Summary

Single-Particle Cryo-EM-datainsamling med steglutning med Leginon

Published: July 01, 2022
doi:

Summary

Detta protokoll beskriver ett generaliserat och lättimplementerat schema för insamling av lutade enpartikeldata i kryo-EM-experiment. Ett sådant förfarande är särskilt användbart för att erhålla en högkvalitativ EM-karta för prover som lider av preferensorienteringsbias på grund av vidhäftning till luft-vattengränssnittet.

Abstract

Enpartikelanalys (SPA) med kryoelektronmikroskopi (kryo-EM) är nu en vanlig teknik för högupplöst strukturbiologi. Strukturbestämning av SPA bygger på att erhålla flera distinkta vyer av ett makromolekylärt objekt förglasat i ett tunt islager. Idealt sett skulle en samling likformigt fördelade slumpmässiga projektionsorienteringar uppgå till alla möjliga vyer av objektet, vilket ger upphov till rekonstruktioner som kännetecknas av isotrop riktningsupplösning. Men i verkligheten lider många prover av företrädesvis orienterade partiklar som fäster vid luft-vattengränssnittet. Detta leder till ojämna vinkelorienteringsfördelningar i datasetet och inhomogen Fourier-rumssampling i rekonstruktionen, vilket översätts till kartor som kännetecknas av anisotrop upplösning. Att luta provstadiet ger en generaliserbar lösning för att övervinna upplösningsanisotropi genom att förbättra enhetligheten i orienteringsfördelningarna och därmed isotropin för Fourierrumsprovtagning. Detta protokoll beskriver en automatiserad datainsamlingsstrategi i lutningssteg med hjälp av Leginon, en programvara för automatiserad bildinsamling. Proceduren är enkel att implementera, kräver ingen extra utrustning eller programvara och är kompatibel med de flesta standardtransmissionselektronmikroskop (TEM) som används för avbildning av biologiska makromolekyler.

Introduction

Tillkomsten av direkta elektrondetektorer under det senaste decenniet 1,2,3 har stimulerat en exponentiell ökning av antalet högupplösta strukturer av makromolekyler och makromolekylära sammansättningar lösta med hjälp av kryo-EM 4,5,6 med en partikel. Nästan alla renade makromolekylära arter förväntas vara mottagliga för strukturbestämning med kryo-EM, förutom de minsta proteinerna ~ 10 kDa i storlek eller under7. Mängden utgångsmaterial som behövs för preparering av nät och strukturbestämning är minst en storleksordning mindre än andra tekniker för strukturbestämning, såsom kärnmagnetisk resonansspektroskopi och röntgenkristallografi 4,5,6.

En huvudutmaning för strukturbestämning med kryo-EM innebär dock lämplig nätberedning för avbildning. En omfattande studie som utvärderade olika prover med olika förglasningsstrategier och galler föreslog att de flesta metoder för förglasning av prover på kryo-EM-galler leder till preferensvidhäftning av makromolekyler till luft-vattengränssnittet8. Sådan vidhäftning kan potentiellt orsaka fyra suboptimala resultat: (1) det makromolekylära provet denaturerar fullständigt, i vilket fall ingen framgångsrik datainsamling och bearbetning är möjlig; (2) provet denatureras delvis, i vilket fall det kan vara möjligt att erhålla strukturella insikter från regioner av makromolekylen som inte är skadade; (3) provet behåller den ursprungliga strukturen, men endast en uppsättning partikelorienteringar i förhållande till elektronstrålens riktning representeras i bilderna; (4) provet behåller sin ursprungliga struktur, och vissa men inte alla möjliga partikelorienteringar i förhållande till elektronstrålens riktning representeras i bilderna. För fall (3) och (4) hjälper lutad datainsamling till att minimera riktningsupplösningsanisotropi som påverkar den rekonstruerade kryo-EM-kartan och ger en generaliserbar lösning för en mängd olika prover9. Tekniskt sett kan lutning också gynna fall (2), eftersom denatureringen förmodligen sker vid luft-vattengränssnittet och på samma sätt begränsar antalet distinkta orienteringar som representeras i data. Omfattningen av orienteringsbias i datauppsättningen kan potentiellt ändras genom att experimentera med lösningstillsatser, men brist på bred tillämplighet hindrar dessa trial-and-error-metoder. Att luta provsteget i en enda optimerad lutningsvinkel är tillräckligt för att förbättra orienteringsfördelningen genom att ändra geometrin för avbildningsexperimentet9 (figur 1). På grund av den geometriska konfigurationen av det företrädesvis orienterade provet med avseende på elektronstrålen, för varje kluster av preferensorienteringar, genererar lutning av gallret en kon av belysningsvinklar med avseende på klustercentroiden. Därför sprider detta ut vyerna och förbättrar följaktligen Fourier-rymdprovtagning och isotropin för riktningsupplösning.

Det finns i praktiken vissa nackdelar med att luta scenen. Om du lutar provsteget införs en fokusgradient över synfältet, vilket kan påverka noggrannheten i uppskattningarna av kontrastöverföringsfunktionen (CTF). Insamling av lutande data kan också leda till ökad strålinducerad partikelrörelse orsakad av ökade laddningseffekter vid avbildning av lutande prover. Rutnätslutning leder också till en ökning av den uppenbara istjockleken, vilket i sin tur leder till bullrigare mikrografier och kan i slutändan påverka upplösningen av rekonstruktioner 5,9,10. Det kan vara möjligt att övervinna dessa problem genom att tillämpa avancerade beräkningsdatabehandlingsscheman som beskrivs kortfattat i protokoll- och diskussionsavsnitten. Slutligen kan lutning leda till ökad partikelöverlappning, vilket hindrar den efterföljande bildbehandlingsrörledningen. Även om detta kan mildras till viss del genom att optimera partikelkoncentrationen på nätet, är det ändå ett viktigt övervägande. Här beskrivs ett protokoll som är enkelt att implementera för lutande datainsamling med hjälp av Leginon mjukvarusvit (en automatiserad bildinsamlingsprogramvara), tillgänglig öppen åtkomst och kompatibel med ett brett spektrum av mikroskop11,12,13,14. Metoden kräver minst version 3.0 eller senare, med version 3.3 och framåt som innehåller dedikerade förbättringar för att möjliggöra lutande datainsamling. Ingen ytterligare programvara eller utrustning behövs för detta protokoll. Omfattande instruktioner om beräkningsinfrastruktur och installationsguider finns på annan plats15.

Protocol

1. Beredning av prov Använd rutnät som innehåller guldfolie och guldgallerstöd16 (se materialtabell) eftersom lutande datainsamling kan accentuera strålinducerad rörelse17.OBS: För den aktuella studien förglasades prover på galler med manuell dopp- och blottningsteknik18 i ett fuktat (mer än 80%) kylrum (~ 4 ° C). Undvik att använda galler som innehåller kopparstöd och kolfolie e…

Representative Results

DPS vid 0,3 mg/ml användes för att demonstrera avbildning vid 0°, 30° och 60° lutningar. Data från olika lutningsvinklar samlades in på samma rutnät i olika rutnätsregioner. CTF-upplösningen passar för högre vinkellutningar tenderar att vara sämre, vilket var fallet vid jämförelse av de tre dataseten i denna studie. Figur 4 visar jämförande representativa bilder och 2D-klassificeringsmedelvärden. Även om proteinkoncentrationen är oförändrad över de olika lutningsvinkla…

Discussion

Föredragen partikelorientering orsakad av provets vidhäftning till luft-vattengränssnittet är en av de sista stora flaskhalsarna för rutinmässig högupplöst strukturbestämning med kryo-EM SPA 4,5,6. Datainsamlingsschemat som presenteras här ger en lättimplementerad strategi för att förbättra orienteringsfördelningen av partiklar inom ett dataset. Vi noterar att protokollet inte kräver någon extra utrustning eller…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Bill Anderson, Charles Bowman och Jean-Christophe Ducom (TSRI) för hjälp med mikroskopi, Leginon installationer och dataöverföringsinfrastruktur. Vi tackar också Gordon Louie (Salk Institute) och Yong Zi Tan (National University of Singapore) för den kritiska läsningen av manuskriptet. Vi tackar Chris Russo (MRC Laboratory of Molecular Biology, Cambridge) för att ha försett oss med plasmiden för uttryck av DPS. Detta arbete stöddes av bidrag från US National Institutes of Health (U54AI150472, U54 AI170855 och R01AI136680 till DL), National Science Foundation (NSF MCB-2048095 till DL), Hearst Foundations (till DL) och Arthur och Julie Woodrow Chair (till J. P. N.).

Materials

Cryosparc Live v3.1.0+210216 Structura Biotechnology
DPS protein Purification adapted from protocol described in K.Naydenova et al IUCrJ. 2019 Nov 1; 6(Pt 6): 1086–1098.
K2 Summit Direct Electron Detector Gatan
Leginon software suite C Suloway et al Journal of Structural Biology 151 (1): pp. 41-60.
Manual plunging device Homemade guillotine-like device for vitrification of EM grids
Talos Arctica FEI/Thermo Fisher
UltrAufoil R1.2/1.3 300 mesh grids Quantifoil N1-A14nAu30-01

References

  1. Campbell, M. G., et al. Movies of ice-embedded particles enhance resolution in electron cryo-microscopy. Structure. 20 (11), 1823-1828 (2012).
  2. Bai, X. C., Fernandez, I. S., McMullan, G., Scheres, S. H. Ribosome structures to near-atomic resolution from thirty thousand cryo-EM particles. Elife. 2, 00461 (2013).
  3. Li, X. Electron counting and beam-induced motion correction enable near-atomic-resolution single-particle cryo-EM. Nature Methods. 10 (6), 584-590 (2013).
  4. Chua, E. Y. D., et al. cheaper: recent advances in cryo-electron microscopy. Annual Review of Biochemistry. , (2022).
  5. Lyumkis, D. Challenges and opportunities in cryo-EM single-particle analysis. Journal of Biological Chemistry. 294 (13), 5181-5197 (2019).
  6. Wu, M., Lander, G. C. Present and emerging methodologies in Cryo-EM single-particle analysis. Biophysical Journal. 119 (7), 1281-1289 (2020).
  7. Henderson, R. The potential and limitations of neutrons, electrons and X-rays for atomic resolution microscopy of unstained biological molecules. Quarterly Reviews of Biophysics. 28 (2), 171-193 (1995).
  8. Noble, A. J., et al. Routine single particle CryoEM sample and grid characterization by tomography. Elife. 7, 34257 (2018).
  9. Tan, Y. Z., et al. Addressing preferred specimen orientation in single-particle cryo-EM through tilting. Nature Methods. 14 (8), 793-796 (2017).
  10. Punjani, A., Rubinstein, J. L., Fleet, D. J., Brubaker, M. A. cryoSPARC: algorithms for rapid unsupervised cryo-EM structure determination. Nature Methods. 14 (3), 290-296 (2017).
  11. Potter, C. S., et al. Leginon: a system for fully automated acquisition of 1000 electron micrographs a day. Ultramicroscopy. 77 (3-4), 153-161 (1999).
  12. Suloway, C., et al. Automated molecular microscopy: The new Leginon system. Journal of Structural Biology. 151 (1), 41-60 (2005).
  13. Cheng, A., et al. Leginon: New features and applications. Protein Science. 30 (1), 136-150 (2021).
  14. Carragher, B., et al. Leginon: An automated system for acquisition of images from vitreous ice specimens. Journal of Structural Biology. 132 (1), 33-45 (2000).
  15. . NYSBC.org Homepage Available from: https://emg.nysbc.org/redmine/projects/leginon/wiki/Leginon_Homepage (2022)
  16. Russo, C. J., Passmore, L. A. Electron microscopy: Ultrastable gold substrates for electron cryomicroscopy. Science. 346, 1377-1380 (2014).
  17. Russo, C. J., Henderson, R. Charge accumulation in electron cryomicroscopy. Ultramicroscopy. 187, 43-49 (2018).
  18. Nguyen, H. P. M., McGuire, K. L., Cook, B. D., Herzik, M. A. Manual blot-and-plunge freezing of biological specimens for single-particle cryogenic electron microscopy. Journal of Visualized Experiments. (180), e62765 (2022).
  19. Patel, A., Toso, D., Litvak, A., Nogales, E. Efficient graphene oxide coating improves cryo-EM sample preparation and data collection from tilted grids. bioRxiv. , (2021).
  20. Naydenova, K., Peet Mathew, J., Russo Christopher J, J. Multifunctional graphene supports for electron cryomicroscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (24), 11718-11724 (2019).
  21. Naydenova, K., et al. CryoEM at 100 keV: a demonstration and prospects. IUCrJ. 6 (6), 1086-1098 (2019).
  22. Herzik, M. A., Gonen, T., Nannenga, B. L. . cryoEM: Methods and Protocols. , 125-144 (2021).
  23. Cash, J. N., Kearns, S., Li, Y., Cianfrocco, M. A. High-resolution cryo-EM using beam-image shift at 200 keV. IUCrJ. 7 (6), 1179-1187 (2020).
  24. Peck, J. V., Fay, J. F., Strauss, J. D. High-speed high-resolution data collection on a 200 keV cryo-TEM. IUCrJ. 9 (2), 243-252 (2022).
  25. Bouvette, J., et al. Beam image-shift accelerated data acquisition for near-atomic resolution single-particle cryo-electron tomography. Nature Communications. 12 (1), 1957 (1957).
  26. Cheng, A., et al. High resolution single particle cryo-electron microscopy using beam-image shift. Journal of Structural Biology. 204 (2), 270-275 (2018).
  27. Tegunov, D., Cramer, P. Real-time cryo-electron microscopy data preprocessing with Warp. Nature Methods. 16 (11), 1146-1152 (2019).
  28. . Structura Biotechnology Inc Available from: https://cryosparc.com/live (2022)
  29. DiIorio, M. C., Kulczyk, A. W. A robust single-particle cryo-electron microscopy (cryo-EM) processing workflow with cryoSPARC, RELION, and Scipion. Journal of Visualized Experiments. (179), e63387 (2022).
  30. Baldwin, P. R., Lyumkis, D. Non-uniformity of projection distributions attenuates resolution in Cryo-EM. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 150, 160-183 (2020).
  31. Baldwin, P. R., Lyumkis, D. Tools for visualizing and analyzing Fourier space sampling in Cryo-EM. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 160, 53-65 (2021).
  32. Aiyer, S., Zhang, C., Baldwin, P. R., Lyumkis, D., Gonen, T., Nannenga, B. L. . cryoEM: Methods and Protocols. , 161-187 (2021).
  33. Glaeser, R. M., et al. Defocus-dependent Thon-ring fading). Ultramicroscopy. 222, 113213 (2021).
check_url/fr/64136?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Aiyer, S., Strutzenberg, T. S., Bowman, M. E., Noel, J. P., Lyumkis, D. Single-Particle Cryo-EM Data Collection with Stage Tilt using Leginon. J. Vis. Exp. (185), e64136, doi:10.3791/64136 (2022).

View Video