Summary

En pipeline för att undersöka strukturer och signalvägar för sfingosin 1-fosfatreceptorer

Published: June 08, 2022
doi:

Summary

S1P utövar sina olika fysiologiska effekter genom underfamiljen S1P-receptorer (S1PR). Här beskrivs en pipeline för att förklara strukturerna och funktionen hos S1PR.

Abstract

Lysofosfolipider (LPL) är bioaktiva lipider som inkluderar sfingosin 1-fosfat (S1P), lysofosfatidinsyra etc. S1P, en metabolisk produkt av sfingolipider i cellmembranet, är en av de bäst karakteriserade LPL: erna som reglerar en mängd olika cellulära fysiologiska svar via signalvägar medierade av sfingosin 1-fosfatreceptorer (S1PRs). Detta innebar att S1P-S1PRs signalsystem är ett anmärkningsvärt potentiellt terapeutiskt mål för störningar, inklusive multipel skleros (MS), autoimmuna störningar, cancer, inflammation och till och med COVID-19. S1PR, en liten delmängd av klass A G-proteinkopplad receptor (GPCR) -familjen, består av fem undertyper: S1PR1, S1PR2, S1PR3, S1PR4 och S1PR5. Bristen på detaljerad strukturell information hindrar dock läkemedelsupptäckten riktad mot S1PR. Här tillämpade vi kryoelektronmikroskopimetoden för att lösa strukturen hos S1P-S1PRs-komplexet och belyste aktiveringsmekanismen, selektiv läkemedelsigenkänning och G-proteinkoppling genom att använda cellbaserade funktionella analyser. Andra lysofosfolipidreceptorer (LPLR) och GPCR kan också studeras med hjälp av denna strategi.

Introduction

Sfingosin-1-fosfat (S1P), en metabolisk produkt av sfingolipider i cellmembranet, är en allestädes närvarande lysofosfatidisk signalmolekyl som involverar olika biologiska aktiviteter, inklusive lymfocythandel, vaskulär utveckling, endotelintegritet och hjärtfrekvens 1,2,3. S1P utövar sina olika fysiologiska effekter genom fem S1P-receptorsubtyper (S1PRs 1-5); S1PR finns i en mängd olika vävnader och uppvisar unika preferenser för nedströms G-proteiner 4,5. S1PR1 är främst kopplad till Gi-proteinet, som därefter hämmar cAMP-produktionen; S1PR2 och S1PR3 är kopplade till Gi, Gq och G12/13, och S1PR4 och S1PR5 transducerar signal genom Gi och G12/136.

S1P-S1PR-signalering är ett kritiskt terapeutiskt mål för flera sjukdomar, inklusive autoimmuna störningar7, inflammation8, cancer9 och till och med COVID-1910. År 2010 licensierades fingolimod (FTY720) som ett first-in-class-läkemedel riktat mot S1PR för att behandla skovvis multipel skleros (MS)11. Det kan emellertid binda till alla S1PR utom S1PR2, medan ospecifik bindning till S1PR3 resulterar i ödem i hjärnbarken, vaskulär och bronkial förträngning och lungepitelläckage12. Som en alternativ strategi för att öka terapeutisk selektivitet har subtypspecifika ligander för receptorn producerats. Siponimod (BAF312) godkändes 2019 för återfall MS-behandling13; det riktar sig effektivt till S1PR1 och S1PR5, medan det inte har någon affinitet för S1PR3, vilket uppvisar färre biverkningar i klinisk praxis14. År 2020 godkände US Food and Drug Administration ozanimod för MS-terapi15. Det har rapporterats att ozanimod har en 25-faldigt större selektivitet för S1PR1 än för S1PR516. I synnerhet i samband med den nuvarande COVID-19-pandemin har det upptäckts att agonistläkemedel riktade mot S1PR kan användas för att behandla COVID-19 genom att använda immunmodulerande terapitekniker17. I jämförelse med fingolimod har ozanimod visat överlägsenhet när det gäller att sänka symtomen hos COVID-19-patienter och genomgår nu kliniska prövningar10. Att förstå den strukturella grunden och funktionen hos S1PR lägger en viktig grund för att utveckla ett läkemedel som selektivt riktar sig motS1PRs 18.

Många tekniker används för att undersöka den strukturella informationen om biomakromolekyler, inklusive röntgenkristallografi, kärnmagnetisk resonans (NMR) och elektronmikroskopi (EM). Från och med mars 2022 finns det mer än 180 000 strukturer deponerade på Protein Databank (PDB), och de flesta av dem har lösts genom röntgenkristallografi. Men med den första nästan atomära upplösningsstrukturen för TPRV1 (3.4 Å-upplösning) rapporterad av Yifan Cheng och David Julius 2013 19, har kryoelektronmikroskopi (kryo-EM) blivit en vanlig teknik för proteinstrukturer, och det totala antalet EM PDB-strukturer var mer än10 000. De kritiska genombrottsområdena är utvecklingen av nya kameror för avbildning som kallas direkta elektrondetekteringskameror och nya bildbehandlingsalgoritmer. Cryo-EM har revolutionerat strukturbiologi och strukturbaserad läkemedelsupptäckt under det senaste decenniet20. Eftersom förståelse för hur makromolekylära komplex uppfyller sina komplicerade roller i den levande cellen är ett centralt tema inom biologiska vetenskaper, har kryo-EM potential att avslöja konformationer av dynamiska molekylära komplex, särskilt för transmembranproteiner21. G-proteinkopplade receptorer (GPCR) är den största superfamiljen av transmembranproteiner och målen för mer än 30% av de för närvarande marknadsförda läkemedlen22. Utvecklingen av kryo-EM har bidragit till en explosion av högupplösta strukturer av GPCR-G-proteinkomplex, vilket möjliggör strukturell bestämning för “svårhanterliga” mål som fortfarande inte är tillgängliga för röntgenkristallografisk analys i läkemedelsdesign23. Därför ger kryo-EM-applikationen en chans att bestämma den tredimensionella strukturen hos GPCR i nästan inbyggda förhållanden vid nära atomupplösning24. Framsteg inom kryo-EM gör det möjligt att visualisera mekanistiska underlag för GPCR-stimulering eller hämning, och ytterligare fördelar med att avslöja de nya bindningsställena för GPCR-riktad läkemedelsskapande25.

Genom att förlita oss på de enorma framstegen med kryo-EM-teknik har vi identifierat strukturer av agoniserade S1PR1-, S1PR3- och S1PR5-Gi-signalkomplex nyligen26,27. Hos människor finns S1PR i olika vävnader och uppvisar unika preferenser för nedströms G-proteiner 4,5. S1PR1 är främst kopplad till Gi-proteinet, som därefter hämmar 3′,5′-cykliskt adenosinmonofosfat (cAMP) produktion. S1PR3 och S1PR5 kan också kopplas till Gi 6,28. Eftersom Gi-kopplad receptoraktivering minskar produktionen av cAMP29 introducerades en Gi-hämning cAMP-analys för att mäta cAMP-hämningseffekter för att fånga funktionella förändringar26,27. Med hjälp av en mutantversion av Photinus pyralis luciferas där en cAMP-bindande proteindel har infogats, erbjuder denna cAMP-analys en enkel och pålitlig metod för att övervaka GPCR-aktivitet genom förändringar i intracellulär cAMP-koncentration30. Det är en känslig och icke-radioaktiv funktionell analys och kan tillämpas för att övervaka realtidssignalering nedströms av ett brett spektrum av GPCR för läkemedelsupptäcktsändamål31.

Här ges en sammanfattning av de kritiska metoderna för att lösa aktiverings- och läkemedelsigenkänningslägena för S1PR, främst inklusive kryo-EM-manipulationer och en Gi-hämning cAMP-analys. Denna artikel syftar till att ge omfattande experimentell vägledning för ytterligare utforskningar av GPCR: s strukturer och funktioner.

Protocol

1. Rening av S1PRs-G-proteinkomplex För att rena det mänskliga S1PRs-G-proteinkomplexet, klona cDNA: erna av S1PR1 som saknar C-terminala rester 338-382, vildtypen S1PR3, S1PR5 stympad med 345-398 vid C-terminalen och vildtypen Gi1 i pFastBac1-vektorn och cDNA: erna av vildtyp Gβ1 och Gγ2 till pFastBacdual-vektorn (materialtabell).OBS: Alla konstruktioner för S1PR innehåller också haemagglutinin (HA) signalsekvensen följt av en flaggepitoptagg vid N-terminalen och e…

Representative Results

Innan provet av S1PRs-Gi-komplexet fryses måste det renade provet separeras med storleksuteslutningskromatografi (SEC) och analyseras med gelfiltreringskromatografi. Figur 2 visar S1PR3-Gi-komplexet som ett exempel. Den maximala fraktionen av det homogena GPCR-G-proteinkomplexet var vanligtvis belägen vid ~ 10,5 ml av storleksuteslutningskromatografin (figur 2A). SDS-sidanalys av S1PR3-Gi-komplexet (figur 2B) avslöjar fyra band s…

Discussion

Detta protokoll beskriver en primär pipeline för att bestämma strukturerna för S1PR genom kryo-EM och mäta aktiveringsstyrkan hos S1PR med Gi-medierad cAMP-hämningsanalys. Vissa steg är avgörande för experimentets framgång.

För att rena S1PRs-Gi-komplexet bör virusets kvalitet och hälsan hos sf9-celler ägnas mer uppmärksamhet åt. Uttrycket av receptorn reduceras dramatiskt i fattiga sf9-celler . Hälsan hos sf9-celler bedömdes genom att mäta deras d…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Data från S1PRs-Gi-komplexet skördades vid West China Cryo-EM Center i Sichuan University och Cryo-EM Center vid Southern University of Science and Technology (SUSTech) och bearbetades vid Duyu High-Performance Computing Center i Sichuan University. Detta arbete stöddes av Natural Science Foundation of China (32100965 till L.C., 32100988 till W.Y., 31972916 till Z.S.) och heltidspostdoktorala forskningsfonden vid Sichuan University (2021SCU12003 till L.C.)

Materials

0.05% trypsin-EDTA GIBCO Cat# 25300054
0.22 µM filter Thermo Fisher Scientific Cat# 42213-PS
100 kDa cut-off concentrator Thermo Fisher Scientific Cat# 88533
6-well plate Corning Cat# 43016
96-well plate Corning Cat# 3917
Aprotinin Sigma-Aldrich Cat# 9087-70-1
Apyrase NEB Cat# M0398S
Baculovirus transfection reagent Thermo Fisher Scientific Cat# 10362100 For the preparation of P0 baculovirus
Benzamidine Sigma-Aldrich Cat# B6506
CHO-K1 ATCC N/A
CHS Sigma-Aldrich Cat# C6512
CryoSPARC Punjani, A., et al.,2017 https://cryosparc.com/
DH5α competent E.coli Thermo Fisher Scientific Cat# EC0112
D-Luciferin-Potassium Salt Sigma- Aldrich Cat# 50227
DMSO Sigma- Aldrich Cat# D2438
EDTA Thermo Fisher Scientific Cat# S311-500
ESF921 cell culture medium Expression Systems Cat#  96-001
Excel microsoft N/A
F12 medium Invitrogen Cat# 11765
FBS Cell Box Cat# SAG-01U-02
Flag resin Sigma- Aldrich Cat# A4596
Forskolin APExBIO Cat# B1421
Gctf Zhang, 2016  https://www.mrc-lmb.cam.ac.uk/kzhang/Gctf/
GDN Anatrace Cat# GDN101
Gel filtration column GE healthcare Cat# 28990944
Gen5 3.11 BIO-TEK N/A
Gentamicin Solarbio Cat# L1312
GloSensor cAMP assay kit Promega Cat# E1291 Gi-inhibition cAMP assay kit
GloSensor plasmid Promega Cat# E2301 Sensor plasmid
Grace’s medium GIBCO Cat# 11595030
GraphPad Prism 8 Graphpad N/A
HBSS Thermo Fisher Scientific Cat# 88284
HEPES Sigma- Aldrich Cat# H4034
jetPRIME Reagent Polyplus Transfection Cat# 114-15 transfection reagent
Janamycin Solarbio Cat# K1030
LB medium Invitrogen Cat# 12780052
Leupeptin Sigma-Aldrich Cat# L2884
LMNG Anatrace Cat# NG310
MotionCor2 (Zheng et al., 2017) https://emcore.ucsf.edu/ucsf-software
NanoCab Thermo Fisher Scientific Cat# 1121822
PBS Invitrogen Cat# 14190-144
pcDNA3.1-HA-FLAG-S1PRs GenScript N/A
pFastBac1-Gαi GenScript N/A
pFastBac1-HA-FLAG-T4L-S1PRs-His10 GenScript N/A
pFastBacdual-Gβ1γ2 GenScript N/A
PureLink HiPure Plasmid Miniprep Kit Invitrogen Cat# K210003 For the preparation of plasmids and P0 baculovirus
Q5 site-Directed Mutagenesis kit NEB Cat# E0554S For the preparation of plasmids
Quantifoil Quantifoil Cat# 251448
RELION-3.1 (Zivanov et al., 2018) https://www2.mrc-lmb.cam.ac.uk/relion
S1PRs cDNA addgene N/A
scFv16 Invitrogen Cat# 703976
Sf9 Expression Systems N/A
Siponimod Selleck Cat# S7179
sodium cholate Sigma-Aldrich Cat# C1254
Synergy H1 microplate reader BIO-TEK N/A
Synthetic T4L DNA (sequence) N/A N/A Aacatcttcgagatgctgcgcatcgacgaagg
cctgcgtctcaagatttacaagaataccgaagg
ttattacacgattggcatcggccacctcctgaca
aagagcccatcactcaacgctgccaagtctga
actggacaaagccattggtcgcaacaccaac
ggtgtcattacaaaggacgaggcggagaaac
tcttcaaccaagatgtagatgcggctgtccgtgg
catcctgcgtaatgccaagttgaagcccgtgt
atgactcccttgatgctgttcgccgtgcagcctt
gatcaacatggttttccaaatgggtgagaccgg
agtggctggttttacgaactccctgcgcatgctcc
agcagaagcgctgggacgaggccgcagtga
atttggctaaatctcgctggtacaatcagacacc
taaccgtgccaagcgtgtcatcactaccttccg
tactggaacttgggacgcttac
TCEP Thermo Fisher Scientific Cat# 77720
Tetracycline Solarbio Cat# T8180
Vitrobot Mark IV Thermo Fisher Scientific N/A

References

  1. Verstockt, B., et al. Sphingosine 1-phosphate modulation and immune cell trafficking in inflammatory bowel disease. Nature Reviews: Gastroenterology & Hepatology. , 1-16 (2022).
  2. Rosen, H., Stevens, R. C., Hanson, M., Roberts, E., Oldstone, M. B. Sphingosine-1-phosphate and its receptors: structure, signaling, and influence. Annual Review of Biochemistry. 82, 637-662 (2013).
  3. Cartier, A., Hla, T. Sphingosine 1-phosphate: Lipid signaling in pathology and therapy. Science. 366 (6463), 5551 (2019).
  4. Jozefczuk, E., Guzik, T. J., Siedlinski, M. Significance of sphingosine-1-phosphate in cardiovascular physiology and pathology. Pharmacological Research. 156, 104793 (2020).
  5. Kihara, Y., Maceyka, M., Spiegel, S., Chun, J. Lysophospholipid receptor nomenclature review: IUPHAR Review 8. British Journal of Pharmacology. 171 (15), 3575-3594 (2014).
  6. Bryan, A. M., Del Poeta, M. Sphingosine-1-phosphate receptors and innate immunity. Cellular Microbiology. 20 (5), 12836 (2018).
  7. Pelletier, D., Hafler, D. A. Fingolimod for multiple sclerosis. New England Journal of Medicine. 366 (4), 339-347 (2012).
  8. Obinata, H., Hla, T. Sphingosine 1-phosphate and inflammation. International Immunology. 31 (9), 617-625 (2019).
  9. Pyne, N. J., Pyne, S. Sphingosine 1-phosphate and cancer. Nature Reviews: Cancer. 10 (7), 489-503 (2010).
  10. Abu-Farha, M., et al. The role of lipid metabolism in COVID-19 virus infection and as a drug target. International Journal of Molecular Sciences. 21 (10), 3544 (2020).
  11. Chun, J., Kihara, Y., Jonnalagadda, D., Blaho, V. A. Fingolimod: lessons learned and new opportunities for treating Multiple Sclerosis and other disorders. Annual Review of Pharmacology and Toxicology. 59, 149-170 (2019).
  12. Murakami, A., et al. Sphingosine 1-phosphate (S1P) regulates vascular contraction via S1P3 receptor: investigation based on a new S1P3 receptor antagonist. Molecular Pharmacology. 77 (4), 704-713 (2010).
  13. Cao, L., et al. Siponimod for multiple sclerosis. Cochrane Database of Systematic Reviews. 11, (2021).
  14. Scott, L. J. Siponimod: a review in secondary progressive Multiple Sclerosis. CNS Drugs. 34 (11), 1191-1200 (2020).
  15. Lamb, Y. N. Ozanimod: first approval. Drugs. 80 (8), 841-848 (2020).
  16. Scott, F. L., et al. Ozanimod (RPC1063) is a potent sphingosine-1-phosphate receptor-1 (S1P1) and receptor-5 (S1P5) agonist with autoimmune disease-modifying activity. British Journal of Pharmacology. 173 (11), 1778-1792 (2016).
  17. McGowan, E. M., Haddadi, N., Nassif, N. T., Lin, Y. Targeting the SphK-S1P-SIPR pathway as a potential therapeutic approach for COVID-19. International Journal of Molecular Sciences. 21 (19), 7189 (2020).
  18. O’Sullivan, C., Dev, K. K. The structure and function of the S1P1 receptor. Trends in Pharmacological Sciences. 34 (7), 401-412 (2013).
  19. Liao, M., Cao, E., Julius, D., Cheng, Y. Structure of the TRPV1 ion channel determined by electron cryo-microscopy. Nature. 504 (7478), 107-112 (2013).
  20. Bai, X. C., McMullan, G., Scheres, S. H. How cryo-EM is revolutionizing structural biology. Trends in Biochemical Sciences. 40 (1), 49-57 (2015).
  21. Murata, K., Wolf, M. Cryo-electron microscopy for structural analysis of dynamic biological macromolecules. Biochimica et Biophysica Acta General Subjects. 1862 (2), 324-334 (2018).
  22. Zhang, M., et al. Cryo-EM structure of an activated GPCR-G protein complex in lipid nanodiscs. Nature Structural & Molecular Biology. 28 (3), 258-267 (2021).
  23. Renaud, J. P., et al. Cryo-EM in drug discovery: achievements, limitations and prospects. Nature Reviews: Drug Discovery. 17 (7), 471-492 (2018).
  24. Ishchenko, A., Gati, C., Cherezov, V. Structural biology of G protein-coupled receptors: new opportunities from XFELs and cryoEM. Current Opinion in Structural Biology. 51, 44-52 (2018).
  25. Yang, D., et al. G protein-coupled receptors: structure- and function-based drug discovery. Signal Transduction and Targeted Therapy. 6 (1), 7 (2021).
  26. Yuan, Y., et al. Structures of signaling complexes of lipid receptors S1PR1 and S1PR5 reveal mechanisms of activation and drug recognition. Cell Research. 31 (12), 1263-1274 (2021).
  27. Zhao, C., et al. Structural insights into sphingosine-1-phosphate recognition and ligand selectivity of S1PR3-Gi signaling complexes. Cell Research. 32 (2), 218-221 (2022).
  28. Xu, Z., et al. Structural basis of sphingosine-1-phosphate receptor 1 activation and biased agonism. Nature Chemical Biology. 18, 281-288 (2022).
  29. Liu, Y. F., Ghahremani, M. H., Rasenick, M. M., Jakobs, K. H., Albert, P. R. Stimulation of cAMP synthesis by Gi-coupled receptors upon ablation of distinct Galphai protein expression. Gi subtype specificity of the 5-HT1A receptor. Journal of Biological Chemistry. 274 (23), 16444-16450 (1999).
  30. Buccioni, M., et al. Innovative functional cAMP assay for studying G protein-coupled receptors: application to the pharmacological characterization of GPR17. Purinergic Signalling. 7 (4), 463-468 (2011).
  31. Wang, F. I., Ding, G., Ng, G. S., Dixon, S. J., Chidiac, P. Luciferase-based GloSensor cAMP assay: Temperature optimization and application to cell-based kinetic studies. Methods. , (2021).
  32. Audet, M., et al. Small-scale approach for precrystallization screening in GPCR X-ray crystallography. Nature Protocols. 15 (1), 144-160 (2020).
  33. Sgro, G. G., Costa, T. R. D. Cryo-EM grid preparation of membrane protein samples for single particle analysis. Frontiers in Molecular Biosciences. 5, 74 (2018).
  34. White, J. B. R., et al. Single particle cryo-electron microscopy: from sample to structure. Journal of Visualized Experiments. (171), e62415 (2021).
  35. Thompson, R. F., Iadanza, M. G., Hesketh, E. L., Rawson, S., Ranson, N. A. Collection, pre-processing and on-the-fly analysis of data for high-resolution, single-particle cryo-electron microscopy. Nature Protocols. 14 (1), 100-118 (2019).
  36. Fernandez-Leiro, R., Scheres, S. H. W. A pipeline approach to single-particle processing in RELION. Acta Crystallographica Section D. 73 (6), 496-502 (2017).
  37. Punjani, A., Rubinstein, J. L., Fleet, D. J., Brubaker, M. A. cryoSPARC: algorithms for rapid unsupervised cryo-EM structure determination. Nature Methods. 14 (3), 290-296 (2017).
  38. Brilot, A. F., et al. Beam-induced motion of vitrified specimen on holey carbon film. Journal of Structural Biology. 177 (3), 630-637 (2012).
  39. Zheng, S. Q., et al. MotionCor2: anisotropic correction of beam-induced motion for improved cryo-electron microscopy. Nature Methods. 14 (4), 331-332 (2017).
  40. Zhang, K. Gctf: Real-time CTF determination and correction. Journal of Structural Biology. 193 (1), 1-12 (2016).
  41. Scheres, S. H. Semi-automated selection of cryo-EM particles in RELION-1.3. Journal of Structural Biology. 189 (2), 114-122 (2015).
  42. Liu, S., et al. Differential activation mechanisms of lipid GPCRs by lysophosphatidic acid and sphingosine 1-phosphate. Nature Communications. 13 (1), 731 (2022).
  43. Duan, J., et al. Cryo-EM structure of an activated VIP1 receptor-G protein complex revealed by a NanoBiT tethering strategy. Nature Communications. 11 (1), 4121 (2020).
  44. DiIorio, M. C., Kulczyk, A. W. A robust single-particle cryo-electron microscopy (cryo-EM) processing workflow with cryoSPARC, RELION, and Scipion. Journal of Visualized Experiments. (179), e63387 (2022).
  45. Pradelles, P., Grassi, J., Chabardes, D., Guiso, N. Enzyme immunoassays of adenosine cyclic 3′,5′-monophosphate and guanosine cyclic 3′,5′-monophosphate using acetylcholinesterase. Analytical Chemistry. 61 (5), 447-453 (1989).
  46. Jiang, L. I., et al. Use of a cAMP BRET sensor to characterize a novel regulation of cAMP by the sphingosine 1-phosphate/G13 pathway. Journal of Biological Chemistry. 282 (14), 10576-10584 (2007).
check_url/fr/64054?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Cheng, L., Su, L., Tian, X., Xia, F., Zhao, C., Yan, W., Shao, Z. A Pipeline to Investigate the Structures and Signaling Pathways of Sphingosine 1-Phosphate Receptors. J. Vis. Exp. (184), e64054, doi:10.3791/64054 (2022).

View Video