Summary

Infrarød termografi for påvisning av endringer i brunt fettvevsaktivitet

Published: September 28, 2022
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for måling av fettvevsaktivitet etter et måltid hos mennesker og forsøksdyr.

Abstract

Måling av brunt fettvev (BAT) aktivitet ved positronemisjonstomografi computertomografi (PET-CT) via akkumulering av 18F-fluorodeoksyglukose (FDG) etter et måltid eller hos overvektige eller diabetespasienter mislykkes som valgt metode. Hovedårsaken er at 18F-FDG konkurrerer med den postprandial høye glukoseplasmakonsentrasjonen for den samme glukosetransportøren på membranen til BAT-celler. I tillegg bruker BAT fettsyrer som energikilde også, noe som ikke er synlig med PET-CT og kan endres sammen med glukosekonsentrasjonen hos overvektige og diabetespasienter. Derfor, for å estimere den fysiologiske betydningen av BAT hos dyr og mennesker, brukes en ny infrarød termografimetode som brukes i nyere publikasjoner.

Etter faste over natten ble BAT-aktivitet målt ved infrarød termografi før og etter et måltid hos frivillige mennesker og hunnmus av villtype. Kameraprogramvaren beregner objektets temperatur ved hjelp av avstand fra objektet, hudemissivitet, reflektert romtemperatur, lufttemperatur og relativ fuktighet. Hos mus var det barberte området over BAT et område av interesse for hvilke gjennomsnittlige og maksimale temperaturer ble målt. Fasen av brunstsyklusen hos hunnmus ble bestemt etter et eksperiment med vaginale utstryk farget med cresylfiolett (0,1%) flekkløsning. Hos friske frivillige ble to hudområder i nakken valgt: det supraklavikulære området (over kragebeinet, hvor BAT-celler er tilstede) og det interklavikulære området (mellom kragebenene, hvor det ikke oppdages BAT-vev). BAT-aktivitet bestemmes av subtraksjonen av disse to verdiene. Også gjennomsnittlige og maksimale temperaturer på hudområder kan bestemmes hos dyr og mennesker.

Endringer i BAT-aktivitet etter et måltid målt ved infrarød termografi, en ikke-invasiv og mer sensitiv metode, ble vist å være kjønn, alder og fase av brunstsyklusen avhengig av laboratoriedyr. Som en del av diettindusert termogenese ble BAT-aktivering hos mennesker også vist seg å være avhengig av kjønn, alder og kroppsmasseindeks. Videre bestemmelse av patofysiologiske endringer i BAT-aktivitet etter et måltid vil være av stor betydning for deltakere med høye glukoseplasmakonsentrasjoner (fedme og diabetes mellitus type 2), samt hos forskjellige laboratoriedyr (knock-out mus). Denne metoden er også et variabelt verktøy for å bestemme mulige aktiverende legemidler som kan forynge BAT-aktivitet.

Introduction

Brunt fettvev (BAT), i motsetning til hvitt fettvev (WAT), lagrer ikke, men bruker heller energi. Ved sympatisk stimulering bruker BAT fettsyrer og glukose og produserer varme ved aktivering av frakoblingsprotein 1 (UCP1). Funksjonen til UCP1 er å bruke en H + gradient mellom to mitokondrielle membraner for å produsere varme i stedet for ATP. Funksjonen til BAT er å øke varmeproduksjonen under kalde forhold, noe som fører til en økning i energiforbruket1. Etter kald eksponering hemmer sensoriske innganger fra huden varmfølsomme nevroner i median preoptisk (MnPO) kjernen i det hypotalamiske preoptiske området (POA), noe som reduserer den hemmende effekten av POA-nevroner på rostral raphe pallidus (rRPa). Aktiveringen av rRPa-nevroner øker sympatisk aktivitet, som etterfølges av en økning i BAT-aktivitet 2,3. Kuldeindusert BAT-aktivering forbedrer insulinfølsomheten hos mennesker4, og denne aktiviteten reduseres hos mennesker med økt kroppsmasseindeks (BMI) og alder 1,5,6,7.

Bortsett fra sin rolle i kuldeindusert termogenese, etter et måltid, øker glukoseopptaket i BAT i den magre mannlige befolkningen, noe som bidrar til diettindusert termogenese (DIT), som er høyere hos BAT-positive mannlige personer 8,9. Den toppmoderne teknikken som brukes til å måle BAT-aktivitet er positronutslippstomografi computertomografi, kjent som PET-CT. Denne metoden bestemmer BAT-aktiviteten ved å måle akkumuleringen av radiotracer fluorodeoksyglukose (18F-FDG). Imidlertid mislykkes PET-CT som den valgte metoden for å oppdage aktivering av BAT etter et måltid. En av grunnene er at 18F-FDG etter et måltid konkurrerer med postprandial hyperglykemi for den samme glukosetransportøren, noe som gjør den uegnet til å bestemme BAT-aktivering etter et måltid, spesielt når man sammenligner BAT-aktivitet hos friske og diabetiske deltakere med mulige forskjeller i blodsukkerkonsentrasjoner. Videre bruker BAT fettsyrer som energikilde for varmeproduksjon som ikke er synlig med PET-CT. 18 F-FDG-akkumulering i BAT etter et måltid er knapt synlig10 og tolkes derfor som et negativt resultat i de fleste tilfeller. Ikke overraskende ble det nylig foreslått at aktiveringen av BAT er mer uttalt i den menneskelige befolkningen enn vi tidligere hadde trodd; Derfor er en ny tilnærming for å oppdage BAT-aktivitet og dens involvering i metabolske forstyrrelser nødvendig7. Et forsøk på å løse dette problemet er å måle volumet av BAT med magnetisk resonansavbildning (MR) hos prediabetespasienter og pasienter med diabetes mellitus type 2 (T2DM) med insulinresistens11. BAT-volum målt ved MR er imidlertid ikke en tilstrekkelig indikator for å estimere daglig funksjon og bruk av glukose og fettsyrer ved BAT. Derfor, for å estimere reelle forskjeller i BAT-aktivitet hos friske versus T2DM-pasienter, er det nødvendig med en ny tilnærming som gir en mulighet til å finne ut den patologiske mekanismen for BAT-funksjonsfeil hos T2DM-pasienter.

For å bestemme aktiveringen av BAT, utførte vi målinger av BAT-varmeproduksjon før og etter et måltid ved hjelp av infrarød (IR) termografi (figur 1) 12,13. Etablering av IR-termografi som en metode for å måle BAT-aktivitet etter et måltid hos friske og overvektige personer eller pasienter med diabetes mellitus vil ha stor innvirkning på feltet. Den dag i dag brukes IR-termografi til bestemmelse av kuldeindusert aktivering av BAT13,14,15. I nyere menneskelig historie er kuldeindusert BAT-aktivitet ikke veldig uttalt lenger (på grunn av riktig oppvarming av habitater, riktig klær), mens BAT-aktivering etter et måltid skjer hver dag. Videre er den fysiologiske reguleringen av disse to BAT-funksjonene via hypothalamus helt forskjellig. Etter et måltid fører aktiveringen av proopiomelanocortin (POMC)-uttrykkende nevroner i den hypotalamiske bueformede kjernen (Arc) til en økning i sympatisk nerveaktivitet via rRPa16. Kuldeindusert aktivering av BAT målt ved IR-termografi eller PET-CT er feil når det brukes som et mål for daglig BAT-aktivitet. Økt BAT-aktivitet etter et måltid etterfølges av glukoseutnyttelse, noe som til syvende og sist er viktig for å opprettholde glukosehomeostase, insulinfølsomhet og daglig regulering av glukosekonsentrasjon. Postprandial BAT-aktivering fører til en økning i postprandial glukoseforbruk, etterfulgt av en økning i varmeproduksjon og kroppstemperatur (DIT). Dette ble vist å være kjønn, alder og BMI-avhengig12. Lignende kjønnsforskjeller i BAT-aktivering etter et måltid er observert hos mannlige og kvinnelige laboratoriemus17. Disse funnene samsvarer med nylig oppdagede kjønnsforskjeller i reguleringen av BAT av Burke et al., som viste at hypotalamisk regulering av BAT-via en underpopulasjon av POMC-nevroner er forskjellig hos mannlige og kvinnelige mus18. Den postprandial aktiveringen av BAT er mindre hos kvinner, eldre befolkninger og overvektige mennesker. Mangelen på BAT-aktivering etter et måltid (redusert glukoseutnyttelse) kan føre til en høyere forekomst av nedsatt glukosetoleranse hos kvinner 19,20,21,22. Dessverre ble flertallet av studier på BAT-aktivering bare gjort på menn. Ved å aktivere BAT etter et måltid, øker glukoseopptaket i den magre mannlige befolkningen. Det er ikke overraskende at DIT etter BAT-aktivering er høyere hos BAT-positive mannlige personer 8,9. Videre forbedrer BAT-transplantasjon hos hannmus glukosetoleransen, øker insulinfølsomheten og reduserer kroppsvekt og fettmasse23.

PET-CT mislykkes som en metode for valg for måling av BAT-aktivitet, spesielt etter et måltid. Derfor ble det utviklet en ikke-invasiv og mer sensitiv metode. IR-termografi gjør det mulig å estimere BAT-aktivitet hos forskjellige laboratoriedyr (utslagsmus), så vel som menneskelige deltakere, uavhengig av kjønn, alder eller effekten av forskjellige patologiske forhold på BAT-aktivitet. En ekstra fordel med denne metoden er enkelheten for deltakere og forsøksdyr, noe som gjør at vi kan estimere de potensielle fordelene med BAT-boosterterapi. De nylige studiene som bruker IR-termografi for å bestemme den fysiologiske oppførselen til BAT etter kald eksponering eller et måltid, er beskrevet i den nylige publikasjonen av Brasil et al.24.

Protocol

Alle forsøksprosedyrer på forsøksdyr ble godkjent av Nasjonal etisk komité og Landbruksdepartementet (EP 185/2018). Forsøkene ble utført i samsvar med den etiske kodeksen til The Croatian Society for Laboratory Animal Science og ARRIVE retningslinjer. Alle prosedyrer utført i studier som involverte menneskelige deltakere var i samsvar med Helsinkideklarasjonen og godkjent av etikkomiteen ved Universitetet i Zagreb, School of Medicine (UP / I-322-01 / 18-01/56). I denne studien presenterer vi resultatene fra tre kv…

Representative Results

Den enkleste måten å bestemme BAT-aktivitet på er å trekke den maksimale hudtemperaturen over BAT før og etter et måltid hos mennesker. En bedre måte å beregne BAT-aktivitet på er å velge to regioner av interesse: hudområdet over BAT, som ligger i det supraklavikulære området, og det interklavikulære området av huden der det ikke finnes BAT-vev hos mennesker, utpekt som referanseområde (i henhold til PET-CT; Figur 1). BAT-aktivitet bestemmes da lett av subtraksjonen av disse …

Discussion

Nylige studier presenterer økende bevis om fysiologisk regulering og betydning av BAT-aktivitet hos voksne mennesker og dyr i utviklingen av fedme og diabetes mellitus. Videre blir mulig BAT-aktivering av eksogene aktivatorer et mål for farmasøytiske selskaper. For å kunne estimere den fysiologiske reguleringen og patofysiologiske betydningen av BAT i svært belastende sykdommer, samt oppdage en potensiell terapeutisk tilnærming, blir infrarød termografi den foretrukne metoden. Selv om IR-teknologien fremstår som …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble finansiert av Croatian Science Foundation forskningsstipend (IP-2018-01- 7416).

Materials

0.1% cresyl violet acetate  Commonly used chemical
Device for measuring air temperature and humidity Kesterl Kestrel 4200 Certificat of conformity
External data storage Hard Drive with at least 1 TB
Glass microscopic slides Commonly used
Small cotton tip swab  Urethral swabs
Software for analysis FLIR Systems, Wilsonville, OR, USA FLIR Tools
Software for meassurements FLIR Systems, Wilsonville, OR, USA ResearchIR software FLIR ResearchIR Max, version 4.40.12.38 (64-bit)
Thermac Camera FLIR Systems, Wilsonville, OR, USA FLIR T-1020

References

  1. van Marken Lichtenbelt, W. D., et al. Cold-activated brown adipose tissue in healthy men. New England Journal of Medicine. 360 (15), 1500-1508 (2009).
  2. Morrison, S. F., Nakamura, K. Central neural pathways for thermoregulation. Frontiers in Bioscience. 16 (1), 74-104 (2011).
  3. Contreras, C., et al. The brain and brown fat. Annals of Medicine. 47 (2), 150-168 (2015).
  4. Chondronikola, M., et al. Brown adipose tissue improves whole-body glucose homeostasis and insulin sensitivity in humans. Diabetes. 63 (12), 4089-4099 (2014).
  5. Ouellet, V., et al. Outdoor temperature, age, sex, body mass index, and diabetic status determine the prevalence, mass, and glucose-uptake activity of 18F-FDG-detected BAT in humans. Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 96 (1), 192-199 (2011).
  6. Pfannenberg, C., et al. Impact of age on the relationships of brown adipose tissue with sex and adiposity in humans. Diabetes. 59 (7), 1789-1793 (2010).
  7. Leitner, B. P., et al. Mapping of human brown adipose tissue in lean and obese young men. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (32), 8649-8654 (2017).
  8. Vosselman, M. J., et al. Brown adipose tissue activity after a high-calorie meal in humans. American Journal of Clinical Nutrition. 98 (1), 57-64 (2013).
  9. Hibi, M., et al. Brown adipose tissue is involved in diet-induced thermogenesis and whole-body fat utilization in healthy humans. International Journal of Obesity. 40 (11), 1655-1661 (2016).
  10. Fenzl, A., Kiefer, F. W. Brown adipose tissue and thermogenesis. Hormone Molecular Biology and Clinical Investigation. 19 (1), 25-37 (2014).
  11. Koksharova, E., et al. The relationship between brown adipose tissue content in supraclavicular fat depots and insulin sensitivity in patients with type 2 diabetes mellitus and prediabetes. Diabetes Technology & Therapeutics. 19 (2), 96-102 (2017).
  12. Habek, N., Kordić, M., Jurenec, F., Dugandžić, A. Infrared thermography, a new method for detection brown adipose tissue activity after a meal in humans. Infrared Physics & Technology. 89, 271-276 (2018).
  13. Lee, P., Ho, K. K. Y. Hot fat in a cool man: Infrared thermography and brown adipose tissue. Diabetes, Obesity and Metabolism. 13 (1), 92-93 (2011).
  14. Ang, Q. Y., et al. A new method of infrared thermography for quantification of brown adipose tissue activation in healthy adults (TACTICAL): A randomized trial. Journal of Physiological Sciences. 67 (3), 395-406 (2017).
  15. Jang, C., et al. Infrared thermography in the detection of brown adipose tissue in humans. Physiological Reports. 2 (11), 12167 (2014).
  16. Dodd, G. T., et al. Leptin and insulin act on POMC neurons to promote the browning of white fat. Cell. 160 (1-2), 88-104 (2015).
  17. Habek, N., et al. Activation of brown adipose tissue in diet-induced thermogenesis is GC-C dependent. Pflügers Archiv: European Journal of Physiology. 472 (3), 405-417 (2020).
  18. Burke, L. K., et al. Sex difference in physical activity, energy expenditure and obesity driven by a subpopulation of hypothalamic POMC neurons. Molecular Metabolism. 5 (3), 245-252 (2016).
  19. Glumer, C., Jorgensen, T., Borch-Johnsen, K. Prevalences of diabetes and impaired glucose regulation in a Danish population: The Inter99 study. Diabetes Care. 26 (8), 2335-2340 (2003).
  20. Sicree, R. A., et al. Differences in height explain gender differences in the response to the oral glucose tolerance test-the AusDiab study. Diabetic Medicine. 25 (3), 296-302 (2008).
  21. van Genugten, R. E., et al. Effects of sex and hormone replacement therapy use on the prevalence of isolated impaired fasting glucose and isolated impaired glucose tolerance in subjects with a family history of type 2 diabetes. Diabetes. 55 (12), 3529-3535 (2006).
  22. Williams, J. W., et al. Gender differences in the prevalence of impaired fasting glycaemia and impaired glucose tolerance in Mauritius. Does sex matter. Diabetic Medicine. 20 (11), 915-920 (2003).
  23. Stanford, K. I., et al. Brown adipose tissue regulates glucose homeostasis and insulin sensitivity. Journal of Clinical Investigation. 123 (1), 215-223 (2013).
  24. Brasil, S., et al. A systematic review on the role of infrared thermography in the brown adipose tissue assessment. Reviews in Endocrine and Metabolic Disorders. 21 (1), 37-44 (2020).
  25. Byers, S. L., Wiles, M. V., Dunn, S. L., Taft, R. A. Mouse estrous cycle identification tool and images. PLoS One. 7 (4), 35538 (2012).
  26. Crane, J. D., Mottillo, E. P., Farncombe, T. H., Morrison, K. M., Steinberg, G. R. A standardized infrared imaging technique that specifically detects UCP1-mediated thermogenesis in vivo. Molecular Metabolism. 3 (4), 490-494 (2014).
  27. Hartwig, V., et al. Multimodal imaging for the detection of brown adipose tissue activation in women: A pilot study using NIRS and infrared thermography. Journal of Healthcare Engineering. 2017, 5986452 (2017).
  28. James, L., et al. The use of infrared thermography in the measurement and characterization of brown adipose tissue activation. Temperature. 5 (2), 147-161 (2018).
  29. Folgueira, C., et al. Hypothalamic dopamine signaling regulates brown fat thermogenesis. Nature Metabolism. 1 (8), 811-829 (2019).
  30. Ratko, M., Habek, N., Kordić, M., Dugandžić, A. The use of infrared technology as a novel approach for studies with female laboratory animals. Croatian Medical Journal. 61 (4), 346-353 (2020).
check_url/fr/64463?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Kordić, M., Dugandžić, J., Ratko, M., Habek, N., Dugandžić, A. Infrared Thermography for the Detection of Changes in Brown Adipose Tissue Activity. J. Vis. Exp. (187), e64463, doi:10.3791/64463 (2022).

View Video