Le protocole décrit comment générer des myoblastes knock-out à l’aide de CRISPR/Cas9, de la conception des ARN guides au clonage cellulaire et à la caractérisation des clones knock-out.
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Article de méthode
Le protocole décrit comment générer des myoblastes knock-out à l’aide de CRISPR/Cas9, de la conception des ARN guides au clonage cellulaire et à la caractérisation des clones knock-out.
Une application importante des courtes répétitions palindromiques régulatrices groupées (CRISPR) / Cas 9 est le développement de lignées cellulaires knock-out, en particulier pour étudier la fonction de nouveaux gènes / protéines associés à une maladie, identifiés lors du diagnostic génétique. Pour le développement de telles lignées cellulaires, deux questions majeures doivent être démêlées : l’insertion des outils CRISPR (le Cas9 et l’ARN guide) avec une grande efficacité dans les cellules choisies, et la restriction de l’activité Cas9 à la délétion spécifique du gène choisi. Le protocole décrit ici est dédié à l’insertion des outils CRISPR dans des cellules difficiles à transfecter, telles que les cellules musculaires. Ce protocole est basé sur l’utilisation de lentivirus, produits avec des plasmides accessibles au public, pour lesquels toutes les étapes de clonage sont décrites pour cibler un gène d’intérêt. Le contrôle de l’activité de Cas9 a été réalisé à l’aide d’une adaptation d’un système précédemment décrit appelé KamiCas9, dans lequel la transduction des cellules avec un lentivirus codant pour un ARN guide ciblant le Cas9 permet l’abolition progressive de l’expression de Cas9. Ce protocole a été appliqué au développement d’une lignée cellulaire musculaire humaine RYR1-knock-out, qui a été caractérisée au niveau protéique et fonctionnel, pour confirmer l’élimination de cet important canal calcique impliqué dans la libération de calcium intracellulaire musculaire et dans le couplage excitation-contraction. La procédure décrite ici peut facilement être appliquée à d’autres gènes dans les cellules musculaires ou dans d’autres cellules difficiles à transfecter et produire des outils précieux pour étudier ces gènes dans les cellules humaines.
Avec les progrès du séquençage des gènes et l’identification de mutations dans les gènes de fonctions inconnues dans un tissu spécifique, le développement de modèles cellulaires pertinents pour comprendre la fonction d’un nouveau gène cible et confirmer son implication dans les mécanismes physiopathologiques connexes constitue un outil essentiel. En outre, ces modèles sont d’une importance majeure pour les développements thérapeutiques futurs 1,2 et constituent une alternative intéressante au développement de modèles animaux knock-out en ligne droite avec les recommandations internationales pour la réduction d....
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Les biopsies musculaires ont été obtenues auprès de la Banque des tissus pour la recherche (Myobank, partenaire du réseau européen EuroBioBank, Paris, France) conformément aux recommandations européennes et à la législation Français. Le consentement éclairé écrit a été obtenu de toutes les personnes. Les myoblastes immortalisés ont été aimablement produits par le Dr V. Mouly (Institut de myologie, Paris, France), et les protocoles ont été approuvés par le comité d’éthique de l’Institut de myologie (MESRI, n AC-2019-3502).
1. Conception du guide CRISPR
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Ce protocole a été appliqué aux myoblastes immortalisés d’un sujet sain15 (cellules dites HM, pour les myoblastes humains), dans lequel le RyR1 a déjà été caractérisé16, afin d’éliminer le gène RYR1 codant pour la protéine RyR1. La conception de l’ARN guide a été faite pour supprimer la séquence englobant une partie de l’exon 101 et de l’intron 101 du gène. La suppression d’une partie de l’exon 101 devrait entraîner une perturbation du cadre de lecture. De plus, l’.......
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Une étape majeure sur la voie de la caractérisation des gènes de fonction inconnue impliqués dans les pathologies est le développement de modèles cellulaires pertinents pour étudier la fonction de ces gènes. L’utilisation de l’édition de gènes à l’aide de CRISPR / Cas9 est un domaine de recherche en croissance exponentielle, et le développement de modèles knock-out tels que présentés ici est l’une de ses applications les plus largement utilisées. Dans ce contexte, nous proposons ici un protocole polyvalent pour développe.......
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Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.
Ces travaux ont été financés par des subventions de l’Association Française contre les myopathies (AFM-Téléthon) et d’Auvergne-Rhône Alpes Région (AURA).
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Anticorps anti-CACNA1S | Sigma-Aldrich | HPA048892 | Anticorps primaire |
| Blp I | NE BioLabs | R0585S | Enzyme de restriction |
| CalPhos Kit de transfection de mammifères | Takara | 631312 ; | Kit de transfection |
| Easy blot anti souris IgG GeneTex | GTX221667-01 | HRP anticorps secondaire | |
| Easy blot anti Rabbit IgG GeneTex | GTX221666 | HRP anticorps secondaire | |
| Fluo-4 direct Molecular | Sobes F10472 | Imagerie calcique | |
| GAPDH(14C10) Rabbit mAb ; | Cell Signaling Technology | #2118 | Anticorps primaire |
| HindIII | Fermentas | ER0501 | Enzyme de restriction |
| InFusion HD Precision Plus | Takara | 638920 | Kit de ligature |
| MasterMix Phusion High Fidelity avec GC | ThermoFisher Scientific | F532L | Mix pour réaction PCR avec anticorps haute fidélité Taq polymerase et dNTPs |
| Myosin Heavy Chain | DHSB | MF20 | Anticorps primaire |
| NucleoBond Xtra Maxi EF | Macherey-Nagel | REF ; 740424 | Maxipréparation Kit pour la purification des plasmides |
| NucleoSpin Gel et PCR Nettoyage | Macherey-Nagel | 740609 | Purification de l’ADN |
| NucleoSpin Tissue | Macherey-Nagel | 740952 | Kit pour l’extraction de l’ADN de la cellule |
| One Shot Stbl3 Chimiquement compétent E. coli | ThermoFisher Scientific | C737303 | Cellules chimiquement compétentes |
| Plasmide #87904 | Addgene | 87904 | Plasmide lentiviral codant pour le SpCas9 (pour LV-Cas9) |
| Plasmide #87919 | Addgene | 87919 | Squelette lentiviral pour l’insertion d’une cassette avec des guides (pour LV-guide-cible) |
| Plasmide #12260 | Addgene | 12260 | Plasmide lentiviral codant pour lentiviral Emballage lentiviral GAG POL |
| Plasmide #8454 | Addgene | 8454 | Plasmide lentiviral codant pour la production de particules rétrovirales lentivirales et MuLV |
| V5 Tag Anticorps monoclonal | Invitrogene | R96025 ; | Anticorps primaire |
| XL10-Gold Cellules ultracompétentes | Agilent | 200317 | Cellules chimiquement compétentes |
| Xma I | NE BioLabs | R0180S | Enzyme de restriction |
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