Summary

Eritrosit Sedimantasyon Hızı: Tıbbi Bağlamda Fizik Odaklı Bir Karakterizasyon

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

Eritrosit sedimantasyon hızı (ESR), rutin sağlık kontrollerinde ve tıbbi tanıda sıklıkla kullanılan fiziksel bir parametredir. Modern kolloidal bilgiye dayanarak, tüm sedimantasyon eğrisinden fiziksel olarak anlamlı parametrelerin çıkarılmasına izin veren teorik bir model yakın zamanda geliştirilmiştir. Burada, ESR’yi zaman içinde otomatik olarak toplamak ve bu son modelin parametrelerini bu otomatik veri koleksiyonundan çıkarmak için bir protokol sunuyoruz. Bu rafine parametrelerin tıbbi tanıklığı da iyileştirmesi muhtemeldir.

Abstract

Eritrosit (veya kırmızı kan hücresi) sedimantasyon hızı (ESR), rutin sağlık kontrollerinde ve tıbbi tanıda sıklıkla kullanılan fiziksel olarak türetilmiş bir kan parametresidir. Örneğin, inflamasyon durumunda, fibrinojen ve diğer plazma proteinlerindeki ilişkili artış nedeniyle daha yüksek bir ESR gözlenir. Bu artışın, fibrinojen artışının neden olduğu daha büyük kırmızı kan hücreleri (RBC’ler) agregalarının oluşumundan kaynaklandığına inanılıyordu. Gerçekten de, fibrinojen, RBC’lerin ajan besleyici bir agregasyonudur ve Stokes rejiminde, kan-daha büyük agregalarda daha hızlı tortu gözlendiği varsayılmaktadır. Bununla birlikte, bu hipoteze dayanan tüm ESR ölçüm modelleri, başka hiçbir sistemde gerekli olmayan daha spesifik fiziksel varsayımlar gerektirir. Ayrıca, kolloidal süspansiyonlar alanındaki modern çalışmalar, çekici parçacıkların sızan agregalar (yani kap kadar geniş agregalar) oluşturduğunu ortaya koymuştur. Bu kolloidlerin çökelmesi daha sonra “kolloidal jel çökmesi” olarak adlandırılan bir şeyi takip eder. Son zamanlarda, RBC’lerin aslında aynı davranışı izlediği gösterilmiştir. Bu hipotez aynı zamanda, sağlam ve fiziksel olarak anlamlı tanımlayıcıların çıkarılabileceği RBC’lerin çökeltme eğrisini verimli ve analitik olarak modellemeye izin verir. Bu makalede, böyle bir analizin nasıl yapılacağı açıklanmakta ve bu yaklaşımın faydaları tartışılmaktadır.

Introduction

Eritrosit sedimantasyon hızı (ESR), yirminci yüzyılda kanıta dayalı tıpta resmen tanıtılan tıbbi bir in vitro klinik araçtır 1,2,3,4. Şu anda dünya çapında spesifik olmayan bir enflamatuar test olarak veya bazı spesifik koşulların evrimini izlemek için kullanılmaktadır 5,6,7,8. Bu esas olarak fibrinojen konsantrasyonundaki bir artıştan kaynaklanmaktadır, aynı zamanda IgM 1,9,10,11 gibi diğer plazma bileşenlerinde de bir artışa bağlıdır. Mevcut Westergren standart protokolüne göre, ESR değerleri, hücresiz plazma tabakasının belirli bir zaman noktasında (30 dakika veya 1 saat) tipik bir 20 cm’lik dikey bir tüpüistirahatte dikey olarak bıraktıktan sonra ölçümü olarak bildirilmektedir. Bununla birlikte, bu ölçüm yöntemi, maksimum çökelme hızı13’e ulaşmadan önce bir gecikme de dahil olmak üzere, çökeltme işleminde niteliksel olarak farklı aşamalar bildirildiği için eleştirilmiştir. Bu gecikme, sağlıklı örneklerin yaklaşık yarısında 1 saatten fazla sürer14. Bu fazdaki hız, çökeltme15’in ikinci, daha hızlı fazından farklı bir ölçeklemeye uyar. Okumayı ilk saat boyunca ortalama yerleşme hızıyla sınırlamak, daha sonra farklı bireyler arasındaki çeşitli kan özelliklerinin farklı bir karışımını karşılaştırır.

Dahası, son zamanlarda bu protokolün arkasındaki olağan teorik düşüncelerin hatalıolduğu gösterilmiştir 16,17,18. Fizyolojik hematokritte (yaklaşık% 25’in üzerinde), kırmızı kan hücreleri (RBC’ler) ayrı agregalar olarak değil, genellikle bahsedilen Stokes sedimantasyonu 16,17’den farklı bir fiziksel denklem kümesine uyan, sürekli, sözde sızan, RBC’ler 17,18 ağı olarak çökelir. Sedimantasyonun (tüm eğri) zaman çözümlü ölçümlerine dayanan fiziksel bir tanımlamanın göz önünde bulundurulmasının, bazı yeni tıbbi bağlamlarda daha sağlam olduğu gösterilmiştir19,20. Dahası, bu ölçümler, hücre şekillerinin değiştirildiği patolojilerde ESR’yi değiştiren fiziksel mekanizmalara ışık tutmak için kullanılabilir19,20. Ek olarak, yavaş bir ESR, nöroakantositoz sendromlu hastaların bir kohortunun ölçümlerinde belirtildiği gibi yararlı bir tıbbi yoruma sahip olabilir19,20. Bu makale, tüm ESR kinetiğine dayanarak, fiziksel olarak anlamlı parametrelerin ölçümünün pratik olarak nasıl uygulanacağını gözden geçirmektedir. Daha doğrusu, burada sunulan yöntem, donörün hematokritinin etkisini göz önünde bulundurmak için değeri düzeltilebilen maksimum sedimantasyon hızı Um’yi çıkarır16,17. Bu parametre geleneksel ölçüm 16,17,19,20’den daha doğru ve dolayısıyla daha güvenilirdir.

Ek olarak, bazı temel araştırmalarda, belirli bir hastanın inflamasyon durumunu izlemek yerine, hematokritin ESR 21,22,23 üzerindeki etkisini dışlamak veya RBC’lerin modifiye edilmiş bir ESR19,20,24,25’teki rolünü araştırmak ilginçtir farklı bağışçılar arasında. Hastalardan doğrudan tam kan örneği olmayan örnekleri karşılaştırmak yararlı olabilir. Bu nedenle, RBC’lerin otolog plazmada veya plazma ikame maddesinde kontrollü bir hematokrit ile yeniden askıya alınması, ESR ölçümünün ilk adımı olarak kullanılabilir. Örneğin, fosfat tamponlu salin (PBS) içinde 55 mg / mL konsantrasyona sahip Dextran 70 kDa çözeltileri, sağlıklı hücreler için kontrol aralığında bir çökeltme aralığı üretir19. Bu makale aynı zamanda bu tür adımların nasıl yürütülmesi gerektiğini ve sunulan analizin bu durumlarda da geçerli olduğunu göstermektedir.

Protocol

Kan örneği toplama ve deneyler “Ärztekammer des Saarlandes”, etik votum 51/18 tarafından onaylandı ve Helsinki Deklarasyonu’na göre bilgilendirilmiş onam alındıktan sonra gerçekleştirildi. Westergren tüplerinde etilendiamintetraasetik asit (EDTA)-antikoagüle kan (standart EDTA konsantrasyonu 1.6 mg/mL kan, Avrupa normu NF EN ISO 6710) ile standart ölçümler yapılmalıdır. Westergren tüpünü doldurmak için gereken hacim üreticiye bağlıdır (alt parçalar bazen daha geniş bir rezervuar içerdiğinde…

Representative Results

Doğru şekilde elde edilen bir görüntü dizisine örnek olarak Ek Film 1 (MovieS1.avi) verilebilir. Şekil 2’de çeşitli koşullar için modelin bir dizi karakteristik uyumu gösterilmiştir. Fibrinojen konsantrasyonu, serumda hiç fibrinojen olmadığı varsayılarak, plazma Fib0’daki fibrinojen konsantrasyonundan belirlendi. Bu nedenle, Fib = C Fib0, burada C, plazma-serum karışımındaki plazma hacim fraksiyonudur. <e…

Discussion

Otomatik protokolün verimli çalışması için, net bir arka plana ve uygun aydınlatmaya sahip olmak önemlidir. Koyu bir arka plan, verimli bir ikilileştirme eşiğinin varlığını engelleyebilir. Genellikle zamanla ortaya çıkan (artan) bazı hemolizli örnekler için, önce seçilen binarizasyon eşiğinin hem ilk hem de son resimler için uygun olduğunu doğrulamak önemlidir.

Resmin ikilileştirme süreci söz konusu olduğunda, YG ve ikilileştirme eşiğinin seçimi en hassas ad…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma, Alman Araştırma Vakfı’nın FOR 2688 – Wa1336/12 araştırma birimi ve 860436-EVIDENCE sayılı Marie Skłodowska-Curie hibe anlaşması tarafından desteklenmiştir. T. J. ve C. W., Fransız Alman Üniversitesi’nden (DFH / UFA) fon aldığını kabul ediyor. A.D., Saarland Üniversitesi Genç Araştırmacı Bursu tarafından finanse edildiğini kabul ediyor.

Materials

Anticoagulant (EDTA or Heparin) tube (for blood sample) SARSTEDT 267001 or 265 Anticoagulated blood sample to characterize
Camera EOS M50 Canon Kit EF-M18-150 IS STM Any camera should work, provided that sector alimentation, connection to computer for automated shooting and adapted objective are available
Centrifuge HERMLE 302.00 V03 – Z 36 HK Requirements: at least 3000 x g ofr 7 min.
Micro-centrifuge MLW TH21 or any other way to determine the hematocrit
Micro-hematocrit capilaries Fisher scientific 11884040 or other capillaries/containers for hematocrit determination
Phosphate Buffered Saline (PBS) ThermoFisher 10010023 1x PBS, pH 7.4, 298 Osm
Pipettes (e.g. positive displacement pipette) Gilson FD10006 Pipette required to manipulate blood and/or packed cells.Other models are of course suitable, but be careful to treat blood and pakced cells as highly viscous fluids.
Wax sealing plate Hirschmann 9120101 Sealing wax for the micro-hematocrit capillaries
Westergren tubes Praxindo A9244560 Any other standard Wetsergren tube should work too
White background with illumination / / White sheet(s) of paper behind the samples, with usual room light is perfcetly sufficient.

References

  1. Bedell, S. E., Bush, B. T. Erythrocyte sedimentation rate. From folklore to facts. The American Journal of Medicine. 78, 1001-1009 (1985).
  2. Grzybowski, A., Sak, J. Edmund Biernacki (1866-1911): Discoverer of the erythrocyte sedimentation rate. On the 100th anniversary of his death. Clinics in Dermatology. 29 (6), 697-703 (2011).
  3. Kushner, I., Mackiewicz, A. . The Acute Phase Response: An Overview. Acute Phase Proteins. , (1993).
  4. Tishkowski, K., Gupta, V. Erythrocyte Sedimentation Rate. StatPearls Publishing. , (2022).
  5. Menees, S. B., Powell, C., Kurlander, J., Goel, A., Chey, W. D. A meta-analysis of the utility of C-reactive protein, erythrocyte sedimentation rate, fecal calprotectin, and fecal lactoferrin to exclude inflammatory bowel disease in adults with IBS. The Americal Journal of Gastroenterology. 110 (3), 444-454 (2015).
  6. Brigden, M. L. Clinical utility of the erythrocyte sedimentation rate. Americal Family Physician. 60 (5), 1443-1450 (1999).
  7. Liu, S., et al. Preliminary case-control study to evaluate diagnostic values of C-reactive protein and erythrocyte sedimentation rate in differentiating active Crohn’s disease from intestinal lymphoma, intestinal tuberculosis and Behcet’s syndrome. The American Journal of the Medical Sciences. 346 (6), 467-472 (2013).
  8. Greidanus, N. V., et al. Use of erythrocyte sedimentation rate and C-reactive protein level to diagnose infection before revision total knee arthroplasty: A prospective evaluation. The Journal of Bone and Joint Surgery. 89 (7), 1409-1416 (2007).
  9. Flormann, D., Kuder, E., Lipp, P., Wagner, C., Kaestner, L. Is there a role of C-reactive protein in red blood cell aggregation. International Journal of Laboratory Hematology. 37 (4), 474-482 (2015).
  10. Brust, M., et al. The plasma protein fibrinogen stabilizes clusters of red blood cells in microcapillary flows. Scientific Reports. 4, 4348 (2014).
  11. Gray, S. J., Mitchell, E. B., Dick, G. F. Effect of purified protein fractions on sedimentation rate of erythrocytes. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. 51 (3), 403-404 (1942).
  12. Kratz, A., et al. ICSH recommendations for modified and alternate methods measuring the erythrocyte sedimentation rate. International Journal of Laboratory Hematology. 39 (5), 448-457 (2017).
  13. Hung, W. T., Collings, A. F., Low, J. Erythrocyte sedimentation rate studies in whole human blood. Physics in Medicine and Biology. 39 (11), 1855-1873 (1994).
  14. Woodland, N. B., Cordatos, K., Hung, W. T., Reuben, A., Holley, L. Erythrocyte sedimentation in columns and the significance of ESR. Biorheology. 33 (6), 477-488 (1996).
  15. Holley, L., Woodland, N., Hung, W. T., Cordatos, K., Reuben, A. Influence of fibrinogen and haematocrit on erythrocyte sedimentation kinetics. Biorheology. 36 (4), 287-297 (1999).
  16. Dasanna, A. K., et al. Erythrocyte sedimentation: Effect of aggregation energy on gel structure during collapse. Physical Review. E. 105 (2-1), 024610 (2022).
  17. Darras, A., et al. Erythrocyte sedimentation: collapse of a high-volume-fraction soft-particle gel. Physical Review Letters. 128 (8), 088101 (2022).
  18. Darras, A., et al. Imaging erythrocyte sedimentation in whole blood. Frontiers in Physiology. 12, 729191 (2022).
  19. Darras, A., et al. Acanthocyte sedimentation rate as a diagnostic biomarker for neuroacanthocytosis syndromes: Experimental evidence and physical justification. Cells. 10 (4), 788 (2021).
  20. Rabe, A., et al. The erythrocyte sedimentation rate and its relation to cell shape and rigidity of red blood cells from chorea-acanthocytosis patients in an off-label treatment with dasatinib. Biomolecules. 11 (5), 727 (2021).
  21. Giavarina, D., Capuzzo, S., Pizzolato, U., Soffiati, G. Length of erythrocyte sedimentation rate (ESR) adjusted for the hematocrit: reference values for the TEST 1 method. Clinical Laboratory. 52 (5-6), 241-245 (2006).
  22. Bull, B. S. Is a standard ESR possible. Laboratory Medicine. 6 (11), 31-39 (1975).
  23. Bull, B. S., Brecher, G. An evaluation of the relative merits of the Wintrobe and Westergren sedimentation methods, including hematocrit correction. American Journal of Clinical Pathology. 62 (4), 502-510 (1974).
  24. Reinhart, W. H., Singh, A., Straub, P. W. Red blood cell aggregation and sedimentation: the role of the cell shape. British Journal of Haematology. 73 (4), 551-556 (1989).
  25. Jan, K., Usami, S., Smith, J. A. Influence of oxygen tension and hematocrit reading on ESRs of sickle cells: Role of RBC aggregation. Archives of Internal Medicine. 141 (13), 1815-1818 (1981).
  26. Issaq, H. J., Xiao, Z., Veenstra, T. D. Serum and plasma proteomics. Chemical Reviews. 107 (8), 3601-3620 (2007).
  27. Yu, Z., et al. Differences between human plasma and serum metabolite profiles. PLoS One. 6 (7), 21230 (2011).
  28. . Proper Pipetting Techniques – DE Available from: https://www.thermofisher.com/de/de/home/life-science/lab-plasticware-supplies/lab-plasticware-supplies-learning-center/lab-plasticware-supplies-resource-library/fundamentals-of-pipetting/proper-pipetting-techniques.html (2023)
  29. Otsu, N. A threshold selection method from gray-level histograms. IEEE Transaction on Systems, Man, and Cybernetics. 9 (1), 62-66 (1979).
  30. Solomon, C., et al. A comparison of fibrinogen measurement methods with fibrin clot elasticity assessed by thromboelastometry, before and after administration of fibrinogen concentrate in cardiac surgery patients. Transfusion. 51 (8), 1695-1706 (2011).
  31. Norouzi, N., Bhakta, H. C., Grover, W. H. Sorting cells by their density. PLoS One. 12 (7), 0180520 (2017).
  32. Trudnowski, R. J., Rico, R. C. Specific gravity of blood and plasma at 4 and 37 degrees C. Clinical Chemistry. 20 (5), 615-616 (1974).
  33. Késmárky, G., Kenyeres, P., Rábai, M., Tóth, K. Plasma viscosity: A forgotten variable. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 39 (1-4), 243-246 (2008).
  34. Teece, L. J., et al. Gels under stress: The origins of delayed collapse. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects. 458, 126-133 (2014).
  35. Lindström, S. B., Kodger, T. E., Sprakel, J., Weitz, D. A. Structures, stresses, and fluctuations in the delayed failure of colloidal gels. Soft Matter. 8 (13), 3657-3664 (2012).
  36. Bartlett, P., Teece, L. J., Faers, M. A. Sudden collapse of a colloidal gel. Physical Review. E, Statistical, Nonlinear, and Soft Matter Physics. 85, 021404 (2012).
check_url/fr/64502?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Darras, A., John, T., Wagner, C., Kaestner, L. Erythrocyte Sedimentation Rate: A Physics-Driven Characterization in a Medical Context. J. Vis. Exp. (193), e64502, doi:10.3791/64502 (2023).

View Video