Summary

Rotteforbrændingsmodel til undersøgelse af kutan termisk forbrænding og infektion i fuld tykkelse

Published: August 23, 2022
doi:

Summary

En model, der efterligner det kliniske scenarie med brandskade og infektion, er nødvendig for at fremme brandsårsforskning. Denne protokol demonstrerer en enkel og reproducerbar infektionsmodel for rotteforbrænding, der kan sammenlignes med den hos mennesker. Dette letter undersøgelsen af forbrænding og infektioner efter forbrænding for at udvikle nye topiske antibiotikabehandlinger.

Abstract

Brændeinduktionsmetoder er inkonsekvent beskrevet i rottemodeller. En ensartet brandsårsmodel, som repræsenterer det kliniske scenarie, er nødvendig for at udføre reproducerbar brandsårsforskning. Denne protokol beskriver en enkel og reproducerbar metode til at skabe ~ 20% total body surface area (TBSA) forbrændinger i fuld tykkelse hos rotter. Her blev en 22,89 cm2 (5,4 cm diameter) kobberstang opvarmet til 97 °C i et vandbad påført rottens hudoverflade for at fremkalde brandskaden. En kobberstang med høj varmeledningsevne var i stand til at sprede varmen dybere i hudvævet for at skabe en forbrænding i fuld tykkelse. Histologianalyse viser svækket epidermis med koagulativ skade på dermis og det subkutane vævs fulde tykkelse. Derudover er denne model repræsentativ for de kliniske situationer, der observeres hos indlagte brandsårspatienter efter forbrændingsskader, såsom immundysregulering og bakterielle infektioner. Modellen kan rekapitulere den systemiske bakterielle infektion med både grampositive og gramnegative bakterier. Afslutningsvis præsenterer dette papir en let at lære og robust rotteforbrændingsmodel, der efterligner de kliniske situationer, herunder immundysregulering og bakterielle infektioner, hvilket er af betydelig nytte for udviklingen af nye topiske antibiotika til brandsår og infektioner.

Introduction

Forbrændingsskader er blandt de mest ødelæggende former for traumer, hvor dødeligheden når 12% selv i specialiserede forbrændingscentre 1,2,3. Ifølge nyligt offentliggjorte rapporter kræver ~ 486,000 brandsårspatienter lægehjælp årligt i USA, med næsten 3,500 dødsfald 1,2,3,4,5,6. Forbrændingsskader udgør en stor udfordring for patienternes immunsystem og skaber et betydeligt åbent sår, som er langsomt at helbrede, hvilket efterlader dem modtagelige for kutan, lunge- og systemisk kolonisering med nosokomiale, opportunistiske bakterier. Immundysregulering kombineret med bakterieinfektionen er forbundet med øget sygelighed og dødelighed hos brandsårspatienter7.

En dyreforbrændings- og infektionsmodel er afgørende for at studere patogenesen af bakterielle infektioner efter hudskader og immunundertrykkelse forbundet med forbrændingstraumer. Sådanne modeller muliggør design og evaluering af nye metoder til behandling af bakterielle infektioner hos brandsårspatienter. Rotter og mennesker har lignende hudfysiologiske og patologiske egenskaber, som tidligere er dokumenteret8. Derudover er rotter mindre i størrelse, hvilket gør dem lettere at håndtere, mere overkommelige og lettere at anskaffe og vedligeholde end større dyremodeller.

Disse egenskaber gør rotter til et ideelt modeldyr til at studere forbrændinger og infektioner9. Desværre er teknikken til forbrændingsinduktion inkonsekvent og ofte minimalt beskrevet 10,11,12,13,14. Denne protokol er designet til at udvikle en enkel, omkostningseffektiv og reproducerbar procedure til at skabe en konsistent forbrændingsskade i fuld tykkelse i en rottemodel, der simulerer det kliniske scenarie og kan bruges til at evaluere immunsuppression og bakteriel infektion.

Protocol

Alle procedurer blev godkendt af Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved University of North Carolina og blev udført i overensstemmelse med dets etablerede retningslinjer. Han- og hunrotter (250-300 g) i alderen 7-9 uger blev brugt til forsøgene. Alle dyr blev opstaldet i en 12 timer:12 timers lys-mørk cyklus med fri adgang til mad og vand ad libitum. Samarbejd altid med din institutionsdyrlæge om en smertestillende plan inden studiestart. 1. Forberedelse af …

Representative Results

Protokollen, der præsenteres her, er meget reproducerbar og resulterede i en tredjegrads brændeskade i fuld tykkelse hos rotter. Brandsåret fremstår voksagtigt hvidt efter induktion af forbrænding (figur 2B). Farven på brandskaden ændrede sig fra hvid til brun i løbet af 72 timer efter forbrænding (figur 2B-E). Histologisk analyse bekræftede en forbrænding i fuld tykkelse (dybde >2,61 mm ve…

Discussion

Flere forbrændingsmodeller er blevet præsenteret for at studere patofysiologien af brandskade 8,12,16,17. I denne undersøgelse anvendte vi en rottemodel til at udvikle en enkel og reproducerbar protokol til at inducere en forbrænding i fuld tykkelse efterfulgt af bakteriel infektion for at simulere et inficeret forbrændingstraume hos patienter. Valget af rotten som dyremodel til at efterli…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Division of Comparative Medicine ved University of North Carolina for levering og pleje af dyr. Vi takker Lauren Ralph og Mia Evangelista i Pathology Services Core for ekspert teknisk assistance med histopatologi / digital patologi, herunder vævssektionering og billeddannelse. Denne forskning blev støttet af en forskningsbevilling fra forsvarsministeriet (prisnummer W81XWH-20-1-0500, GR og TV).

Materials

1 mL syringe BD, USA 309597 Used to inject the analgesic
1.7 mL Microtube Olympus, USA 24-282 Used to carry morphine
10% NBF VWR, USA 16004-115 Used to fix the skin piece for staining
30 mL syringe BD, USA 302832 Used to inject the lactate ringer solution
70% ethyl alcohol Fischer Scientific, USA BP28184
Aperio AT2 Digital Pathology  Slide Scanner with ImageScope software Aperio, Technologies Inc., Vista, CA, USA n/a Scanning of H & E slides and analysis
Cetrimide agar plates BD, USA 285420 Selective media plates for Pseudomonas aeruginosa growth
Copper rods n/a n/a Used to induce the burn injury
Cotton tipped applicators OMEGA Surgical supply, USA 4225-IMC Used to apply eye ointment
Electric shaver Oster, USA Golden A5 Used to remove the dorsal side hairs
Eye lube Dechra, UK n/a The eye wetting agent to provide long lasting comfort and avoid eye dryness
Fluff filled underpads Medline, USA MSC281225 Used in the burn procedure
Forcep F.S.T. 11027-12 Used to hold the skin piece
Gauze sponges Oasis, USA PK412 Used to clean the applied nair cream from the dorsal side 
Heat-resistant gloves n/a n/a Used to hold the heated copper rods
Hematology Analyzer IDEXX laboratories, USA ProCyte Dx
Induction chamber Kent Scientific, USA vetFlo-0730 Used to anesthesize the animals
Insulin syringe BD, USA 329461
Isoflurane Pivetal, USA NDC46066-755-04 Used to anesthesized rats to induce a loss of consciousness
Isoflurane vaporiser n/a n/a
Lactated ringer's solution icumedical, USA NDC0990-7953-09 Used to resuscitate the rats
L-shaped spreader Fischer Scientific, USA 14-665-230
Mannitol Agar BD, USA 211407 Selective media plates for Staphylococcus aureus growth
Minicollect tubes (K2EDTA) greiner bio-one, USA 450480 Used to collect the blood
Morphine Mallinckrodt, UK NDC0406-8003-30 This analgesia was used to induce the inability to feel burn injury pain
Muller Hinton Broth BD, USA 275730
Muller Hinton II Agar BD, USA 211438
Nair hair removal lotion Nair, USA n/a Used to remove the residual hairs on dorsal side
Needle 23 G BD, USA 305193 Used to inject the lactate ringer solution
Normal saline n/a n/a
Spectrophotometer ThermoScientific, USA Genesys 30
Sprague-Dawley rats, male and female Charles River Labs n/a 7-9 weeks old for burn induction
Surgical Scissor F.S.T. 14501-14 Used to cut the desired skin piece
Tissue collection tubes Globe Scientific 220101236
Tissue Homogenizer Kinematica, Inc, USA POLYTRON PT2100 Used to homogenize the tissue samples
Water bath Fischer Scientific, USA n/a Used to induce the burn injury
Weighted heating pad Comfytemp, USA n/a Used during the procedure to keep rat's body warm

References

  1. Peck, M., Molnar, J., Swart, D. A global plan for burn prevention and care. Bulletin of the World Health Organization. 87, 802-803 (2009).
  2. American Burn Association. Burn incidence and treatment in the United States: 2011 fact sheet. Chicago: American Burn Association. , (2011).
  3. Miller, S. F., et al. National burn repository 2007 report: a synopsis of the 2007 call for data. Journal of Burn Care & Research. 29 (6), 862-870 (2008).
  4. Kruger, E., Kowal, S., Bilir, S. P., Han, E., Foster, K. Relationship between patient characteristics and number of procedures as well as length of stay for patients surviving severe burn injuries: analysis of the American Burn Association National Burn Repository. Journal of Burn Care & Research. 41 (5), 1037-1044 (2020).
  5. American Burn Association. Burn incidence and treatment in the United States: 2016. Burn Incidence Fact Sheet. Chicago: American Burn Association. , (2016).
  6. Willis, M. L., et al. Plasma extracellular vesicles released after severe burn injury modulate macrophage phenotype and function. Journal of Leukocyte Biology. 111 (1), 33-49 (2022).
  7. Kartchner, L. B., et al. One-hit wonder: late after burn injury, granulocytes can clear one bacterial infection but cannot control a subsequent infection. Burns. 45 (3), 627-640 (2019).
  8. Abdullahi, A., Amini-Nik, S., Jeschke, M. Animal models in burn research. Cellular and Molecular Life Sciences. 71 (17), 3241-3255 (2014).
  9. Cai, E. Z., et al. Creation of consistent burn wounds: a rat model. Archives of Plastic Surgery. 41 (4), 317 (2014).
  10. Pessolato, A. G. T., dos Santos Martins, D., Ambrósio, C. E., Mançanares, C. A. F., de Carvalho, A. F. Propolis and amnion reepithelialise second-degree burns in rats. Burns. 37 (7), 1192-1201 (2011).
  11. Gurung, S., Škalko-Basnet, N. Wound healing properties of Carica papaya latex: in vivo evaluation in mice burn model. Journal of Ethnopharmacology. 121 (2), 338-341 (2009).
  12. Eloy, R., Cornillac, A. Wound healing of burns in rats treated with a new amino acid copolymer membrane. Burns. 18 (5), 405-411 (1992).
  13. Upadhyay, N., et al. Safety and healing efficacy of Sea buckthorn (Hippophae rhamnoides L.) seed oil on burn wounds in rats. Food and Chemical Toxicology. 47 (6), 1146-1153 (2009).
  14. El-Kased, R. F., Amer, R. I., Attia, D., Elmazar, M. M. Honey-based hydrogel: In vitro and comparative In vivo evaluation for burn wound healing. Scientific Reports. 7 (1), 1-11 (2017).
  15. Fan, G. -. Y., et al. Severe burn injury in a swine model for clinical dressing assessment. Journal of Visualized Experiments. (141), e57942 (2018).
  16. Davenport, L., Dobson, G., Letson, H. A new model for standardising and treating thermal injury in the rat. MethodsX. 6, 2021-2027 (2019).
  17. Kaufman, T., Lusthaus, S., Sagher, U., Wexler, M. Deep partial skin thickness burns: a reproducible animal model to study burn wound healing. Burns. 16 (1), 13-16 (1990).
  18. Casal, D., et al. Blood supply to the integument of the abdomen of the rat: a surgical perspective. Plastic and Reconstructive Surgery Global Open. 5 (9), (2017).
  19. Casal, D., et al. A model of free tissue transfer: the rat epigastric free flap. Journal of Visualized Experiments. (119), e55281 (2017).
  20. Naldaiz-Gastesi, N., Bahri, O. A., Lopez de Munain, A., McCullagh, K. J., Izeta, A. The panniculus carnosus muscle: an evolutionary enigma at the intersection of distinct research fields. Journal of Anatomy. 233 (3), 275-288 (2018).
  21. Weber, B., et al. Modeling trauma in rats: similarities to humans and potential pitfalls to consider. Journal of Translational Medicine. 17 (1), 1-19 (2019).
  22. Nguyen, J. Q. M., et al. Spatial frequency domain imaging of burn wounds in a preclinical model of graded burn severity. Journal of Biomedical Optics. 18 (6), 066010 (2013).
  23. Sobral, C., Gragnani, A., Morgan, J., Ferreira, L. Inhibition of proliferation of Pseudomonas aeruginosa by KGF in an experimental burn model using human cultured keratinocytes. Burns. 33 (5), 613-620 (2007).
  24. Olivera, F., Bevilacqua, L., Anaruma, C., Boldrini Sde, C., Liberti, E. Morphological changes in distant muscle fibers following thermal injury i n Wistar rats. Acta Cirurgica Brasileira. 25, 525-528 (2010).
  25. Davies, J. W. . Physiological Responses to Burning Injury. , (1982).
  26. Neely, C. J., et al. Flagellin treatment prevents increased susceptibility to systemic bacterial infection after injury by inhibiting anti-inflammatory IL-10+ IL-12-neutrophil polarization. PloS One. 9 (1), e85623 (2014).
  27. Dunn, J. L., et al. Direct detection of blood nitric oxide reveals a burn-dependent decrease of nitric oxide in response to Pseudomonas aeruginosa infection. Burns. 42 (7), 1522-1527 (2016).
  28. Gouma, E., et al. A simple procedure for estimation of total body surface area and determination of a new value of Meeh’s constant in rats. Laboratory Animals. 46 (1), 40-45 (2012).
  29. Dawson, N. The surface-area/body-weight relationship in mice. Australian Journal of Biological Sciences. 20 (3), 687-690 (1967).
  30. Moins-Teisserenc, H., et al. Severe altered immune status after burn injury is associated with bacterial infection and septic shock. Frontiers in Immunology. 12, 529 (2021).
  31. Robins, E. V. Immunosuppression of the burned patient. Critical Care Nursing Clinics. 1 (4), 767-774 (1989).
check_url/fr/64345?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Sharma, R., Yeshwante, S., Vallé, Q., Hussein, M., Thombare, V., McCann, S. M., Maile, R., Li, J., Velkov, T., Rao, G. Rat Burn Model to Study Full-Thickness Cutaneous Thermal Burn and Infection. J. Vis. Exp. (186), e64345, doi:10.3791/64345 (2022).

View Video