Summary

Designe en bioreaktor for å forbedre datainnsamling og modellere gjennomstrømning av konstruert hjertevev

Published: June 02, 2023
doi:

Summary

Tredimensjonalt hjertevev bioengineered ved hjelp av stamcelleavledede kardiomyocytter har dukket opp som lovende modeller for å studere sunt og sykt humant myokard in vitro , samtidig som de rekapitulerer viktige aspekter ved den opprinnelige hjertenisjen. Dette manuskriptet beskriver en protokoll for fremstilling og analyse av høyt innhold konstruert hjertevev generert fra humane induserte pluripotente stamcelleavledede kardiomyocytter.

Abstract

Hjertesvikt er fortsatt den ledende dødsårsaken over hele verden, noe som skaper et presserende behov for bedre prekliniske modeller av det menneskelige hjerte. Vevsteknikk er avgjørende for grunnvitenskapelig hjerteforskning; in vitro human cellekultur eliminerer forskjellene mellom artene i dyremodeller, mens et mer vevslignende 3D-miljø (f.eks. med ekstracellulær matrise og heterocellulær kobling) simulerer in vivo-forhold i større grad enn tradisjonell todimensjonal kultur på petriskåler av plast. Imidlertid krever hvert modellsystem spesialisert utstyr, for eksempel spesialdesignede bioreaktorer og funksjonelle vurderingsenheter. I tillegg er disse protokollene ofte kompliserte, arbeidskrevende og plaget av svikt i de små, delikate vevene.

Denne artikkelen beskriver en prosess for å generere et robust humant konstruert hjertevev (hECT) modellsystem ved bruk av induserte pluripotente stamcelleavledede kardiomyocytter for langsgående måling av vevsfunksjon. Seks hekter med lineær stripegeometri dyrkes parallelt, med hver hECT suspendert fra et par kraftfølende polydimetylsiloksan (PDMS) innlegg festet til PDMS-stativer. Hvert innlegg er avkortet med en svart PDMS stabil postsporing (SPoT), en ny funksjon som forbedrer brukervennligheten, gjennomstrømningen, vevsretensjonen og datakvaliteten. Formen muliggjør pålitelig optisk sporing av postavbøyninger, noe som gir forbedrede rykningskraftsporinger med absolutt aktiv og passiv spenning. Hettegeometrien eliminerer vevssvikt på grunn av at hekter glir av stolpene, og da de involverer et andre trinn etter PDMS-rackfabrikasjon, kan SPoTs legges til eksisterende PDMS-postbaserte design uten store endringer i bioreaktorfabrikasjonsprosessen.

Systemet brukes til å demonstrere viktigheten av å måle hECT-funksjonen ved fysiologiske temperaturer og viser stabil vevsfunksjon under datainnsamling. Oppsummert beskriver vi et toppmoderne modellsystem som reproduserer viktige fysiologiske forhold for å fremme biofidelitet, effektivitet og strenghet av konstruerte hjertevev for in vitro-applikasjoner .

Introduction

Konstruerte hjertevevsmodeller kommer i et mangfoldig utvalg av geometrier og konfigurasjoner for å rekapitulere ulike aspekter av den opprinnelige hjertenisjen som er vanskelig å oppnå med tradisjonell todimensjonal cellekultur. En av de vanligste konfigurasjonene er den lineære vevsstrimmelen, med fleksible ankre i hver ende for å indusere vevets selvmontering og gi vevet en definert forspenning og en avlesning av de resulterende rykningskreftene 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11, 12,13,14,15,16,17,18,19,20,21
,22,23,24,25,26,27. Kraften som genereres kan bestemmes robust gjennom optisk sporing av vevsforkortelsen og ved hjelp av elastisk stråleteori for å beregne kraften fra de målte avbøyningene og fjærkonstanten til ankrene 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11, 12,13,14,15,16,17,18,19,20,
21,22,25,26,28.

Imidlertid er hjertevevsteknikk fortsatt et utviklende felt, og noen utfordringer gjenstår. Spesialutstyr, for eksempel skreddersydde bioreaktorer og funksjonelle vurderingsenheter, kreves for hvert modellsystem 10,29,30,31. Størrelsen og kompleksiteten til mikromiljøet til disse konstruksjonene er ofte begrenset av lav gjennomstrømning på grunn av arbeidsintensive protokoller, høyt antall celler og vevssårbarhet. For å løse dette har noen grupper vendt seg til fabrikasjon av mikrovev som bare inneholder hundrevis eller tusenvis av celler for å lette analyser med høy gjennomstrømning som er nyttige for narkotikaforskning. Denne reduserte skalaen kompliserer imidlertid den nøyaktige vurderingen av funksjon12, eliminerer viktige aspekter ved den opprinnelige hjertenisjen (som næringsstoffer / oksygendiffusjonsgradienter og kompleks arkitektur36), og begrenser mengden materiale som er tilgjengelig for påfølgende molekylær og strukturell analyse (som ofte krever sammenslåing av vevene). Tabell 1 oppsummerer noen av konfigurasjonene av lineære vevsstrimmelmodeller i litteraturen 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15, 16,17,18,19,20,
21,22,23,24,25,26,37,38,39,40.

Gruppe Celler per vev Vev per plate Plate format Forankringsfunksjon Metode for funksjonell datainnsamling Delt mediebad? Funksjonelt mål-
ment in situ?
Yoshida (ECT) 38 4 millioner 6 modifisert 6-brønns plate* Kraft-svinger Direkte kraftmåling Nei Nei
Chan (hESC-CM-ECTs)26 310 k 6 Tilpasset 6-brønns tallerken PDMS innlegg Direkte kraftmåling Ja Nei
Feinberg (dyn-EHT)16 1,5 millioner 6 Tilpasset 6-brønns tallerken PDMS ledning vev form Nei Ja
RADISIC (BioWire)39, 40 110 k 8 polymer wire Tråd form Ja Ja
Costa (enkelt hekt)1, 2 1-2 millioner 4** 10 cm petriskål** PDMS innlegg optisk avbøyning (kant-/objektsporing) Ja Ja
Costa (flere hekt) 3–9 500 K-1 millioner 6 6 cm petriskål PDMS innlegg optisk avbøyning (kant-/objektsporing) Ja Ja
Costa (multi-hECT m / SPoT) 1 millioner 6 6 cm petriskål PDMS-innlegg med svarte caps optisk avbøyning (objektsporing) Ja Ja
Passier (EHT)17 245 k 36 12-brønns plate PDMS-innlegg med svarte caps optisk avbøyning (objektsporing) Ja Ja
Vunjak-Novakovic13, 18 1 millioner 12 6 cm petriskål PDMS-innlegg med caps optisk avbøyning (kantdeteksjon) Ja Ja
Vunjak-Novakovic (MilliPillar)14 550 k 6 Tilpasset 6-brønns tallerken PDMS-innlegg med caps optisk avbøyning (objektsporing); kalsium avbildning Nei Ja
Eschenhagen (EHT)10, 19–21 1 millioner 12 12-brønns plate PDMS-innlegg med caps optisk avbøyning (kantdeteksjon av post avbøyning); kalsium avbildning Nei Ja
Zandstra (CaMiRi)22 25-150 k 96 96-brønns plate PDMS-innlegg med kroker optisk avbøyning (kantdeteksjon) Nei Ja
Murry23, 24 900 k 24 24-brønns plate PDMS-stolper med caps, integrert magnet magnetisk sensor Nei Ja
Riket (μTUG)11, 12, 25 Udefinert 156 156-brønns tallerken PDMS-stolper med caps, integrert magnet optisk sporing (fluorescerende perle) Ja Ja

Tabell 1: Karakteristika for noen lineærkonstruerte hjertevevsmodeller i litteraturen. Lineærkonstruerte hjertevevsmodeller varierer i størrelse, gjennomstrømning, forankringsfunksjonsdesign og tilrettelegging av delte mellomstore bad, samt kravene til et eget muskelbadsystem for funksjonell karakterisering. * Forskerne brukte et kommersielt tilgjengelig konstruert vevssystem basert på dimensjonene til en standard 6-brønnsplate. ** Et modulært system der enkeltvevsbioreaktorer er forankret til en hvilken som helst plastkulturskål i ønsket antall og plassering.

Dette papiret beskriver den nyeste protokollen for å fremstille vår etablerte modell av lineært humant konstruert hjertevev (hECT) 1,2,3,4,5,6,7,8,9,15,27 og metoder for vurdering av hECT-kontraktil funksjon. Hver bioreaktor med flere vev har plass til opptil seks hektar i et delt mediumbad og består av to “rack” -stykker laget av silikonelastomerpolydimetylsiloksan (PDMS) montert på en stiv polysulfonramme. Hvert PDMS-stativ inneholder seks fleksible integrerte kraftsensorstolper som er 0,5 mm i diameter og 3,25 mm lange, og sammen gir to stativer seks par stolper, som hver har en hECT. Inversjon av bioreaktoren bidrar til å overvinne enhver hindring for visualisering av hektene nedenfra på grunn av vannkondens fra kulturmediet eller forvrengninger fra menisken i luft-væske-grensesnittet. Hver sammentrekning av en hECT forårsaker avbøyning av de integrerte endestolpene, og den optiske målingen av avbøyningssignalet behandles til en kraft-mot-tidssporing som representerer den kontraktile funksjonen til hECT 1,2,3,4,5,6,7,8,9,15,27 . Sammenlignet med enkeltvevsbioreaktorene som vanligvis brukes til vev av denne størrelsen, forbedrer multivevsdesignet den eksperimentelle gjennomstrømningen og muliggjør studier av parakrin signalering mellom tilstøtende vev med potensielt forskjellig cellulær sammensetning. Dette systemet har blitt validert i publiserte studier som beskriver anvendelser i sykdomsmodellering 4,8, parakrin signalering 6,7, heterocellulær kultur 5,9 og terapeutisk screening 7,9.

I dette systemet er hECT-ene designet for å være omtrent 6 mm lange og 0,5 mm i diameter for å muliggjøre robust optisk sporing av kraftmålinger med lite støy. Videre er aspekter av vevskompleksitet som diffusjonsgradienter og cellulær organisasjon balansert med et håndterbart krav på 1 million celler per vev. Med standard CCD-kamerateknologi genererer krefter så svake som 1 μN (som representerer mindre enn 5 μm etter nedbøyning) et klart signal, noe som sikrer at selv ekstremt svak kontraktil funksjon, som observert med noen hECT-sykdomsmodeller, kan måles nøyaktig. Dette forenkler også den detaljerte analysen av rykningskraftkurven, og muliggjør dermed analyse av høyt innhold av opptil 16 kontraktilitetsmålinger41, inkludert utviklet kraft, sammentrekningshastigheter (+dF/dt) og avslapning (-dF/dt) og variasjon i slaghastighet.

Denne protokollen begynner med instruksjoner for fremstilling av bioreaktorkomponentene. Spesiell oppmerksomhet rettes mot trinnene for å maksimere hECT-utbyttet, redusere teknisk variasjon i vevsfunksjonen og optimalisere kvaliteten og dybden av vevsvurderingen. De fleste hjertevevstekniske studier rapporterer ikke frekvenser av vevstap under fabrikasjon og langsiktig testing, selv om det er en kjent utfordring i feltet og reduserer gjennomstrømningen og effektiviteten til studiene27. De vevstekniske metodene beskrevet her har blitt raffinert gjennom årene for å sikre oppbevaring av alle hECTs i de fleste bioreaktorer (uavhengig av hvordan PDMS-stativene er produsert). Selv 5% -20% tap av vev kan imidlertid påvirke den statistiske styrken betydelig, spesielt i mindre eksperimenter begrenset av antall tilgjengelige kardiomyocytter (f.eks. på grunn av differensieringsutfordringer med noen syke cellelinjer4 eller på grunn av høye kostnader for kommersielt kjøpte kardiomyocytter), eller ved behandlingstilstanden (f.eks. begrenset tilgjengelighet eller høye kostnader for forskjellige behandlingsforbindelser).

Denne protokollen beskriver fabrikasjon av stabile postsporere (SPoTs), en ny funksjon i PDMS-rackene, som fungerer som caps i enden av kraftfølerstolpene som holder hECTs27. Det er demonstrert hvordan hettegeometrien signifikant reduserer hECT-tapet fra å falle eller trekke av stolpene, og dermed åpne nye muligheter for dyrking av hECTs med større variasjon av stivheter og spenninger, som er utfordrende for kultur på uavkortede innlegg. I tillegg gir SPoTs et objekt med høy kontrast for å forbedre den optiske sporingen av hECT-sammentrekningen gjennom en konsekvent og veldefinert form27. Dette etterfølges av en beskrivelse av dyrking av humaninduserte pluripotente stamceller (iPSCs) og kardiomyocyttdifferensiering basert på tidligere publiserte protokoller 3,42,43 og en forklaring av hECT-fabrikasjon, kultur og funksjonelle målinger.

Denne artikkelen tar også for seg behovet for å måle vevsfunksjonen ved fysiologisk temperatur. Humant myokard (føtalt så vel som voksent sunt og sykt vev), samt hjertevev fra et bredt spekter av dyrearter (inkludert rotter, katter, mus, ildere og kaniner)44,45, viser en markert økning i frekvensmatchet rykningskraft ved temperaturer på 28 ° C-32 ° C sammenlignet med fysiologisk temperatur – et fenomen kjent som hypoterm inotropi45, 46. Imidlertid forblir effekten av temperatur på konstruert myokardvevsfunksjon understudert. Mange nyere konstruerte hjertevevsmodeller i litteraturen er designet for å bli funksjonelt vurdert ved 37 °C for å tilnærme fysiologiske forhold 13,14,37. Men så vidt vi vet, har de temperaturavhengige effektene på kraften generert av konstruerte hjertevev ikke blitt systematisk undersøkt. Denne protokollen beskriver en pacingelektrodedesign som minimerer varmetap under testing, samt tillater inkorporering av et isolert varmeelement i oppsettet for funksjonelle målinger, som kan opprettholde hektene ved fysiologisk temperatur uten at det går ut over steriliteten27. Vi rapporterer deretter noen av de observerte effektene av temperatur på hECT-funksjonen, inkludert på den utviklede kraften, spontan slagfrekvens, +dF / dt og -dF / dt. Til sammen gir dette papiret detaljene som kreves for å produsere dette multi-tissue force-sensing bioreaktorsystemet for å fremstille humant konstruert hjertevev og å vurdere deres kontraktile funksjon, og et sett med data presenteres som gir et sammenligningsgrunnlag for målinger ved romtemperatur og ved 37 ° C27.

Protocol

Denne protokollen brukte en avidentifisert iPSC-linje, SkiPS 31.3 (opprinnelig omprogrammert ved hjelp av dermale fibroblaster fra en sunn 45 år gammel mann)47, og var dermed unntatt fra spesifikk godkjenning fra Institutional Review Board, i samsvar med institusjonens retningslinjer for human forskningsetikk. Utfør all celle- og hECT-manipulering under aseptiske forhold i et HEPA-filtrert biologisk sikkerhetskabinett i klasse II eller laminær strømningsarbeidsbenk. Steriliser alle ikke-steril…

Representative Results

Etter protokollen ovenfor ble kardiomyocytter generert fra en sunn iPSC-linje som tidligere ble brukt av vår gruppe 9,15 og fremstilt i hektar etter 8-61 dager i kultur. Figur 9A viser representative bilder av hECTs sett fra bunnen, som ble opprettet uten (øverst) og med (nederst) SPoTs. Funksjonsmålinger ble gjort ved romtemperatur (23 °C) og ved fysiologisk temperatur (36 °C) mellom 37 dager og 52 dager etter hECT-fabrikasjon….

Discussion

Det finnes mange lineærkonstruerte hjertevevsmodeller publisert i litteraturen, hvorav noen er beskrevet i tabell 1. Noen modeller involverer direkte måling av vevskraften, men disse krever vanligvis overføring av konstruksjonen til et eget muskelbad38. De fleste modeller er designet med vevene permanent forankret i begge ender, oftest til PDMS-innlegg 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne anerkjenner Dr. Timothy Cashman for tidligere arbeid med denne metoden. Denne studien ble støttet av finansiering fra National Institutes of Health (NIH) (R01-HL132226 og K01 HL133424) og Leducq Foundation International Networks of Excellence Program (CURE-PLaN).

Materials

0.25 mm diamete 304 Stainless Steel Wire McMaster Carr 6517K61 
0.25% trypsin-EDTA Gibco 25200056
1.7 mL Microtubes Axygen MCT-175-C
10 cm dishes (20 mm tall) Corning 353003
10 mL Serological Pipette Drummond 6-000-010
10 N NaOH Fisher Scientific SS225-1 dilute 1:10 in sterile distilled water
10X Modified Eagle Medium Sigma Aldrich M0275
20 – 200 μL Micropipette Eppendorf 3123000055
200 μL MicroPipette Tips VWR 76322-150
5 mL Serological Pipette Drummond 6-000-005
50 mL Conical Centrifuge Tubes Falcon 352070
6 cm Petri Dish Corning 353002
6 Watt LED Dual Gooseneck Illuminator AmScope  LED-6W 
6-Well Plates Corning 353046
90 degree angle mirror Edmund Optics 45-594
Acrylic bonding glue SCIGRIP #4
Adjustable 10 cm x 10 cm jack Fisher Scientific 14-673-50
Aluminum 6061 McMaster Carr 9008K82
A-Plan 10X Objective Lens ZEISS 1020-863
Autoclave Bags Propper 21002
B-27 supplement ThermoFisher 17504044
B-27 supplement (without insulin) ThermoFisher A1895601
Benchtop Centrifuge Eppendorf 5810 R
Black ABS Ultimaker 2.85 mm wide
Bovine Collagen I Gibco A1064401
CHIR99021 Tocris 4423
Class II Biosafety Cabinet Labconco 3430009
Clear Acrylic Sheeting estreetplastics 1002502436 6.25 mm thick
CNC Vertical Mill Haas VF-1
Conductive Graphite Bars McMaster Carr 1763T33
Dissection microscope Olympus SZ61
Dulbecco's Modified Eagle Medium/Ham's F-12 Nutrient Mix ThermoFisher 11330032
Ethanol Fisher Scientific A4094 Dilute to 70% in water
EVE Automated Cell counter NanoEntek E1000
EVE Cell Counting Slide NanoEntek EVS-050
Fetal Bovine Serum Life Technologies 10438026
Fine Curved Forceps Fine Science Tools 11253-25
Forma Series II Water Jacketed CO2 Incubator Thermo Electron Corporation 3110 AKA "incubator". With HEPA class 100 filter
Fusion360 software Autodesk AKA "CAD software"
Glass Hemocytometer Reichert 1475 0.1 mm deep
HEPES Sigma Aldrich H3784
hESC qualified matrigel Corning 354277 AKA "basement membrane matrix". Store in frozen aliquots
High Speed CCD Camera PixelLINK P7410
Inverted Microscope Carl Zeiss Werk Axiovert 40 CFL 10X phase contrast objective
IWR-1 Selleck Chem S7086
LabView Software National Instruments 2016
Laminar flow clean bench NuAire NU-201-330 necessary for hECT functional analysis
Laptop AsusTek Strix Intel Core i& processor ,CPU 2.8GHz, 16GB RAM
Laser Cutting Machine Epilog Helix 24
Magnification headset ExcelBlades 70020 Recommended for steps requiring fine manipulations
Matlab Mathworks Version 2019b or later AKA "data analysis software"
Micro Vannas Scissors, 3 mm blade WPI Instruments 501839
Microscope Boom Stand Olympus SZ2-STU1
Penicillin-Streptomycin stock solution ThermoFisher 15140122 10,000 IU/ml penicillin; 10,000 μg/ml streptomycin
Phosphate-buffered saline without divalent cations Sigma Aldrich P3813 Diluted in distilled water to 1X and 10X concentrations
Pipette Controller Drummond 4-000-100
PixelLINK Capture OEM PixelLINK 10.2.1.6 AKA "Camera Software"
Polysulfone McMaster Carr 86735K73 translucent amber color
Polytetrafluoroethylene (PTFE) McMaster Carr 8545K176  Black, molded
ReLeSR Stem Cell Technologies 5872 AKA "iPSC dissociation media"
Rosewell Park Memorial Institute 1640 Media ThermoFisher 11875135
Silicone Sheeting SMI manufacturing glossy, 0.02 in thickness, durometer 40
Size 10/0 Blue, Green, Red, and Yellow Glass Seed Beads Michael's color should withstand autoclaving
Spatula Fisher Scientific 14-373 used for mixing PDMS
Square Pulse Stimulator  Astro-Med / Grass Technologies S88X
Stainless Steel Razoblades GEM 62-0179-CTN preferred over non-stainless steel due to lower hardness
Stemflex ThermoFisher A3349401 AKA "iPSC culture media"
Sterile distilled water ThermoFisher 5230
Sylgard 170 -  Silicone Elastomer Encapsulant Black 0.9 kg Kit Dow DOWSIL 170 2LB KIT AKA black Polydimethylsiloxane (black PDMS)
Sylgard 184 – Silicone Elastomer Clear 1 lb Kit Dow DC 184 SYLGARD 0.5KG 1.1LB KIT AKA Polydimethylsiloxane (PDMS)
Temperature-controlled heated stage Okolab H401-HG-SMU Set height to 10 cm
Thermoplastic 3D printer Ultimaker Ultimaker 3
Thiazovivin Selleck Chem S1459
Trypan Blue NanoEntek EBT-001
Vacuum Chamber Bel-Art Parts F42027-0000
Variable Speed Mini Band Saw Micro-Mark 82203
Variable Speed Miniature Drill Press Micro-Mark 82959
Vibration Isolation Table Labconco 3618000
Weighing Boats VWR 10803-140
Talon Cylinder Bench Clamp VWR 97035-528 AKA screw clamp

References

  1. Serrao, G. W., et al. Myocyte-depleted engineered cardiac tissues support therapeutic potential of mesenchymal stem cells. Tissue Engineering. Part A. 18 (13-14), 1322-1333 (2012).
  2. Turnbull, I. C., et al. Advancing functional engineered cardiac tissues toward a preclinical model of human myocardium. FASEB Journal. 28 (2), 644-654 (2014).
  3. Cashman, T. J., et al. Construction of defined human engineered cardiac tissues to study mechanisms of cardiac cell therapy. Journal of Visualized Experiments. (109), e53447 (2016).
  4. Stillitano, F., et al. Genomic correction of familial cardiomyopathy in human engineered cardiac tissues. European Heart Journal. 37 (43), 3282-3284 (2016).
  5. Mayourian, J., et al. Experimental and computational insight into human mesenchymal stem cell paracrine signaling and heterocellular coupling effects on cardiac contractility and arrhythmogenicity. Circulation Research. 121 (4), 411-423 (2017).
  6. Mayourian, J., et al. therapeutic paracrine modulation of cardiac excitation-contraction coupling. Circulation Research. 122 (1), 167-183 (2018).
  7. Mayourian, J., et al. Exosomal microRNA-21-5p mediates mesenchymal stem cell paracrine effects on human cardiac tissue contractility. Circulation Research. 7 (122), 933-944 (2018).
  8. Turnbull, I. C., et al. Cardiac tissue engineering models of inherited and acquired cardiomyopathies. Methods in Molecular Biology. 1816, 145-159 (2018).
  9. Murphy, J. F., et al. Adult human cardiac stem cell supplementation effectively increases contractile function and maturation in human engineered cardiac tissues. Stem Cell Research & Therapy. 10 (1), 373 (2019).
  10. Breckwoldt, K., et al. Differentiation of cardiomyocytes and generation of human engineered heart tissue. Nature Protocols. 12 (6), 1177-1197 (2017).
  11. Huang, C. Y., et al. Enhancement of human iPSC-derived cardiomyocyte maturation by chemical conditioning in a 3D environment. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 138, 1-11 (2020).
  12. Ramade, A., Legant, W. R., Picart, C., Chen, C. S., Boudou, T. Microfabrication of a platform to measure and manipulate the mechanics of engineered microtissues. Methods in Cell Biology. 121, 191-211 (2014).
  13. Ronaldson-Bouchard, K., et al. Engineering of human cardiac muscle electromechanically matured to an adult-like phenotype. Nature Protocols. 14 (10), 2781-2817 (2019).
  14. Tamargo, M. A., et al. milliPillar: A platform for the generation and real-time assessment of human engineered cardiac tissues. ACS Biomaterials Science & Engineering. 7 (11), 5215-5229 (2021).
  15. Ceholski, D. K., et al. CXCR4 and CXCR7 play distinct roles in cardiac lineage specification and pharmacologic β-adrenergic response. Stem Cell Research. 23, 77-86 (2017).
  16. Bliley, J. M., et al. Dynamic loading of human engineered heart tissue enhances contractile function and drives a desmosome-linked disease phenotype. Science Translational Medicine. 13 (603), (2021).
  17. Ribeiro, M. C., et al. A new versatile platform for assessment of improved cardiac performance in human-engineered heart tissues. Journal of Personalized Medicine. 12 (2), 214 (2022).
  18. Ronaldson-Bouchard, K., et al. Advanced maturation of human cardiac tissue grown from pluripotent stem cells. Nature. 556 (7700), 239-243 (2018).
  19. Mannhardt, I., et al. Human engineered heart tissue: Analysis of contractile force. Stem Cell Reports. 7 (1), 29-42 (2016).
  20. Mannhardt, I., et al. Blinded contractility analysis in hiPSC-cardiomyocytes in engineered heart tissue format: Comparison with human atrial trabeculae. Toxicological Sciences. 158 (1), 164-175 (2017).
  21. Saleem, U., et al. Force and calcium transients analysis in human engineered heart tissues reveals positive force-frequency relation at physiological frequency. Stem Cell Reports. 14 (2), 312-324 (2020).
  22. Thavandiran, N., et al. Functional arrays of human pluripotent stem cell-derived cardiac microtissues. Scientific Reports. 10 (1), 6919 (2020).
  23. Bielawski, K. S., Leonard, A., Bhandari, S., Murry, C. E., Sniadecki, N. J. Real-time force and frequency analysis of engineered human heart tissue derived from induced pluripotent stem cells using magnetic sensing. Tissue Engineering. Part C, Methods. 22 (10), 932-940 (2016).
  24. Leonard, A., et al. Afterload promotes maturation of human induced pluripotent stem cell derived cardiomyocytes in engineered heart tissues. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 118, 147-158 (2018).
  25. Bose, P., Huang, C. Y., Eyckmans, J., Chen, C. S., Reich, D. H. Fabrication and mechanical properties measurements of 3D microtissues for the study of cell-matrix interactions. Methods in Molecular Biology. 1722, 303-328 (2018).
  26. Zhang, W., et al. Maturation of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes (hESC-CMs) in 3D collagen matrix: Effects of niche cell supplementation and mechanical stimulation. Acta Biomaterialia. 49, 204-217 (2017).
  27. van Neste, C. Advances in bioreactor design and multi-dimensional analysis for assessing maturation phenotype of human engineered cardiac tissues. PhD thesis. Icahn School of Medicine at Mount Sinai. , (2022).
  28. Sala, L., et al. MUSCLEMOTION: A versatile open software tool to quantify cardiomyocyte and cardiac muscle contraction in vitro and in vivo. Circulation Research. 122 (3), e5-e16 (2018).
  29. Salazar, B. H., Cashion, A. T., Dennis, R. G., Birla, R. K. Development of a cyclic strain bioreactor for mechanical enhancement and assessment of bioengineered myocardial constructs. Cardiovascular Engineering and Technology. 6 (4), 533-545 (2015).
  30. Putame, G., et al. Application of 3D printing technology for design and manufacturing of customized components for a mechanical stretching bioreactor. Journal of Healthcare Engineering. 2019, 3957931 (2019).
  31. Akintewe, O. O., Roberts, E. G., Rim, N. -. G., Ferguson, M. A. H., Wong, J. Y. Design approaches to myocardial and vascular tissue engineering. Annual Review of Biomedical Engineering. 19, 389-414 (2017).
  32. Chen, G., et al. Phospholamban as a crucial determinant of the inotropic response of human pluripotent stem cell-derived ventricular cardiomyocytes and engineered 3-dimensional tissue constructs. Circulation. Arrhythmia and Electrophysiology. 8 (1), 193-202 (2015).
  33. Giacomelli, E., et al. Human-iPSC-derived cardiac stromal cells enhance maturation in 3D cardiac microtissues and reveal non-cardiomyocyte contributions to heart disease. Cell Stem Cell. 26 (6), 862-879 (2020).
  34. Beauchamp, P., et al. 3D co-culture of hiPSC-derived cardiomyocytes with cardiac fibroblasts improves tissue-like features of cardiac spheroids. Frontiers in Molecular Biosciences. 7, 14 (2020).
  35. Campostrini, G., et al. functional analysis and applications of isogenic three-dimensional self-aggregating cardiac microtissues from human pluripotent stem cells. Nature Protocols. 16 (4), 2213-2256 (2021).
  36. Swiatlowska, P., Iskratsch, T. Tools for studying and modulating (cardiac muscle) cell mechanics and mechanosensing across the scales. Biophysical Reviews. 13 (5), 611-623 (2021).
  37. Zhao, Y., et al. Engineering microenvironment for human cardiac tissue assembly in heart-on-a-chip platform. Matrix Biology. 85-86, 189-204 (2020).
  38. Fujiwara, Y., Deguchi, K., Miki, K., Nishimoto, T., Yoshida, Y. A method for contraction force measurement of hiPSC-derived engineered cardiac tissues. Methods in Molecular Biology. 2320, 171-180 (2021).
  39. Wang, E. Y., et al. Biowire model of interstitial and focal cardiac fibrosis. ACS Central Science. 5 (7), 1146-1158 (2019).
  40. Zhao, Y., et al. A platform for generation of chamber-specific cardiac tissues and disease modeling. Cell. 176 (4), 913-927 (2019).
  41. Lee, E. K., et al. Machine learning of human pluripotent stem cell-derived engineered cardiac tissue contractility for automated drug classification. Stem Cell Reports. 9 (5), 1560-1572 (2017).
  42. Batalov, I., Feinberg, A. W. Differentiation of cardiomyocytes from human pluripotent stem cells using monolayer culture. Biomarker Insights. 10, 71-76 (2015).
  43. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (27), E1848-E1857 (2012).
  44. Penefsky, Z. J., Buckley, N. M., Litwak, R. S. Effect of temperature and calcium on force-frequency relationships in mammalian ventricular myocardium. Pflugers Archiv. 332 (4), 271-282 (1972).
  45. Bers, D. M. . Excitation-Contraction Coupling and Cardiac Contractile Force. , (2001).
  46. Kanaya, N., Gable, B., Wickley, P. J., Murray, P. A., Damron, D. S. Experimental conditions are important determinants of cardiac inotropic effects of propofol. Anesthesiology. 103 (5), 1026-1034 (2005).
  47. Galende, E., et al. Amniotic fluid cells are more efficiently reprogrammed to pluripotency than adult cells. Cellular Reprogramming. 12 (2), 117-125 (2010).
  48. Wacker-Gussmann, A., Strasburger, J. F., Cuneo, B. F., Wakai, R. T. Diagnosis and treatment of fetal arrhythmia. American Journal of Perinatology. 31 (7), 617-628 (2014).
  49. Federmann, M., Hess, O. M. Differentiation between systolic and diastolic dysfunction. European Heart Journal. 15, 2-6 (1994).
  50. Knight, W. E., et al. Maturation of pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes enables modeling of human hypertrophic cardiomyopathy. Stem Cell Reports. 16 (3), 519-533 (2021).
  51. Ma, Z., et al. Contractile deficits in engineered cardiac microtissues as a result of MYBPC3 deficiency and mechanical overload. Nature Biomedical Engineering. 2 (12), 955-967 (2018).
  52. de Lange, W. J., et al. Human iPSC-engineered cardiac tissue platform faithfully models important cardiac physiology. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 320 (4), H1670-H1686 (2021).
  53. Hiranandani, N., Varian, K. D., Monasky, M. M., Janssen, P. M. L. Frequency-dependent contractile response of isolated cardiac trabeculae under hypo-, normo-, and hyperthermic conditions. Journal of Applied Physiology. 100 (5), 1727-1732 (2006).
  54. Puglisi, J. L., Bassani, R. A., Bassani, J. W., Amin, J. N., Bers, D. M. Temperature and relative contributions of Ca transport systems in cardiac myocyte relaxation. The American Journal of Physiology. 270 (5), H1772-H1778 (1996).
  55. Puglisi, J. L., Yuan, W., Bassani, J. W., Bers, D. M. Ca(2+) influx through Ca(2+) channels in rabbit ventricular myocytes during action potential clamp: Influence of temperature. Circulation Research. 85 (6), e7-e16 (1999).
  56. Li, R. A., et al. Bioengineering an electro-mechanically functional miniature ventricular heart chamber from human pluripotent stem cells. Biomaterials. 163, 116-127 (2018).
  57. Sharma, A., et al. Biomanufacturing in low Earth orbit for regenerative medicine. Stem Cell Reports. 17 (1), 1-13 (2022).
  58. Strauss, D. G., Wu, W. W., Li, Z., Koerner, J., Garnett, C. Translational models and tools to reduce clinical trials and improve regulatory decision making for QTc and proarrhythmia risk (ICH E14/S7B updates). Clinical Pharmacology & Therapeutics. 109 (2), 319-333 (2021).
  59. Gintant, G., et al. Repolarization studies using human stem cell-derived cardiomyocytes: Validation studies and best practice recommendations. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 117, 104756 (2020).
check_url/fr/64368?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
van Neste, C. C., Wiley, K. A., Chang, S. W., Borrello, J., Turnbull, I. C., Costa, K. D. Designing a Bioreactor to Improve Data Acquisition and Model Throughput of Engineered Cardiac Tissues. J. Vis. Exp. (196), e64368, doi:10.3791/64368 (2023).

View Video