivity of S1PR3-Gi signaling complexes. Cell Research. 32 (2), 218-221 (2022).
  28. Xu, Z., et al. Structural basis of sphingosine-1-phosphate receptor 1 activation and biased agonism. Nature Chemical Biology. 18, 281-288 (2022).
  29. Liu, Y. F., Ghahremani, M. H., Rasenick, M. M., Jakobs, K. H., Albert, P. R. Stimulation of cAMP synthesis by Gi-coupled receptors upon ablation of distinct Galphai protein expression. Gi subtype specificity of the 5-HT1A receptor. Journal of Biological Chemistry. 274 (23), 16444-16450 (1999).
  30. Buccioni, M., et al. Innovative functional cAMP assay for studying G protein-coupled receptors: application to the pharmacological characterization of GPR17. Purinergic Signalling. 7 (4), 463-468 (2011).
  31. Wang, F. I., Ding, G., Ng, G. S., Dixon, S. J., Chidiac, P. Luciferase-based GloSensor cAMP assay: Temperature optimization and application to cell-based kinetic studies. Methods. , (2021).
  32. Audet, M., et al. Small-scale approach for precrystallization screening in GPCR X-ray crystallography. Nature Protocols. 15 (1), 144-160 (2020).
  33. Sgro, G. G., Costa, T. R. D. Cryo-EM grid preparation of membrane protein samples for single particle analysis. Frontiers in Molecular Biosciences. 5, 74 (2018).
  34. White, J. B. R., et al. Single particle cryo-electron microscopy: from sample to structure. Journal of Visualized Experiments. (171), e62415 (2021).
  35. Thompson, R. F., Iadanza, M. G., Hesketh, E. L., Rawson, S., Ranson, N. A. Collection, pre-processing and on-the-fly analysis of data for high-resolution, single-particle cryo-electron microscopy. Nature Protocols. 14 (1), 100-118 (2019).
  36. Fernandez-Leiro, R., Scheres, S. H. W. A pipeline approach to single-particle processing in RELION. Acta Crystallographica Section D. 73 (6), 496-502 (2017).
  37. Punjani, A., Rubinstein, J. L., Fleet, D. J., Brubaker, M. A. cryoSPARC: algorithms for rapid unsupervised cryo-EM structure determination. Nature Methods. 14 (3), 290-296 (2017).
  38. Brilot, A. F., et al. Beam-induced motion of vitrified specimen on holey carbon film. Journal of Structural Biology. 177 (3), 630-637 (2012).
  39. Zheng, S. Q., et al. MotionCor2: anisotropic correction of beam-induced motion for improved cryo-electron microscopy. Nature Methods. 14 (4), 331-332 (2017).
  40. Zhang, K. Gctf: Real-time CTF determination and correction. Journal of Structural Biology. 193 (1), 1-12 (2016).
  41. Scheres, S. H. Semi-automated selection of cryo-EM particles in RELION-1.3. Journal of Structural Biology. 189 (2), 114-122 (2015).
  42. Liu, S., et al. Differential activation mechanisms of lipid GPCRs by lysophosphatidic acid and sphingosine 1-phosphate. Nature Communications. 13 (1), 731 (2022).
  43. Duan, J., et al. Cryo-EM structure of an activated VIP1 receptor-G protein complex revealed by a NanoBiT tethering strategy. Nature Communications. 11 (1), 4121 (2020).
  44. DiIorio, M. C., Kulczyk, A. W. A robust single-particle cryo-electron microscopy (cryo-EM) processing workflow with cryoSPARC, RELION, and Scipion. Journal of Visualized Experiments. (179), e63387 (2022).
  45. Pradelles, P., Grassi, J., Chabardes, D., Guiso, N. Enzyme immunoassays of adenosine cyclic 3′,5′-monophosphate and guanosine cyclic 3′,5′-monophosphate using acetylcholinesterase. Analytical Chemistry. 61 (5), 447-453 (1989).
  46. Jiang, L. I., et al. Use of a cAMP BRET sensor to characterize a novel regulation of cAMP by the sphingosine 1-phosphate/G13 pathway. Journal of Biological Chemistry. 282 (14), 10576-10584 (2007).
check_url/fr/64054?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Cheng, L., Su, L., Tian, X., Xia, F., Zhao, C., Yan, W., Shao, Z. A Pipeline to Investigate the Structures and Signaling Pathways of Sphingosine 1-Phosphate Receptors. J. Vis. Exp. (184), e64054, doi:10.3791/64054 (2022).

View Video