Summary

ओरोट्राचेल इंटुबैशन और वेंटिलेटेड लंग इस्केमिया रीपरफ्यूजन सर्जरी का एक माउस मॉडल

Published: September 09, 2022
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Summary

वेंटिलेशन बनाए रखने और हाइपोक्सिया से बचने के दौरान बाएं फेफड़े के इस्किमिया रीपरफ्यूजन (आईआर) की चोट बनाने के लिए एक माउस सर्जिकल मॉडल।

Abstract

इस्केमिया रीपरफ्यूजन (आईआर) की चोट अक्सर उन प्रक्रियाओं से उत्पन्न होती है जिनमें बाधित रक्त प्रवाह की क्षणिक अवधि शामिल होती है। फेफड़ों में, पृथक आईआर निरंतर वायुकोशीय वेंटिलेशन के साथ इस विशिष्ट प्रक्रिया के प्रयोगात्मक अध्ययन की अनुमति देता है, जिससे हाइपोक्सिया और एटलेक्टेसिस की हानिकारक प्रक्रियाओं से बचा जा सकता है। नैदानिक संदर्भ में, फेफड़े की इस्किमिया रीपरफ्यूजन चोट (जिसे फेफड़े के आईआरआई या एलआईआरआई के रूप में भी जाना जाता है) कई प्रक्रियाओं के कारण होती है, जिसमें फुफ्फुसीय अन्त: शल्यता, पुनर्जीवित रक्तस्रावी आघात और फेफड़ों के प्रत्यारोपण तक सीमित नहीं है। वर्तमान में एलआईआरआई के लिए सीमित प्रभावी उपचार विकल्प हैं। यहां, हम फेफड़ों के आईआर का एक प्रतिवर्ती सर्जिकल मॉडल प्रस्तुत करते हैं जिसमें पहले ओरोट्राचेल इंटुबैशन शामिल है, जिसके बाद एकतरफा बाएं फेफड़े की इस्किमिया और संरक्षित वायुकोशीय वेंटिलेशन या गैस विनिमय के साथ पुनरावृत्ति होती है। चूहे एक बाएं थोराकोटॉमी से गुजरते हैं, जिसके माध्यम से बाईं फुफ्फुसीय धमनी को प्रतिवर्ती स्लिपनॉट का उपयोग करके उजागर, विज़ुअलाइज़, पृथक और संपीड़ित किया जाता है। सर्जिकल चीरा तब इस्केमिक अवधि के दौरान बंद हो जाता है, और जानवर को जागृत और निकाला जाता है। माउस के अनायास सांस लेने के साथ, फुफ्फुसीय धमनी के चारों ओर स्लिपनॉट जारी करके रीपरफ्यूजन स्थापित किया जाता है। यह नैदानिक रूप से प्रासंगिक उत्तरजीविता मॉडल फेफड़ों की आईआर चोट, संकल्प चरण, फेफड़ों के कार्य पर डाउनस्ट्रीम प्रभाव, साथ ही प्रयोगात्मक निमोनिया से जुड़े दो-हिट मॉडल के मूल्यांकन की अनुमति देता है। तकनीकी रूप से चुनौतीपूर्ण होने के बावजूद, इस मॉडल को कुछ हफ्तों से महीनों के दौरान 80% -90% की अंतिम उत्तरजीविता या सफलता दर के साथ महारत हासिल की जा सकती है।

Introduction

इस्केमिया रीपरफ्यूजन (आईआर) की चोट तब हो सकती है जब कुछ समय की रुकावट के बाद रक्त प्रवाह को एक अंग या ऊतक बिस्तर पर बहाल किया जाता है। फेफड़ों में, आईआर अलगाव में या अन्य हानिकारक प्रक्रियाओं जैसे संक्रमण, हाइपोक्सिया, एटेलेक्टेसिस, वोलुट्रॉमा (यांत्रिक वेंटिलेशन के दौरान उच्च ज्वारीय मात्रा से), बैरोट्रॉमा (यांत्रिक वेंटिलेशन के दौरान उच्च शिखर या निरंतर दबाव), या कुंद (गैर-मर्मज्ञ) फेफड़ों की चोट 1,2,3 के साथ हो सकता है। . एलआईआरआई के तंत्र और एलआईआरआई परिणामों पर समवर्ती प्रक्रियाओं (जैसे, संक्रमण) के प्रभाव के बारे में हमारे ज्ञान में कई अंतराल हैं, और एलआईआरआई के लिए उपचार के विकल्प भी सीमित हैं। शुद्ध एलआईआरआई के एक इनविवो मॉडल को अलगाव में फेफड़ों की आईआर चोट के पैथोफिज़ियोलॉजी की पहचान करने और किसी भी बहु-हिट प्रक्रिया में इसके योगदान का अध्ययन करने की आवश्यकता होती है जिसमें फेफड़ों की चोट एक घटक है।

मुराइन फेफड़े आईआर मॉडल का उपयोग कई प्रक्रियाओं के फेफड़ों-विशिष्ट पैथोफिज़ियोलॉजी का अध्ययन करने के लिए किया जा सकता है, जिसमें फेफड़े के प्रत्यारोपण3, फुफ्फुसीय अन्त: शल्यता4, और पुनर्जीवन के साथ रक्तस्रावी आघात के बाद फेफड़ों की चोटशामिल है। वर्तमान में उपयोग किए जाने वाले मॉडलमें सर्जिकल फेफड़े प्रत्यारोपण 6, हिलर क्लैंपिंग7, एक्स विवो फेफड़े छिड़काव8 और हवादार फेफड़े आईआर9 शामिल हैं। यहां, हम बाँझ फेफड़ों की चोट के मुराइन वेंटिलेटेड फेफड़े के आईआर मॉडल के लिए एक विस्तृत प्रोटोकॉल प्रदान करते हैं। इस दृष्टिकोण के कई लाभ हैं (चित्रा 2), जिसमें यह न्यूनतम हाइपोक्सिया और न्यूनतम एटेलेक्टेसिस को प्रेरित करता है, और यह एक उत्तरजीविता सर्जरी मॉडल है जो दीर्घकालिक अध्ययन की अनुमति देता है।

हिलर क्लैंपिंग और एक्स विवो छिड़काव मॉडल जैसे अन्य मॉडलों पर एलआईआरआई के इस मॉडल को चुनने के कारण निम्नलिखित हैं: यह मॉडल एटेलेक्टेसिस, मैकेनिकल वेंटिलेशन और हाइपोक्सिया के भड़काऊ योगदान को कम करता है; यह चक्रीय वेंटिलेशन को संरक्षित करता है; यह विवो परिसंचरण प्रतिरक्षा प्रणाली में एक बरकरार रखता है जो आईआर चोट का जवाब दे सकता है; और अंत में, एक जीवित रहने की प्रक्रिया के रूप में, यह द्वितीयक चोट उत्पादन (2-हिट मॉडल) और चोट समाधान के तंत्र के दीर्घकालिक विश्लेषण की अनुमति देता है। कुल मिलाकर, हमारा मानना है कि यह हवादार फेफड़े आईआर मॉडल आईआर चोट का “शुद्धतम” रूप प्रदान करता है जिसे प्रयोगात्मक रूप से अध्ययन किया जा सकता है।

अन्य प्रकाशनों ने आईटी इंजेक्शन या इंस्टॉलेशन10,11 करने के लिए चूहों के ओरोट्राचेल इंटुबैशन के उपयोग का वर्णन किया है, लेकिन जीवित रहने की सर्जरी के लिए शुरुआती बिंदु के रूप में नहीं जैसा कि इस मॉडल में है। एक ओरोट्राचेल ट्यूब का प्लेसमेंट ऑपरेटिव फेफड़े के पतन की अनुमति देकर फेफड़ों की सर्जरी के प्रदर्शन की अनुमति देता है। यह प्रक्रिया के अंत में फेफड़ों के पुन: मुद्रास्फीति के लिए भी अनुमति देता है, जो न्यूमोथोरैक्स के लिए और प्रक्रियाओं के समापन पर सहज वेंटिलेशन पर लौटने के लिए माउस की क्षमता के लिए महत्वपूर्ण है। अंत में, सुरक्षित ओरोट्राचेल ट्यूब को हटाना एक सरल प्रक्रिया है, जो एक आक्रामक ट्रेकोटॉमी के विपरीत, जीवित रहने की सर्जरी के साथ संगत है। यह एलआईआरआई और संबंधित विकारों की प्रगति और समाधान को समझने के साथ-साथ पुरानी चोट मॉडल के निर्माण पर केंद्रित दीर्घकालिक शोध अध्ययनों की अनुमति देता है।

Protocol

नीचे वर्णित सभी प्रक्रियाओं और चरणों को कैलिफोर्निया सैन फ्रांसिस्को विश्वविद्यालय में संस्थागत पशु देखभाल और उपयोग समिति (आईएसीयूसी) द्वारा अनुमोदित किया गया था। किसी भी माउस स्ट्रेन का उपयोग किय?…

Representative Results

एकतरफा हवादार बाँझ फेफड़े की इस्किमिया (आईआर) चोट से उत्पन्न सूजन: इस्किमिया के 1 घंटे बाद, हमने एलिसा और क्यूआरटी-पीसीआर दोनों द्वारा सीरम और फेफड़ों के ऊतकों में साइटोकिन्स के स्तर में वृद्धि देखी, जो 1…

Discussion

यह पांडुलिपि डोड-ओ एट अल.9 द्वारा विकसित हवादार फेफड़े के आईआर मॉडल को करने में शामिल चरणों का विवरण देती है। इस मॉडल ने अलगाव14,15,16,17 में फेफड़ों के आईआर से ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम को एनेस्थीसिया और पेरीओपरेटिव केयर विभाग, कैलिफोर्निया विश्वविद्यालय सैन फ्रांसिस्को और सैन फ्रांसिस्को जनरल अस्पताल से विभागीय समर्थन के साथ-साथ एनआईएच आर 01 पुरस्कार (एपी के लिए): 1 आर 01एचएल 146753 द्वारा वित्त पोषित किया गया था।

Materials

Equipment
Fiber Optic Light Pipe Cole-Parmer UX-41720-65 Fiberoptic light pipe
Fiber Optic Light Source AmScope SKU: CL-HL250-B Light source for fiberoptic lights
Germinator 500 Cell Point Scientific, Inc. No.5-1450 Bead Sterilizer
Heating Pad AIMS 14-370-223 Alternative option
Lithium.Ion Grooming Kits(hair clipper) WAHL home products SKU 09854-600B To remove mouse hair on surgical site
Microscope Nikon SMZ-10 Other newer options available at the company website
MiniVent Ventilator Havard Apparatus Model 845 Mouse ventilator
Ultrasonic Cleaner Cole-Parmer UX-08895-05 Clean tools that been used in operation
Warming Pad Kent Scientific RT-0501 To keep mouse warm while recovering from surgery
Weighing Scale Cole-Parmer UX-11003-41 Weighing scale
Surgery Tools
4-0 Silk Suture Ethicon 683G For closing muscle layer
7-0 Prolene Suture Ethicon Industry EP8734H Using for making a slip knot of left pulmonary artery
Bard-Parker (11) Scalpel (Rib-Back Carbon Steel Surgical Blade, sterile, single use) Aspen Surgical 372611 For entering thoracic cavity (option 1)
Bard-Parker (12) Scalpel Aspen Surgical 372612 For entering thoracic cavity (option 2)
Extra Fine Graefe Forceps FST 11150-10 Muscle/rib holding forceps
Magnetic Fixator Retraction System FST 1. Base Plate (Nos. 18200-03)
2. Fixators (Nos. 18200-01)
3. Retractors (Nos. 18200-05 through 18200-12)
4. Elastomer (Nos.18200-07) 5. Retractor(No.18200-08)
Small Animal Retraction System
Monoject Standard Hypodermic Needle COVIDIEN 05-561-20 For medication delivery IP
Narrow Pattern Forceps FST 11002-12 Skin level forceps
Needle holder/Needle driver FST 12565-14 for holding needles
Needles BD 305110 26 gauge needle for externalizing slipknot (24 or 26 gauge needle okay too)
PA/Vessel Dilating forceps FST 00125-11 To hold PA; non-damaging gripper
Scissors FST 14060-09 Used for incision and cutting into the muscular layer durging surgery
Ultra Fine Dumont micro forceps FST 11295-10 (Dumont #5 forceps, Biology tip, tip dimension:0.05*0.02mm,11cm) For passing through the space between the left pulmonary artery and bronchus
Reagents
0.25% Bupivacaine Hospira, Inc. 0409-1159-02 Topical analgesic used during surgical wound closure
Avertin (2,2,2-Tribromoethanol) Sigma-Aldrich T48402-25G Anesthetic, using for anesthetize the mouse for IR surgery, the concentration used in IR surgery is 250-400 mg/kg.
Buprenorphine Covetrus North America 59122 Analgesic: concentration used for surgery is 0.05-0.1 mg/kg
Eye Lubricant BAUSCH+LOMB Soothe Lubricant Eye Ointment Relieves dryness of the eye
Povidone-Iodine 10% Solution MEDLINE INDUSTRIES INC SKU MDS093944H (2 FL OZ, topical antiseptic) Topical liquid applied for an effective first aid antiseptic at beginning of surgery
Materials
Alcohol Swab BD brand  BD 326895 for sterilzing area of injection and surgery
Plastic film KIRKLAND Stretch-Tite premium Alternative for covering the sterilized surgical field (more cost effective)
Rodent Surgical Drapes Stoelting 50981 Sterile field or drape for surgical field
Sterile Cotton Tipped Application Pwi-Wnaps 703033 used for applying eye lubricant
Top Sponges Dukal Corporaton Reorder # 5360 Stopping bleeding from skin/muscle

References

  1. Shen, H., Kreisel, D., Goldstein, D. R. Processes of sterile inflammation. Journal of Immunology. 191 (6), 2857-2863 (2013).
  2. Fiser, S. M., et al. Lung transplant reperfusion injury involves pulmonary macrophages and circulating leukocytes in a biphasic response. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 121 (6), 1069-1075 (2001).
  3. Lama, V. N., et al. Models of lung transplant research: A consensus statement from the National Heart, Lung, and Blood Institute workshop. JCI Insight. 2 (9), 93121 (2017).
  4. Miao, R., Liu, J., Wang, J. Overview of mouse pulmonary embolism models. Drug Discovery Today: Disease Models. 7 (3-4), 77-82 (2010).
  5. Mira, J. C., et al. Mouse injury model of polytrauma and shock. Methods in Molecular Biology. 1717, 1-15 (2018).
  6. Krupnick, A. S., et al. Orthotopic mouse lung transplantation as experimental methodology to study transplant and tumor biology. Nature Protocols. 4 (1), 86-93 (2009).
  7. Gielis, J. F., et al. A murine model of lung ischemia and reperfusion injury: Tricks of the trade. The Journal of Surgical Research. 194 (2), 659-666 (2015).
  8. Nelson, K., et al. Animal models of ex vivo lung perfusion as a platform for transplantation research. World Journal of Experimental Medicine. 4 (2), 7-15 (2014).
  9. Dodd-o, J. M., Hristopoulos, M. L., Faraday, N., Pearse, D. B. Effect of ischemia and reperfusion without airway occlusion on vascular barrier function in the in vivo mouse lung. Journal of Applied Physiology. 95 (5), 1971-1978 (2003).
  10. Lawrenz, M. B., Fodah, R. A., Gutierrez, M. G., Warawa, J. Intubation-mediated intratracheal (IMIT) instillation: a noninvasive, lung-specific delivery system. Journal of Visualized Experiments. (93), e52261 (2014).
  11. Rayamajhi, M., et al. Non-surgical intratracheal instillation of mice with analysis of lungs and lung draining lymph nodes by flow cytometry. Journal of Visualized Experiments. (51), e2702 (2011).
  12. Dodd-o, J. M., Hristopoulos, M. L., Welsh-Servinsky, L. E., Tankersley, C. G., Pearse, D. B. Strain-specific differences in sensitivity to ischemia-reperfusion lung injury in mice. Journal of Applied Physiology. 100 (5), 1590-1595 (2006).
  13. Prakash, A., et al. Lung ischemia reperfusion (IR) is a sterile inflammatory process influenced by commensal microbiota in mice. Shock. 44 (3), 272-279 (2015).
  14. Prakash, A., et al. Alveolar macrophages and toll-like receptor 4 mediate ventilated lung ischemia reperfusion injury in mice. Anesthesiology. 117 (4), 822-835 (2012).
  15. Dodd-o, J. M., et al. The role of natriuretic peptide receptor-A signaling in unilateral lung ischemia-reperfusion injury in the intact mouse. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 294 (4), 714-723 (2008).
  16. Prakash, A., Kianian, F., Tian, X., Maruyama, D. Ferroptosis mediates inflammation in lung ischemia-reperfusion (IR) sterile injury in mice. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 201, (2020).
  17. Tian, X., et al. NLRP3 inflammasome mediates dormant neutrophil recruitment following sterile lung injury and protects against subsequent bacterial pneumonia in mice. Frontiers in Immunology. 8, 1337 (2017).
  18. Tian, X., Hellman, J., Prakash, A. Elevated gut microbiome-derived propionate levels are associated with reduced sterile lung inflammation and bacterial immunity in mice. Frontiers in Microbiology. 10, 159 (2019).
  19. Liu, Q., Tian, X., Maruyama, D., Arjomandi, M., Prakash, A. Lung immune tone via gut-lung axis: Gut-derived LPS and short-chain fatty acids’ immunometabolic regulation of lung IL-1β, FFAR2, and FFAR3 expression. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 321 (1), 65-78 (2021).
  20. Dodd-o, J. M., et al. Interactive effects of mechanical ventilation and kidney health on lung function in an in vivo mouse model. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 296 (1), 3-11 (2009).
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Citer Cet Article
Liao, W., Maruyama, D., Kianian, F., Tat, C., Tian, X., Hellman, J., Dodd-o, J. M., Prakash, A. A Mouse Model of Orotracheal Intubation and Ventilated Lung Ischemia Reperfusion Surgery. J. Vis. Exp. (187), e64383, doi:10.3791/64383 (2022).

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