Summary

Mekanikken til (poro-)elastiske kontraktile aktomyosinnettverk som et modellsystem av cellecytoskjelettet

Published: March 10, 2023
doi:

Summary

I dette arbeidet brukes en in vitro rekonstitueringstilnærming for å studere poroelastisiteten til actomyoingeler under kontrollerte forhold. Dynamikken til actomyosingelen og det innebygde løsningsmidlet kvantifiseres, hvorved nettverksporoelastisiteten demonstreres. Vi diskuterer også eksperimentelle utfordringer, vanlige fallgruver og relevans for cellecytoskjelettmekanikk.

Abstract

Celler kan aktivt forandre sine former og bli bevegelige, en egenskap som avhenger av deres evne til aktivt å omorganisere sin indre struktur. Denne funksjonen tilskrives de mekaniske og dynamiske egenskapene til cellecytoskjelettet, spesielt actomyosincytoskelettet, som er en aktiv gel av polare aktinfilamenter, myosinmotorer og tilbehørsproteiner som utviser inneboende sammentrekningsegenskaper. Den vanligvis aksepterte oppfatningen er at cytoskjelettet oppfører seg som et viskoelastisk materiale. Denne modellen kan imidlertid ikke alltid forklare de eksperimentelle resultatene, som er mer konsistente med et bilde som beskriver cytoskjelettet som et poroelastisk aktivt materiale – et elastisk nettverk innebygd med cytosol. Kontraktilitetsgradienter generert av myosinmotorene driver strømmen av cytosol over gelporene, noe som antyder at mekanikken til cytoskjelettet og cytosolen er tett koblet. Et hovedtrekk ved poroelastisitet er diffusiv avslapning av spenninger i nettverket, karakterisert ved en effektiv diffusjonskonstant som avhenger av gelelastisk modul, porøsitet og cytosol (løsningsmiddel) viskositet. Siden celler har mange måter å regulere strukturen og materialegenskapene på, er vår nåværende forståelse av hvordan cytoskjelettmekanikk og cytosolstrømningsdynamikk er koblet sammen, fortsatt dårlig forstått. Her brukes en in vitro rekonstitueringstilnærming for å karakterisere materialegenskapene til poroelastiske actomyosingeler som et modellsystem for cellecytoskjelettet. Gelkontraksjon drives av myosinmotorisk kontraktilitet, noe som fører til fremveksten av en strøm av det penetrerende løsningsmidlet. Papiret beskriver hvordan du skal forberede disse gelene og kjøre eksperimenter. Vi diskuterer også hvordan man måler og analyserer løsemiddelstrømmen og gelkontraksjonen både på lokal og global skala. De ulike skaleringsrelasjonene som brukes til datakvantifisering er gitt. Til slutt diskuteres eksperimentelle utfordringer og vanlige fallgruver, inkludert deres relevans for cellecytoskjelettmekanikk.

Introduction

Levende celler har unike mekaniske egenskaper. Foruten evnen til passivt å reagere på påførte krefter, er de også i stand til aktivt å generere krefter som svar på ytre stimuli1. Disse egenskapene, som er essensielle for en rekke cellulære prosesser, spesielt under cellemotilitet, tilskrives primært de mekaniske og dynamiske egenskapene til cellecytoskelettet, spesielt actomyosincytoskelettet, som er en aktiv gel av polare aktinfilamenter, myosinmolekylære motorer og tilbehørsproteiner. Disse actomyosinnettverkene utviser inneboende selvorganiserings- og sammentrekningsegenskaper drevet av myosinmotorproteinene, som kryssbinder aktinfilamentene og aktivt genererer mekaniske spenninger i nettverket drevet av ATP-hydrolyse2.

Tallrike eksperimentelle og teoretiske studier har blitt utført for å studere materialegenskapene til cytoskelettet3. Den allment aksepterte oppfatningen er at cytoskjelettet oppfører seg som et viskoelastisk materiale4. Dette betyr at cytoskelettet på korte tidsskalaer oppfører seg som et elastisk materiale, og på lange tidsskalaer oppfører det seg som et viskøst væske på grunn av tverrbindende proteiner og myosinmotorisk løsrivelse (og reattachment), noe som gjør at nettverket dynamisk kan snu. Den viskoelastiske modellen kan imidlertid i mange situasjoner ikke beskrive de eksperimentelle resultatene, som er mer konsistente med et bilde som beskriver cytoskjelettet og mer generelt cellecytoplasma som beskrives som et poroelastisk virkestoff 5,6. To hovedtrekk karakteriserer disse typer materialer. (i) Den første hovedfunksjonen er genereringen av en strøm av penetrerende cytosol (“løsningsmidlet”) over gelporene ved kontraktilitetsgradienter drevet av myosinmotorene, som ligger til grunn for prosesser som celleblebbing7, motilitet8 og celleformsvingninger9. Fremveksten av slike cytosoliske strømmer kan være lokal, for blebbing eller global, som i cellemotilitet. I sistnevnte tilfelle driver de kontraktile påførte spenningene ved cellens bakside strømmen av cytosolisk væske mot cellefronten, noe som etterfyller proteinbassenget som trengs for lamellipodimontering8. (ii) Den andre hovedfunksjonen er at avslapningen av spenninger er diffusiv og er preget av en effektiv diffusjonskonstant, , som avhenger av gelelastisiteten, gelporøsiteten og løsningsmiddelviskositeten5. Den poroelastiske diffusjonskonstanten bestemmer hvor raskt systemet reagerer på en påført spenning. Høyere diffusjonskonstanter tilsvarer raskere stressomfordeling. Dette bestemmer i sin tur hvor lang tid det tar for det intracellulære cytosoliske væsken å bli omfordelt i cellen etter påført mekanisk stress, det være seg eksternt eller internt, slik som de aktive kontraktile spenningene generert av myosinmotorer. Disse eksemplene viser dermed at mekanikken til cytoskjelettet og cytosolen er tett koblet og ikke kan behandles separat3.

Siden celler kan regulere sine mekaniske egenskaper på en rekke måter, er samspillet mellom nettverksmekanikk og væskestrømningsdynamikk fortsatt dårlig forstått. En kraftig alternativ tilnærming er å bruke in vitro rekonstituerte systemer som muliggjør full kontroll over de forskjellige mikroskopiske bestanddelene og systemparametrene, noe som gjør disse modellsystemene optimale for fysisk analyse10,11. Denne tilnærmingen har blitt brukt til å studere virkningen av proteinsammensetning og systemgeometri på aktinbasert motilitet 12,13,14,15,16,17,18, 2D-mønstre av aktomyosinnettverk 19,20,21,22, og samspillet mellom nettverkskontraktilitet og væskestrømningsdynamikk av poroelastiske actomyosingeler, som er fokus for denne artikkelen23.

I dette manuskriptet diskuteres fremstilling av kontraktile elastiske aktomyosinnettverk med kontrollerbare dimensjoner og materialegenskaper basert på arbeidet til Ideses et al.23. Dynamikken til kontraheringsgelen og det drenerte løsningsmidlet analyseres og kvantifiseres, hvorved det er demonstrert at disse actomyosingelene kan beskrives som et poroelastisk aktivt materiale. Å studere effekten av løsningsmiddelviskositet på stressdiffusivitet bekrefter ytterligere den poroelastiske naturen til disse nettverkene. De ulike skaleringsrelasjonene som brukes til datakvantifisering er gitt. Til slutt diskuteres også de eksperimentelle utfordringene, de vanlige fallgruvene og relevansen av eksperimentelle resultater for cellecytoskjelettet.

Protocol

1. Glassoverflatebehandling og passivering: MERK: Denne delen inneholder tre hovedtrinn (se figur 1): (i) rengjøring og hydrofilisering, (ii) silanisering og (iii) overflatepassivering. Rengjøring og hydrofiliseringBruk Piranha-løsning for rengjøring av glassoverflate.MERK: Piranha-oppløsning er en blanding av 30%H2O2og 70%H2SO4(materialfortegnelse). Hovedmålet er å fjerne or…

Representative Results

To glassdeksel brukes per eksperiment. Glassdekslene rengjøres og passiveres med PEG-polymerer. Passivering er avgjørende for å forhindre at de solubiliserte proteinene fester seg til glassflatene i de tidlige eksperimentelle stadiene og for å minimere samspillet mellom det kontraherende nettverket og glassveggene. Unnlatelse av å oppnå god passivering kan føre til ineffektiv sammentrekning, og i ekstreme tilfeller kan det til og med hemme aktinnettverksdannelse. Fi…

Discussion

Her brukes en in vitro-tilnærming for å karakterisere mekanikken til poroelastiske actomyosingeler som et modellsystem av cellecytoskelettet og mer generelt av cellecytoplasma, som har vist seg å oppføre seg som et poroelastisk materiale 3,5. Reologien til cellecytoskjelettet (cytoplasma) har vært preget av en poroelastisk diffusjonskonstant, som dikterer hvor lang tid det tar for det intracellulære cytosoliske væsken å omfordele seg i cellen ett…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dina Aranovich for proteinrensing og merking. G.L. er takknemlig overfor Israels departement for vitenskap, teknologi og rom for Jabotinsky PhD-stipendet. ABG er takknemlig til Israel Science Foundation (stipend 2101/20) og til departementet for vitenskap og teknologi – staten Israel (grant 3-17491) for økonomisk støtte.

Materials

(3-Mercaptopropyl)trimethoxysilane Sigma-Aldrich Company 175617 Stored under Argon atmosphere at 4 °C 
Acetic acid Bio-Lab ltd 1070521
Alexa-Fluor 488 Invitrogene A10254 Diluted with DMSO, stored under Argon atmosphere at -20 °C 
Alexa-Fluor 647 Invitrogene A20347 Diluted with DMSO, stored under Argon atmosphere at -20 °C 
BSA Sigma -Aldrich Company A3059 Stored at 4 °C 
Catalase Sigma -Aldrich Company C9322 The stock bottle is kept under dry atmosphere (silica gel) at -20 °C
Coverslips Mezel-glaser CG2222-1.5 Kept in milliQ-water after the Piranha treatment and used within 3 weeks
Creatine kinase Roche Life Science Products 10736988001 Prepared fresh in glycine buffer, kep on ice, and used within 3 days.  The stock bottle is kept under dry atmosphere (silica gel) at 4 °C
Creatine phosphate Roche Life Science Products 10621714001 When dissolved should be kept at -20 °C and used within 3 months. The stock bottle is kept under Argon atmosphere and stored at 4 °C
DTT Roche Life Science Products 10708984001 When dissolved should be kept at -20 °C and used within 3 months
Dual view Simultaneous Imaging System  Photometrics DV2-CUBE
EGTA MP Biomedicals 195174
EM-CCD Camera Andor Technology Ltd DV 887
EM-CCD Camera Photometrics Evolve Delta
Ethanol Bio-Lab ltd 525050300
Flourescence Lamp Rapp Optoelectronic
Fluoresbrite YG Microspheres Polysciences 17151-10 200 nm diameter
Glucose ICN Biomedicals Inc 194024 When dissolved should be kept at -20 °C and used within 3 months.
Glucose oxidase Sigma-Aldrich Company G7141 Kept in -20 °C and used within 3 months. The stock powder is kept under Argon atmosphere and kept at -20 °C
Glycerol ICN Biomedicals Inc 800687
Glycine MP Biomedicals 808822
Hydrogen Peroxide Sigma-Aldrich Company 216763 Stored at 4 °C 
KCl EMD Millipore Corp. 529552
Methanol Bio-Lab ltd 1368052100
MgCl2 EMD Millipore Corp. 442615
Microscope Leica Microsystems DMI3000
mPEG-mal Nanocs PG1-ML-5k  Mw = 5000 Da. Divided to small batches by weight. Stored under Argon atmosphere at -20 °C
Nile red microspheres Spherotech FP-2056-2  2300 nm diameter
Objective (10x) Leica Germany HC PL AP0 UPlanFL Numerical Aperture = 0.3
Objective (2.5x) Leica Germany 506304  Plan-NEOFLUAR Numerical Aperture = 0.075
Oven WTC Binder
Parafilm Amcor PM-996
PBS Buffer Sigma-Aldrich Company P4417
Shutter Driver Vincet Associates VMM D1
Silica gel Merck 1.01907.5000
Sonicator Elma Elmasonic P
Sulfuric acid Carlo Erba reagents 410301
DV2 Dual-Channel Simultaneous-Imaging System Photometrics
TRIS MP Biomedicals 819620
UV-VIS Spectrophotometer Pharmacia Ultraspec 2100 pro
MICROMAN E Gilson FD10001 1–10 uL
MATLAB R2017b MathWorks Data quantification 
MetaMorph  Molecular devices Control software of the optical imaging system; data quantification (particle tracking analysis, network mesh size)

References

  1. Alberts, B., et al. . Genesis, Modulation, and Regeneration of Skeletal Muscle In Molecular Biology of the Cell. 4th edition. , (2002).
  2. Howard, J. . Mechanics of Motor Proteins and the Cytoskeleton. , (2001).
  3. Mogilner, A., Manhart, A. Intracellular fluid mechanics: Coupling cytoplasmic flow with active cytoskeletal gel. Annual Review of Fluid Mechanics. 50 (1), 347-370 (2018).
  4. Bausch, A. R., Kroy, K. A bottom-up approach to cell mechanics. Nature Physics. 2 (4), 231-238 (2006).
  5. Moeendarbary, E., et al. The cytoplasm of living cells behaves as a poroelastic material. Nature Materials. 12 (3), 253-261 (2013).
  6. Charras, G. T., Mitchison, T. J., Mahadevan, L. Animal cell hydraulics. Journal of Cell Science. 122 (18), 3233-3241 (2009).
  7. Charras, G. T., Yarrow, J. C., Horton, M. A., Mahadevan, L., Mitchison, T. J. Non-equilibration of hydrostatic pressure in blebbing cells. Nature. 435 (7040), 365-369 (2005).
  8. Keren, K., Yam, P. T., Kinkhabwala, A., Mogilner, A., Theriot, J. A. Intracellular fluid flow in rapidly moving cells. Nature Cell Biology. 11 (10), 1219-1224 (2009).
  9. Paluch, E., Piel, M., Prost, J., Bornens, M., Sykes, C. Cortical actomyosin breakage triggers shape oscillations in cells and cell fragments. Biophysical Journal. 89 (1), 724-733 (2005).
  10. Liu, A. P., Fletcher, D. A. Biology under construction: In vitro reconstitution of cellular function. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10 (9), 644-650 (2009).
  11. Siton-Mendelson, O., Bernheim-Groswasser, A. Toward the reconstitution of synthetic cell motility. Cell Adhesion & Migration. 10 (5), 461-474 (2016).
  12. Bernheim-Groswasser, A., Wiesner, S., Golsteyn, R. M., Carlier, M. -. F., Sykes, C. The dynamics of actin-based motility depend on surface parameters. Nature. 417 (6886), 308-311 (2002).
  13. Bieling, P., et al. Force feedback controls motor activity and mechanical properties of self-assembling branched actin networks. Cell. 164 (1-2), 115-127 (2016).
  14. Carvalho, K., et al. Actin polymerization or myosin contraction: two ways to build up cortical tension for symmetry breaking. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 368 (1629), 20130005 (2013).
  15. Dayel, M. J., et al. In silico reconstitution of actin-based symmetry breaking and motility. PLoS Biology. 7 (9), e1000201 (2009).
  16. Manhart, A., et al. Quantitative regulation of the dynamic steady state of actin networks. eLife. 8, 42413 (2019).
  17. Siton, O., et al. Cortactin releases the brakes in actin-based motility by enhancing WASP-VCA detachment from Arp2/3 branches. Current Biology. 21 (24), 2092-2097 (2011).
  18. Pontani, L. -. L., et al. Reconstitution of an actin cortex inside a liposome. Biophysical Journal. 96 (1), 192-198 (2009).
  19. Ideses, Y., Sonn-Segev, A., Roichman, Y., Bernheim-Groswasser, A. Myosin II does it all: Assembly, remodeling, and disassembly of actin networks are governed by myosin II activity. Soft Matter. 9 (29), 7127-7137 (2013).
  20. Backouche, F., Haviv, L., Groswasser, D., Bernheim-Groswasser, A. Active gels: Dynamics of patterning and self-organization. Physical Biology. 3 (4), 264 (2006).
  21. Alvarado, J., Sheinman, M., Sharma, A., MacKintosh, F. C., Koenderink, G. H. Molecular motors robustly drive active gels to a critically connected state. Nature Physics. 9 (9), 591-597 (2013).
  22. Linsmeier, I., et al. Disordered actomyosin networks are sufficient to produce cooperative and telescopic contractility. Nature Communications. 7 (1), 12615 (2016).
  23. Ideses, Y., et al. Spontaneous buckling of contractile poroelastic actomyosin sheets. Nature Communications. 9 (1), 2461 (2018).
  24. Spudich, J. A., Watt, S. The regulation of rabbit skeletal muscle contraction: I. Biochemical studies of the interaction of the tropomyosin-troponin complex with actin and the proteolytic fragments of myosin. Journal of Biological Chemistry. 246 (15), 4866-4871 (1971).
  25. Ono, S., et al. Identification of an actin binding region and a protein kinase C phosphorylation site on human fascin. Journal of Biological Chemistry. 272 (4), 2527-2533 (1997).
  26. Margossian, S. S., Lowey, S. Preparation of myosin and its subfragments from rabbit skeletal muscle. In Methods in Enzymology. 85, 55-71 (1982).
  27. Quinlan, M. E., Forkey, J. N., Goldman, Y. E. Orientation of the myosin light chain region by single molecule total internal reflection fluorescence polarization microscopy. Biophysical Journal. 89 (2), 1132-1142 (2005).
  28. Cheng, N. -. S. Formula for the viscosity of a glycerol−water mixture. Industrial & Engineering Chemistry Research. 47 (9), 3285-3288 (2008).
  29. Marsh, D., Bartucci, R., Sportelli, L. Lipid membranes with grafted polymers: Physicochemical aspects. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Biomembranes. 1615 (1-2), 33-59 (2003).
  30. Strychalski, W., Guy, R. D. Intracellular pressure dynamics in blebbing cells. Biophysical Journal. 110 (5), 1168-1179 (2016).
  31. Head, D. A., Levine, A. J., MacKintosh, F. C. Distinct regimes of elastic response and deformation modes of crosslinked cytoskeletal and semiflexible polymer networks. Physical Review E. 68 (6), 061907 (2003).
  32. MacKintosh, F. C., Levine, A. J. Nonequilibrium mechanics and dynamics of motor-activated gels. Physical Review Letters. 100 (1), 018104 (2008).
  33. Melero, C., et al. Light-induced molecular adsorption of proteins using the PRIMO system for micro-patterning to study cell responses to extracellular matrix proteins. Journal of Visualized Experiments. (152), e60092 (2019).
  34. Bendix, P. M., et al. A quantitative analysis of contractility in active cytoskeletal protein networks. Biophysical Journal. 94 (8), 3126-3136 (2008).

Play Video

Citer Cet Article
Choudhary, S., Livne, G., Gat, S., Bernheim-Groswasser, A. The Mechanics of (Poro-)Elastic Contractile Actomyosin Networks As a Model System of the Cell Cytoskeleton. J. Vis. Exp. (193), e64377, doi:10.3791/64377 (2023).

View Video