Summary

Rottebrennmodell for å studere fulltykkelse kutan termisk forbrenning og infeksjon

Published: August 23, 2022
doi:

Summary

En modell som etterligner det kliniske scenariet for brannskade og infeksjon er nødvendig for å fremme brannskadeforskning. Den nåværende protokollen demonstrerer en enkel og reproduserbar rottebrenninfeksjonsmodell som er sammenlignbar med den hos mennesker. Dette forenkler studiet av brannskader og infeksjoner etter brannskade for å utvikle nye aktuelle antibiotikabehandlinger.

Abstract

Brenninduksjonsmetoder er inkonsekvent beskrevet i rottemodeller. En enhetlig brannsårmodell, som representerer det kliniske scenariet, er nødvendig for å utføre reproduserbar brannskadeforskning. Den nåværende protokollen beskriver en enkel og reproduserbar metode for å skape ~ 20% total kroppsoverflate (TBSA) full tykkelse forbrenninger hos rotter. Her ble en kobberstang på 22,89 cm2 (5,4 cm diameter) oppvarmet ved 97 °C i et vannbad påført rottehudoverflaten for å indusere brannskaden. En kobberstang med høy varmeledningsevne var i stand til å spre varmen dypere i hudvevet for å skape en brenning i full tykkelse. Histologianalyse viser svekket epidermis med koagulativ skade på fulltykkelsesutbredelsen av dermis og subkutant vev. I tillegg er denne modellen representativ for de kliniske situasjonene observert hos sykehusinnlagte brannskadepasienter etter brannskade som immundysregulering og bakterielle infeksjoner. Modellen kan rekapitulere den systemiske bakterielle infeksjonen av både gram-positive og gramnegative bakterier. Avslutningsvis presenterer denne artikkelen en lettlært og robust rottebrenningsmodell som etterligner de kliniske situasjonene, inkludert immundysregulering og bakterielle infeksjoner, noe som er av betydelig nytte for utvikling av nye aktuelle antibiotika mot brannsår og infeksjoner.

Introduction

Brannskader er blant de mest ødeleggende former for traumer, med dødelighet som når 12% selv i spesialiserte brannskadesentre 1,2,3. Ifølge nylig publiserte rapporter krever ~ 486 000 brannskadepasienter medisinsk behandling årlig i USA, med nesten 3 500 dødsfall 1,2,3,4,5,6. Brannskade medfører en stor utfordring for pasientens immunsystem og skaper et betydelig åpent sår, som er sakte å helbrede, slik at de blir utsatt for kutan, lunge og systemisk kolonisering med nosokomiale, opportunistiske bakterier. Immundysregulering kombinert med bakterieinfeksjonen er assosiert med økt sykelighet og dødelighet hos brannskadepasienter7.

En dyreforbrennings- og infeksjonsmodell er avgjørende for å studere patogenesen av bakterielle infeksjoner etter hudskader og immunundertrykkelse forbundet med brannskader. Slike modeller gjør det mulig å designe og evaluere nye metoder for behandling av bakterielle infeksjoner hos brannskadepasienter. Rotter og mennesker deler lignende hudfysiologiske og patologiske egenskaper som tidligere er dokumentert8. I tillegg er rotter mindre i størrelse, noe som gjør dem enklere å håndtere, rimeligere og enklere å anskaffe og vedlikeholde enn større dyremodeller.

Disse egenskapene gjør rotter til et ideelt modelldyr for å studere brannskader og infeksjoner9. Dessverre er teknikken for brenninduksjon inkonsekvent og ofte minimalt beskrevet 10,11,12,13,14. Den nåværende protokollen er utformet for å utvikle en enkel, kostnadseffektiv og reproduserbar prosedyre for å skape en konsistent brannskade i full tykkelse i en rottemodell som simulerer det kliniske scenariet og kan brukes til å evaluere immunsuppresjon og bakteriell infeksjon.

Protocol

Alle prosedyrer ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved University of North Carolina og ble utført i samsvar med de etablerte retningslinjene. Mannlige og kvinnelige Sprague Dawley-rotter (250-300 g) i alderen 7-9 uker gamle ble brukt til forsøkene. Alle dyrene ble plassert i en 12 timer: 12 h lys-mørk syklus med fri tilgang til mat og vann ad libitum. Arbeid alltid med din institusjonelle veterinær om en smertestillende plan før studiestart. <strong…

Representative Results

Protokollen som presenteres her er svært reproduserbar og resulterte i en tredjegrads brannskade i full tykkelse hos rotter. Brannsåret fremstår voksaktig hvitt etter brannskadeinduksjon (figur 2B). Fargen på brannskaden endret seg fra hvit til brun i løpet av 72 timer etter forbrenning (figur 2B-E). Histologisk analyse bekreftet en brenning i full tykkelse (dybde >2,61 mm ved 24 timer etter bren…

Discussion

Flere brannskademodeller er presentert for å studere patofysiologien ved brannskade 8,12,16,17. I denne studien benyttet vi en rottemodell for å utvikle en enkel og reproduserbar protokoll for å indusere en full tykkelsesforbrenning etterfulgt av bakteriell infeksjon for å simulere et infisert brenntraume hos pasienter. Valget av rotte som dyremodell for å etterligne menneskelige forhold e…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker divisjonen for komparativ medisin ved University of North Carolina for levering og omsorg for dyr. Vi takker Lauren Ralph og Mia Evangelista i Pathology Services Core for ekspert teknisk assistanse med histopatologi / digital patologi, inkludert vevsseksjonering og bildebehandling. Denne forskningen ble støttet av et forskningsstipend fra Forsvarsdepartementet (Award number W81XWH-20-1-0500, GR og TV).

Materials

1 mL syringe BD, USA 309597 Used to inject the analgesic
1.7 mL Microtube Olympus, USA 24-282 Used to carry morphine
10% NBF VWR, USA 16004-115 Used to fix the skin piece for staining
30 mL syringe BD, USA 302832 Used to inject the lactate ringer solution
70% ethyl alcohol Fischer Scientific, USA BP28184
Aperio AT2 Digital Pathology  Slide Scanner with ImageScope software Aperio, Technologies Inc., Vista, CA, USA n/a Scanning of H & E slides and analysis
Cetrimide agar plates BD, USA 285420 Selective media plates for Pseudomonas aeruginosa growth
Copper rods n/a n/a Used to induce the burn injury
Cotton tipped applicators OMEGA Surgical supply, USA 4225-IMC Used to apply eye ointment
Electric shaver Oster, USA Golden A5 Used to remove the dorsal side hairs
Eye lube Dechra, UK n/a The eye wetting agent to provide long lasting comfort and avoid eye dryness
Fluff filled underpads Medline, USA MSC281225 Used in the burn procedure
Forcep F.S.T. 11027-12 Used to hold the skin piece
Gauze sponges Oasis, USA PK412 Used to clean the applied nair cream from the dorsal side 
Heat-resistant gloves n/a n/a Used to hold the heated copper rods
Hematology Analyzer IDEXX laboratories, USA ProCyte Dx
Induction chamber Kent Scientific, USA vetFlo-0730 Used to anesthesize the animals
Insulin syringe BD, USA 329461
Isoflurane Pivetal, USA NDC46066-755-04 Used to anesthesized rats to induce a loss of consciousness
Isoflurane vaporiser n/a n/a
Lactated ringer's solution icumedical, USA NDC0990-7953-09 Used to resuscitate the rats
L-shaped spreader Fischer Scientific, USA 14-665-230
Mannitol Agar BD, USA 211407 Selective media plates for Staphylococcus aureus growth
Minicollect tubes (K2EDTA) greiner bio-one, USA 450480 Used to collect the blood
Morphine Mallinckrodt, UK NDC0406-8003-30 This analgesia was used to induce the inability to feel burn injury pain
Muller Hinton Broth BD, USA 275730
Muller Hinton II Agar BD, USA 211438
Nair hair removal lotion Nair, USA n/a Used to remove the residual hairs on dorsal side
Needle 23 G BD, USA 305193 Used to inject the lactate ringer solution
Normal saline n/a n/a
Spectrophotometer ThermoScientific, USA Genesys 30
Sprague-Dawley rats, male and female Charles River Labs n/a 7-9 weeks old for burn induction
Surgical Scissor F.S.T. 14501-14 Used to cut the desired skin piece
Tissue collection tubes Globe Scientific 220101236
Tissue Homogenizer Kinematica, Inc, USA POLYTRON PT2100 Used to homogenize the tissue samples
Water bath Fischer Scientific, USA n/a Used to induce the burn injury
Weighted heating pad Comfytemp, USA n/a Used during the procedure to keep rat's body warm

References

  1. Peck, M., Molnar, J., Swart, D. A global plan for burn prevention and care. Bulletin of the World Health Organization. 87, 802-803 (2009).
  2. American Burn Association. Burn incidence and treatment in the United States: 2011 fact sheet. Chicago: American Burn Association. , (2011).
  3. Miller, S. F., et al. National burn repository 2007 report: a synopsis of the 2007 call for data. Journal of Burn Care & Research. 29 (6), 862-870 (2008).
  4. Kruger, E., Kowal, S., Bilir, S. P., Han, E., Foster, K. Relationship between patient characteristics and number of procedures as well as length of stay for patients surviving severe burn injuries: analysis of the American Burn Association National Burn Repository. Journal of Burn Care & Research. 41 (5), 1037-1044 (2020).
  5. American Burn Association. Burn incidence and treatment in the United States: 2016. Burn Incidence Fact Sheet. Chicago: American Burn Association. , (2016).
  6. Willis, M. L., et al. Plasma extracellular vesicles released after severe burn injury modulate macrophage phenotype and function. Journal of Leukocyte Biology. 111 (1), 33-49 (2022).
  7. Kartchner, L. B., et al. One-hit wonder: late after burn injury, granulocytes can clear one bacterial infection but cannot control a subsequent infection. Burns. 45 (3), 627-640 (2019).
  8. Abdullahi, A., Amini-Nik, S., Jeschke, M. Animal models in burn research. Cellular and Molecular Life Sciences. 71 (17), 3241-3255 (2014).
  9. Cai, E. Z., et al. Creation of consistent burn wounds: a rat model. Archives of Plastic Surgery. 41 (4), 317 (2014).
  10. Pessolato, A. G. T., dos Santos Martins, D., Ambrósio, C. E., Mançanares, C. A. F., de Carvalho, A. F. Propolis and amnion reepithelialise second-degree burns in rats. Burns. 37 (7), 1192-1201 (2011).
  11. Gurung, S., Škalko-Basnet, N. Wound healing properties of Carica papaya latex: in vivo evaluation in mice burn model. Journal of Ethnopharmacology. 121 (2), 338-341 (2009).
  12. Eloy, R., Cornillac, A. Wound healing of burns in rats treated with a new amino acid copolymer membrane. Burns. 18 (5), 405-411 (1992).
  13. Upadhyay, N., et al. Safety and healing efficacy of Sea buckthorn (Hippophae rhamnoides L.) seed oil on burn wounds in rats. Food and Chemical Toxicology. 47 (6), 1146-1153 (2009).
  14. El-Kased, R. F., Amer, R. I., Attia, D., Elmazar, M. M. Honey-based hydrogel: In vitro and comparative In vivo evaluation for burn wound healing. Scientific Reports. 7 (1), 1-11 (2017).
  15. Fan, G. -. Y., et al. Severe burn injury in a swine model for clinical dressing assessment. Journal of Visualized Experiments. (141), e57942 (2018).
  16. Davenport, L., Dobson, G., Letson, H. A new model for standardising and treating thermal injury in the rat. MethodsX. 6, 2021-2027 (2019).
  17. Kaufman, T., Lusthaus, S., Sagher, U., Wexler, M. Deep partial skin thickness burns: a reproducible animal model to study burn wound healing. Burns. 16 (1), 13-16 (1990).
  18. Casal, D., et al. Blood supply to the integument of the abdomen of the rat: a surgical perspective. Plastic and Reconstructive Surgery Global Open. 5 (9), (2017).
  19. Casal, D., et al. A model of free tissue transfer: the rat epigastric free flap. Journal of Visualized Experiments. (119), e55281 (2017).
  20. Naldaiz-Gastesi, N., Bahri, O. A., Lopez de Munain, A., McCullagh, K. J., Izeta, A. The panniculus carnosus muscle: an evolutionary enigma at the intersection of distinct research fields. Journal of Anatomy. 233 (3), 275-288 (2018).
  21. Weber, B., et al. Modeling trauma in rats: similarities to humans and potential pitfalls to consider. Journal of Translational Medicine. 17 (1), 1-19 (2019).
  22. Nguyen, J. Q. M., et al. Spatial frequency domain imaging of burn wounds in a preclinical model of graded burn severity. Journal of Biomedical Optics. 18 (6), 066010 (2013).
  23. Sobral, C., Gragnani, A., Morgan, J., Ferreira, L. Inhibition of proliferation of Pseudomonas aeruginosa by KGF in an experimental burn model using human cultured keratinocytes. Burns. 33 (5), 613-620 (2007).
  24. Olivera, F., Bevilacqua, L., Anaruma, C., Boldrini Sde, C., Liberti, E. Morphological changes in distant muscle fibers following thermal injury i n Wistar rats. Acta Cirurgica Brasileira. 25, 525-528 (2010).
  25. Davies, J. W. . Physiological Responses to Burning Injury. , (1982).
  26. Neely, C. J., et al. Flagellin treatment prevents increased susceptibility to systemic bacterial infection after injury by inhibiting anti-inflammatory IL-10+ IL-12-neutrophil polarization. PloS One. 9 (1), e85623 (2014).
  27. Dunn, J. L., et al. Direct detection of blood nitric oxide reveals a burn-dependent decrease of nitric oxide in response to Pseudomonas aeruginosa infection. Burns. 42 (7), 1522-1527 (2016).
  28. Gouma, E., et al. A simple procedure for estimation of total body surface area and determination of a new value of Meeh’s constant in rats. Laboratory Animals. 46 (1), 40-45 (2012).
  29. Dawson, N. The surface-area/body-weight relationship in mice. Australian Journal of Biological Sciences. 20 (3), 687-690 (1967).
  30. Moins-Teisserenc, H., et al. Severe altered immune status after burn injury is associated with bacterial infection and septic shock. Frontiers in Immunology. 12, 529 (2021).
  31. Robins, E. V. Immunosuppression of the burned patient. Critical Care Nursing Clinics. 1 (4), 767-774 (1989).
check_url/fr/64345?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Sharma, R., Yeshwante, S., Vallé, Q., Hussein, M., Thombare, V., McCann, S. M., Maile, R., Li, J., Velkov, T., Rao, G. Rat Burn Model to Study Full-Thickness Cutaneous Thermal Burn and Infection. J. Vis. Exp. (186), e64345, doi:10.3791/64345 (2022).

View Video