Summary

En rørledning for å undersøke strukturer og signalveier for sfingosin 1-fosfatreseptorer

Published: June 08, 2022
doi:

Summary

S1P utøver sine forskjellige fysiologiske effekter gjennom underfamilien S1P-reseptorer (S1PRs). Her beskrives en rørledning for å forklare strukturene og funksjonen til S1PRs.

Abstract

Lysofosfolipider (LPL) er bioaktive lipider som inkluderer sfingosin 1-fosfat (S1P), lysofosfatidinsyre, etc. S1P, et metabolsk produkt av sfingolipider i cellemembranen, er en av de best karakteriserte LPL-ene som regulerer en rekke cellulære fysiologiske responser via signalveier mediert av sfingosin 1-fosfatreseptorer (S1PRs). Dette impliserte at signalsystemet S1P-S1PRs er et bemerkelsesverdig potensielt terapeutisk mål for lidelser, inkludert multippel sklerose (MS), autoimmune lidelser, kreft, betennelse og til og med COVID-19. S1PRs, en liten delmengde av klasse A G-proteinkoblet reseptor (GPCR) familie, består av fem undertyper: S1PR1, S1PR2, S1PR3, S1PR4 og S1PR5. Mangelen på detaljert strukturell informasjon hindrer imidlertid narkotikaoppdagelsen rettet mot S1PR. Her brukte vi kryo-elektronmikroskopimetoden for å løse strukturen til S1P-S1PRs-komplekset, og belyste mekanismen for aktivering, selektiv legemiddelgjenkjenning og G-proteinkobling ved å bruke cellebaserte funksjonelle analyser. Andre lysofosfolipidreseptorer (LPLR) og GPCR kan også studeres ved hjelp av denne strategien.

Introduction

Sfingosin-1-fosfat (S1P), et metabolsk produkt av sfingolipider i cellemembranen, er et allestedsnærværende lysofosfatidisk signalmolekyl som involverer ulike biologiske aktiviteter, inkludert lymfocytthandel, vaskulær utvikling, endotelintegritet og hjertefrekvens 1,2,3. S1P utøver sine ulike fysiologiske effekter gjennom fem S1P-reseptorundertyper (S1PRs 1-5); S1PR finnes i en rekke vev og viser unike preferanser for nedstrøms G-proteiner 4,5. S1PR1 er primært kombinert med Gi-proteinet, som senere hemmer cAMP-produksjonen; S1PR2 og S1PR3 er koblet sammen med Gi, Gq og G12/13, og S1PR4 og S1PR5 transduserer signal gjennom Gi og G12/136.

S1P-S1PR-signalering er et kritisk terapeutisk mål for flere sykdommer, inkludert autoimmune lidelser7, betennelse8, kreft9 og til og med COVID-1910. I 2010 ble fingolimod (FTY720) lisensiert som et førsteklasses legemiddel rettet mot S1PR for å behandle residiverende multippel sklerose (MS)11. Det er imidlertid i stand til å binde seg til alle S1PR unntatt S1PR2, mens ikke-spesifikk binding til S1PR3 resulterer i ødem i hjernebarken, vaskulær og bronkial innsnevring og lungeepitellekkasje12. Som en alternativ strategi for å øke terapeutisk selektivitet er det produsert subtypespesifikke ligander for reseptoren. Siponimod (BAF312) ble godkjent i 2019 for tilbakefall MS-behandling13; det retter seg effektivt mot S1PR1 og S1PR5, mens det ikke har noen affinitet for S1PR3, og viser færre bivirkninger i klinisk praksis14. I 2020 godkjente US Food and Drug Administration ozanimod for MS-terapi15. Det har blitt rapportert at ozanimod har en 25 ganger større selektivitet for S1PR1 enn for S1PR516. Spesielt i sammenheng med den nåværende COVID-19-pandemien har det blitt oppdaget at agonistmedisiner rettet mot S1PR kan brukes til å behandle COVID-19 ved å bruke immunmodulerende terapiteknikker17. Sammenlignet med fingolimod har ozanimod vist overlegenhet i å senke symptomene hos COVID-19-pasienter og gjennomgår nå kliniske studier10. Å forstå det strukturelle grunnlaget og funksjonen til S1PRs legger et betydelig grunnlag for å utvikle et stoff som selektivt retter seg mot S1PRs18.

Mange teknikker brukes til å undersøke strukturell informasjon om biomacromolecules, inkludert røntgenkrystallografi, kjernemagnetisk resonans (NMR) og elektronmikroskopi (EM). Fra mars 2022 er det mer enn 180 000 strukturer deponert på Protein Databank (PDB), og de fleste av dem er løst ved røntgenkrystallografi. Men med den første nær-atomiske oppløsningsstrukturen til TPRV1 (3.4 Å-oppløsning) rapportert av Yifan Cheng og David Julius i 201319, har kryo-elektronmikroskopi (cryo-EM) blitt en vanlig teknikk for proteinstrukturer, og det totale antallet EM PDB-strukturer var mer enn 10.000. De kritiske gjennombruddsområdene er utviklingen av nye kameraer for bildebehandling kjent som direkte elektrondeteksjonskameraer og nye bildebehandlingsalgoritmer. Cryo-EM har revolusjonert strukturbiologi og strukturbasert legemiddeloppdagelse det siste tiåret20. Ettersom forståelse av hvordan makromolekylære komplekser oppfyller sine kompliserte roller i den levende cellen er et sentralt tema i biologiske, har cryo-EM potensial til å avsløre konformasjoner av dynamiske molekylære komplekser, spesielt for transmembranproteiner21. G-proteinkoblede reseptorer (GPCR) er den største superfamilien av transmembranproteiner og målene for mer enn 30% av dagens markedsførte legemidler22. Utviklingen av cryo-EM har bidratt til et utbrudd av høyoppløselige strukturer av GPCR-G-proteinkomplekser, noe som muliggjør strukturell bestemmelse for “ugjennomtrengelige” mål som fortsatt ikke er tilgjengelige for røntgenkrystallografisk analyse i legemiddeldesign23. Derfor gir cryo-EM-applikasjonen en sjanse til å bestemme den tredimensjonale strukturen til GPCR under nær-innfødte forhold ved nær atomoppløsning24. Fremskritt i cryo-EM gjør det mulig å visualisere mekanistiske underlag av GPCR-stimulering eller inhibering, og ytterligere nytte i å avdekke de nye bindingsstedene for GPCR-målrettet narkotikaopprettelse25.

Ved å stole på de enorme fremskrittene med kryo-EM-teknologi, har vi identifisert strukturer av forpinte S1PR1-, S1PR3- og S1PR5-Gi-signalkomplekser nylig26,27. Hos mennesker finnes S1PR i forskjellige vev og utviser unike preferanser for nedstrøms G-proteiner 4,5. S1PR1 er primært kombinert med Gi protein, som senere hemmer 3′,5′-syklisk adenosinmonofosfat (cAMP) produksjon. S1PR3 og S1PR5 er også i stand til å koble til Gi 6,28. Siden Gi-koblet reseptoraktivering reduserer produksjonen av cAMP29, ble en Gi-hemming cAMP-analyse introdusert for å måle cAMP-hemmingseffekter for å fange funksjonelle endringer26,27. Ved å bruke en mutert versjon av Photinus pyralis luciferase hvor en cAMP-bindende proteindel er satt inn, tilbyr denne cAMP-analysen en enkel og pålitelig metode for å overvåke GPCR-aktivitet gjennom endringer i intracellulær cAMP-konsentrasjon30. Det er en sensitiv og ikke-radioaktiv funksjonell analyse og kan brukes til å overvåke sanntids nedstrøms signalering av et bredt spekter av GPCR for narkotikaoppdagelsesformål31.

Her gis et sammendrag av de kritiske metodene for å løse aktiverings- og legemiddelgjenkjenningsmodusene til S1PR, primært inkludert kryo-EM-manipulasjoner og en Gi-hemming cAMP-analyse. Denne artikkelen tar sikte på å gi omfattende eksperimentell veiledning for videre utforskning av strukturer og funksjoner i GPCRs.

Protocol

1. Rensing av S1PRs-G proteinkompleks For å rense det humane S1PRs-G-proteinkomplekset, kloner du cDNA-ene til S1PR1 som mangler C-terminale rester 338-382, villtypen S1PR3, S1PR5 avkortet med 345-398 ved C-terminalen, og villtypen Gi1 inn i pFastBac1-vektoren og cDNA-ene til villtypen Gβ1 og Gγ2 inn i pFastBacdual-vektoren (Table of Materials).MERK: Alle konstruksjoner for S1PRs inneholder også hemagglutinin (HA) signalsekvens etterfulgt av en Flag-epitop-tag ved N-ter…

Representative Results

Før frysing av prøven av S1PRs-Gi-komplekset, må den rensede prøven separeres ved størrelseseksklusjonskromatografi (SEC) og analyseres med gelfiltreringskromatografi. Figur 2 viser S1PR3-Gi-komplekset som et eksempel. Toppfraksjonen av det homogene GPCR-G-proteinkomplekset var vanligvis lokalisert ved ~10,5 ml av størrelseseksklusjonskromatografien (figur 2A). SDS-sideanalyse av S1PR3-Gi-komplekset (figur 2B) avslører fire b…

Discussion

Denne protokollen beskriver en primær rørledning for å bestemme strukturene til S1PR ved kryo-EM og måle aktiveringsstyrken til S1PR ved Gi-mediert cAMP-hemmingsanalyse. Noen trinn er avgjørende for eksperimentets suksess.

For å rense S1PRs-Gi-komplekset, bør kvaliteten på viruset og helsen til sf9-celler være mer oppmerksom på. Uttrykket av reseptoren reduseres dramatisk i dårlige sf9-celler . Helsen til sf9-celler ble vurdert ved å måle diameteren. Den…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dataene fra S1PRs-Gi-komplekset ble høstet ved West China Cryo-EM Center i Sichuan University og Cryo-EM Center ved Southern University of Science and Technology (SUSTech) og behandlet ved Duyu High-Performance Computing Center i Sichuan University. Dette arbeidet ble støttet av Natural Science Foundation of China (32100965 til L.C., 32100988 til W.Y., 31972916 til Z.S.) og heltids postdoktorforskningsfondet ved Sichuan University (2021SCU12003 til L.C.)

Materials

0.05% trypsin-EDTA GIBCO Cat# 25300054
0.22 µM filter Thermo Fisher Scientific Cat# 42213-PS
100 kDa cut-off concentrator Thermo Fisher Scientific Cat# 88533
6-well plate Corning Cat# 43016
96-well plate Corning Cat# 3917
Aprotinin Sigma-Aldrich Cat# 9087-70-1
Apyrase NEB Cat# M0398S
Baculovirus transfection reagent Thermo Fisher Scientific Cat# 10362100 For the preparation of P0 baculovirus
Benzamidine Sigma-Aldrich Cat# B6506
CHO-K1 ATCC N/A
CHS Sigma-Aldrich Cat# C6512
CryoSPARC Punjani, A., et al.,2017 https://cryosparc.com/
DH5α competent E.coli Thermo Fisher Scientific Cat# EC0112
D-Luciferin-Potassium Salt Sigma- Aldrich Cat# 50227
DMSO Sigma- Aldrich Cat# D2438
EDTA Thermo Fisher Scientific Cat# S311-500
ESF921 cell culture medium Expression Systems Cat#  96-001
Excel microsoft N/A
F12 medium Invitrogen Cat# 11765
FBS Cell Box Cat# SAG-01U-02
Flag resin Sigma- Aldrich Cat# A4596
Forskolin APExBIO Cat# B1421
Gctf Zhang, 2016  https://www.mrc-lmb.cam.ac.uk/kzhang/Gctf/
GDN Anatrace Cat# GDN101
Gel filtration column GE healthcare Cat# 28990944
Gen5 3.11 BIO-TEK N/A
Gentamicin Solarbio Cat# L1312
GloSensor cAMP assay kit Promega Cat# E1291 Gi-inhibition cAMP assay kit
GloSensor plasmid Promega Cat# E2301 Sensor plasmid
Grace’s medium GIBCO Cat# 11595030
GraphPad Prism 8 Graphpad N/A
HBSS Thermo Fisher Scientific Cat# 88284
HEPES Sigma- Aldrich Cat# H4034
jetPRIME Reagent Polyplus Transfection Cat# 114-15 transfection reagent
Janamycin Solarbio Cat# K1030
LB medium Invitrogen Cat# 12780052
Leupeptin Sigma-Aldrich Cat# L2884
LMNG Anatrace Cat# NG310
MotionCor2 (Zheng et al., 2017) https://emcore.ucsf.edu/ucsf-software
NanoCab Thermo Fisher Scientific Cat# 1121822
PBS Invitrogen Cat# 14190-144
pcDNA3.1-HA-FLAG-S1PRs GenScript N/A
pFastBac1-Gαi GenScript N/A
pFastBac1-HA-FLAG-T4L-S1PRs-His10 GenScript N/A
pFastBacdual-Gβ1γ2 GenScript N/A
PureLink HiPure Plasmid Miniprep Kit Invitrogen Cat# K210003 For the preparation of plasmids and P0 baculovirus
Q5 site-Directed Mutagenesis kit NEB Cat# E0554S For the preparation of plasmids
Quantifoil Quantifoil Cat# 251448
RELION-3.1 (Zivanov et al., 2018) https://www2.mrc-lmb.cam.ac.uk/relion
S1PRs cDNA addgene N/A
scFv16 Invitrogen Cat# 703976
Sf9 Expression Systems N/A
Siponimod Selleck Cat# S7179
sodium cholate Sigma-Aldrich Cat# C1254
Synergy H1 microplate reader BIO-TEK N/A
Synthetic T4L DNA (sequence) N/A N/A Aacatcttcgagatgctgcgcatcgacgaagg
cctgcgtctcaagatttacaagaataccgaagg
ttattacacgattggcatcggccacctcctgaca
aagagcccatcactcaacgctgccaagtctga
actggacaaagccattggtcgcaacaccaac
ggtgtcattacaaaggacgaggcggagaaac
tcttcaaccaagatgtagatgcggctgtccgtgg
catcctgcgtaatgccaagttgaagcccgtgt
atgactcccttgatgctgttcgccgtgcagcctt
gatcaacatggttttccaaatgggtgagaccgg
agtggctggttttacgaactccctgcgcatgctcc
agcagaagcgctgggacgaggccgcagtga
atttggctaaatctcgctggtacaatcagacacc
taaccgtgccaagcgtgtcatcactaccttccg
tactggaacttgggacgcttac
TCEP Thermo Fisher Scientific Cat# 77720
Tetracycline Solarbio Cat# T8180
Vitrobot Mark IV Thermo Fisher Scientific N/A

References

  1. Verstockt, B., et al. Sphingosine 1-phosphate modulation and immune cell trafficking in inflammatory bowel disease. Nature Reviews: Gastroenterology & Hepatology. , 1-16 (2022).
  2. Rosen, H., Stevens, R. C., Hanson, M., Roberts, E., Oldstone, M. B. Sphingosine-1-phosphate and its receptors: structure, signaling, and influence. Annual Review of Biochemistry. 82, 637-662 (2013).
  3. Cartier, A., Hla, T. Sphingosine 1-phosphate: Lipid signaling in pathology and therapy. Science. 366 (6463), 5551 (2019).
  4. Jozefczuk, E., Guzik, T. J., Siedlinski, M. Significance of sphingosine-1-phosphate in cardiovascular physiology and pathology. Pharmacological Research. 156, 104793 (2020).
  5. Kihara, Y., Maceyka, M., Spiegel, S., Chun, J. Lysophospholipid receptor nomenclature review: IUPHAR Review 8. British Journal of Pharmacology. 171 (15), 3575-3594 (2014).
  6. Bryan, A. M., Del Poeta, M. Sphingosine-1-phosphate receptors and innate immunity. Cellular Microbiology. 20 (5), 12836 (2018).
  7. Pelletier, D., Hafler, D. A. Fingolimod for multiple sclerosis. New England Journal of Medicine. 366 (4), 339-347 (2012).
  8. Obinata, H., Hla, T. Sphingosine 1-phosphate and inflammation. International Immunology. 31 (9), 617-625 (2019).
  9. Pyne, N. J., Pyne, S. Sphingosine 1-phosphate and cancer. Nature Reviews: Cancer. 10 (7), 489-503 (2010).
  10. Abu-Farha, M., et al. The role of lipid metabolism in COVID-19 virus infection and as a drug target. International Journal of Molecular Sciences. 21 (10), 3544 (2020).
  11. Chun, J., Kihara, Y., Jonnalagadda, D., Blaho, V. A. Fingolimod: lessons learned and new opportunities for treating Multiple Sclerosis and other disorders. Annual Review of Pharmacology and Toxicology. 59, 149-170 (2019).
  12. Murakami, A., et al. Sphingosine 1-phosphate (S1P) regulates vascular contraction via S1P3 receptor: investigation based on a new S1P3 receptor antagonist. Molecular Pharmacology. 77 (4), 704-713 (2010).
  13. Cao, L., et al. Siponimod for multiple sclerosis. Cochrane Database of Systematic Reviews. 11, (2021).
  14. Scott, L. J. Siponimod: a review in secondary progressive Multiple Sclerosis. CNS Drugs. 34 (11), 1191-1200 (2020).
  15. Lamb, Y. N. Ozanimod: first approval. Drugs. 80 (8), 841-848 (2020).
  16. Scott, F. L., et al. Ozanimod (RPC1063) is a potent sphingosine-1-phosphate receptor-1 (S1P1) and receptor-5 (S1P5) agonist with autoimmune disease-modifying activity. British Journal of Pharmacology. 173 (11), 1778-1792 (2016).
  17. McGowan, E. M., Haddadi, N., Nassif, N. T., Lin, Y. Targeting the SphK-S1P-SIPR pathway as a potential therapeutic approach for COVID-19. International Journal of Molecular Sciences. 21 (19), 7189 (2020).
  18. O’Sullivan, C., Dev, K. K. The structure and function of the S1P1 receptor. Trends in Pharmacological Sciences. 34 (7), 401-412 (2013).
  19. Liao, M., Cao, E., Julius, D., Cheng, Y. Structure of the TRPV1 ion channel determined by electron cryo-microscopy. Nature. 504 (7478), 107-112 (2013).
  20. Bai, X. C., McMullan, G., Scheres, S. H. How cryo-EM is revolutionizing structural biology. Trends in Biochemical Sciences. 40 (1), 49-57 (2015).
  21. Murata, K., Wolf, M. Cryo-electron microscopy for structural analysis of dynamic biological macromolecules. Biochimica et Biophysica Acta General Subjects. 1862 (2), 324-334 (2018).
  22. Zhang, M., et al. Cryo-EM structure of an activated GPCR-G protein complex in lipid nanodiscs. Nature Structural & Molecular Biology. 28 (3), 258-267 (2021).
  23. Renaud, J. P., et al. Cryo-EM in drug discovery: achievements, limitations and prospects. Nature Reviews: Drug Discovery. 17 (7), 471-492 (2018).
  24. Ishchenko, A., Gati, C., Cherezov, V. Structural biology of G protein-coupled receptors: new opportunities from XFELs and cryoEM. Current Opinion in Structural Biology. 51, 44-52 (2018).
  25. Yang, D., et al. G protein-coupled receptors: structure- and function-based drug discovery. Signal Transduction and Targeted Therapy. 6 (1), 7 (2021).
  26. Yuan, Y., et al. Structures of signaling complexes of lipid receptors S1PR1 and S1PR5 reveal mechanisms of activation and drug recognition. Cell Research. 31 (12), 1263-1274 (2021).
  27. Zhao, C., et al. Structural insights into sphingosine-1-phosphate recognition and ligand selectivity of S1PR3-Gi signaling complexes. Cell Research. 32 (2), 218-221 (2022).
  28. Xu, Z., et al. Structural basis of sphingosine-1-phosphate receptor 1 activation and biased agonism. Nature Chemical Biology. 18, 281-288 (2022).
  29. Liu, Y. F., Ghahremani, M. H., Rasenick, M. M., Jakobs, K. H., Albert, P. R. Stimulation of cAMP synthesis by Gi-coupled receptors upon ablation of distinct Galphai protein expression. Gi subtype specificity of the 5-HT1A receptor. Journal of Biological Chemistry. 274 (23), 16444-16450 (1999).
  30. Buccioni, M., et al. Innovative functional cAMP assay for studying G protein-coupled receptors: application to the pharmacological characterization of GPR17. Purinergic Signalling. 7 (4), 463-468 (2011).
  31. Wang, F. I., Ding, G., Ng, G. S., Dixon, S. J., Chidiac, P. Luciferase-based GloSensor cAMP assay: Temperature optimization and application to cell-based kinetic studies. Methods. , (2021).
  32. Audet, M., et al. Small-scale approach for precrystallization screening in GPCR X-ray crystallography. Nature Protocols. 15 (1), 144-160 (2020).
  33. Sgro, G. G., Costa, T. R. D. Cryo-EM grid preparation of membrane protein samples for single particle analysis. Frontiers in Molecular Biosciences. 5, 74 (2018).
  34. White, J. B. R., et al. Single particle cryo-electron microscopy: from sample to structure. Journal of Visualized Experiments. (171), e62415 (2021).
  35. Thompson, R. F., Iadanza, M. G., Hesketh, E. L., Rawson, S., Ranson, N. A. Collection, pre-processing and on-the-fly analysis of data for high-resolution, single-particle cryo-electron microscopy. Nature Protocols. 14 (1), 100-118 (2019).
  36. Fernandez-Leiro, R., Scheres, S. H. W. A pipeline approach to single-particle processing in RELION. Acta Crystallographica Section D. 73 (6), 496-502 (2017).
  37. Punjani, A., Rubinstein, J. L., Fleet, D. J., Brubaker, M. A. cryoSPARC: algorithms for rapid unsupervised cryo-EM structure determination. Nature Methods. 14 (3), 290-296 (2017).
  38. Brilot, A. F., et al. Beam-induced motion of vitrified specimen on holey carbon film. Journal of Structural Biology. 177 (3), 630-637 (2012).
  39. Zheng, S. Q., et al. MotionCor2: anisotropic correction of beam-induced motion for improved cryo-electron microscopy. Nature Methods. 14 (4), 331-332 (2017).
  40. Zhang, K. Gctf: Real-time CTF determination and correction. Journal of Structural Biology. 193 (1), 1-12 (2016).
  41. Scheres, S. H. Semi-automated selection of cryo-EM particles in RELION-1.3. Journal of Structural Biology. 189 (2), 114-122 (2015).
  42. Liu, S., et al. Differential activation mechanisms of lipid GPCRs by lysophosphatidic acid and sphingosine 1-phosphate. Nature Communications. 13 (1), 731 (2022).
  43. Duan, J., et al. Cryo-EM structure of an activated VIP1 receptor-G protein complex revealed by a NanoBiT tethering strategy. Nature Communications. 11 (1), 4121 (2020).
  44. DiIorio, M. C., Kulczyk, A. W. A robust single-particle cryo-electron microscopy (cryo-EM) processing workflow with cryoSPARC, RELION, and Scipion. Journal of Visualized Experiments. (179), e63387 (2022).
  45. Pradelles, P., Grassi, J., Chabardes, D., Guiso, N. Enzyme immunoassays of adenosine cyclic 3′,5′-monophosphate and guanosine cyclic 3′,5′-monophosphate using acetylcholinesterase. Analytical Chemistry. 61 (5), 447-453 (1989).
  46. Jiang, L. I., et al. Use of a cAMP BRET sensor to characterize a novel regulation of cAMP by the sphingosine 1-phosphate/G13 pathway. Journal of Biological Chemistry. 282 (14), 10576-10584 (2007).
check_url/fr/64054?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Cheng, L., Su, L., Tian, X., Xia, F., Zhao, C., Yan, W., Shao, Z. A Pipeline to Investigate the Structures and Signaling Pathways of Sphingosine 1-Phosphate Receptors. J. Vis. Exp. (184), e64054, doi:10.3791/64054 (2022).

View Video