Summary

Analyse av T-cellereseptorindusert kalsiuminnstrømning i primære Murine T-celler ved fullspektret flowcytometri

Published: December 16, 2022
doi:

Summary

Kalsiuminnstrømning, et mål på T-cellesignalering, er en effektiv måte å analysere responser på T-cellereseptorstimulering. Denne protokollen for multipleksing av Indo-1 med paneler av antistoffer rettet mot celleoverflatemolekyler utnytter de svært fleksible egenskapene til fullspektret flowcytometri.

Abstract

Kalsiuminnstrømning som respons på T-cellereseptorstimulering er et vanlig mål for T-cellesignalering. Flere kalsiumindikatorfargestoffer er utviklet for å vurdere kalsiumsignalering ved hjelp av båndpassflowcytometri. Denne protokollen er utformet for å måle kalsiumresponser i primære murine T-celler ved bruk av fullspektret flowcytometri. Totale splenocytter er merket med ratiometrisk kalsiumindikatorfargestoff Indo-1, sammen med et panel av fluorokrom-konjugerte antistoffer mot celleoverflatemolekyler. Utnyttelse av egenskapene til fullspektret flowcytometri gir en plattform for å utnytte et bredt utvalg av celleoverflateflekker i kombinasjon med Indo-1. Cellene analyseres deretter i sanntid ved 37 °C før og etter tilsetning av et anti-CD3-antistoff for å stimulere T-cellereseptoren. Etter å ha blandet spektralsignalene, beregnes forholdet mellom kalsiumbundet og kalsiumfritt Indo-1 og kan visualiseres over tid for hver inngjerdede populasjon av splenocytter. Denne teknikken kan tillate samtidig analyse av kalsiumresponser i flere cellepopulasjoner.

Introduction

T-cellereseptor (TCR) indusert kalsiuminnstrømning er et nyttig mål på T-celleaktivering og brukes ofte til å avgjøre om en populasjon av T-celler har svekkede responser i de proksimale trinnene i TCR-signalveien1. Målinger av kalsiuminnstrømning utføres vanligvis ved å forhåndsmerke T-cellene med ett eller et par fluorescerende kalsiumindikatorfargestoffer, og deretter undersøke de fluorescerende signalene ved hjelp av flowcytometri i sanntid etter TCR-kryssbinding 2,3,4. Indo-1, et forholdsmetrisk kalsiumfargestoff, er begeistret av UV-laseren med topputslipp ved to forskjellige bølgelengder avhengig av kalsiumbinding5, og er et vanlig brukt indikatorfargestoff for flowcytometrianalyse av kalsiumresponser i levende lymfocytter. Siden emisjonsprofilen til Indo-1 er ganske bred, kan det være utfordrende å kombinere Indo-1-vurdering med samtidig analyse av flere celleoverflatemarkører ved hjelp av båndpassflowcytometri. Denne begrensningen begrenser bruken av flowcytometrianalyse av kalsiumresponser til forhåndsrensede populasjoner av T-celler eller til populasjoner identifisert av et begrenset sett med molekyler på celleoverflaten.

For å løse begrensningene ved måling av kalsiumrespons på heterogene populasjoner av primære lymfocytter ved bruk av båndpassflowcytometri, ble det utviklet en protokoll for å måle Indo-1-fluorescens ved bruk av fullspektret flowcytometri. Denne metoden tillater multipleksing av Indo-1 med paneler av antistoffer rettet mot celleoverflatemolekyler, og utnytter de svært fleksible egenskapene til fullspektret flowcytometri. Fordelen med å bruke fullspektret flowcytometri fremfor konvensjonell flowcytometri er evnen til å skille fluorescerende signaler fra sterkt overlappende fargestoffer, og dermed øke antall overflatemarkører som kan vurderes samtidig i hver prøve. Konvensjonell flowcytometri bruker båndpassfiltre og er begrenset til ett fluorokrom per detektorsystem6. Full spektrum flowcytometri samler signaler over hele spekteret av fluorokrom ved hjelp av 64 detektorer på et fem-laser spektralt flowcytometrisystem 7,8. I tillegg utnytter fullspektret flowcytometri APD-detektorer (Avalanche Photo Diode) som har økt følsomhet i forhold til fotomultiplikatorrørdetektorer som finnes på konvensjonelle strømningscytometre8. Følgelig er denne tilnærmingen ideell for heterogene cellepopulasjoner, for eksempel mononukleære celler i perifert blod eller murine sekundære lymfoide organcellesuspensjoner, da det eliminerer behovet for isolering av spesifikke T-cellepopulasjoner før kalsiumfargestoffmerking. I stedet kan ekspresjonsprofiler for celleoverflatemarkører og flowcytometrigating etter datainnsamling brukes til å vurdere kalsiumresponser i hver populasjon av interesse. Som vist i denne rapporten, kan Indo-1 lett kombineres med åtte fluorokrom-konjugerte antistoffer, noe som resulterer i totalt 10 unike spektrale signaturer. Videre kan denne metoden lett brukes på blandinger av celler fra kongenisk distinkte muselinjer, noe som muliggjør samtidig analyse av kalsiumresponser i villtype T-celler sammenlignet med de fra en genmålrettet muselinje.

Protocol

Mus ble opprettholdt ved University of Colorado Anschutz Medical campus i samsvar med IACUC-protokoller. Alle mus ble avlivet i henhold til AAALAC-standarder. 1. Forberedelse av immunceller fra musmilten MERK: Avlive naive mus med CO2 eutanasi. C57BL/6 mus kjøpt fra Jackson Laboratories og avlet internt brukes til eksperimenter ved 6-12 ukers alder. Både hann- og hunnmus brukes til eksperimenter. Desinfiser musehuden med 70% e…

Representative Results

Den eksperimentelle arbeidsflyten for å vurdere kalsiumresponser i primære murine T-celler ved bruk av et Indo-1-ratiometrisk fargestoff med multipleksende overflateflekker er vist i figur 1. Etter høsting og bearbeiding av musens miltocytter i en enkeltcellesuspensjon, blir cellene farget med en Indo-1 AM-ester og overflatefarget med fluorokrombundne antistoffer. Når fargestoffbelastningen og antistofffargingen er fullført, varmes lymfocyttprøvene opp til en biologisk temperatur (37 ?…

Discussion

Denne protokollen beskriver en optimalisert analyse designet for å måle kalsiumresponser i primære murine T-celler lastet med titrert Indo-1 ratiometrisk indikatorfargestoff ved bruk av fullspektret flowcytometri 7,8. Fordelen med å utføre kalsiumfluksanalyser ved bruk av fullspektret flowcytometri er evnen til å multiplekse overflatecellemarkørfarging i kombinasjon med vurdering av Indo-1-fluorescens. Fullspektret flowcytometri har fordelen av å tillate …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

R01AI132419, CU | AMC ImmunoMicro Flow Cytometry Shared Resource, RRID:SCR_021321, Tusen takk til våre kolleger i Cytek for kontinuerlige diskusjoner om full spektral cytometrisk analyse av programvaren Aurora og SpectroFlo. Figurer ble laget med BioRender.com.

Materials

12 well TC treated plates Cell Treat 229111
50 mL conical Greiner Bio1 41-12-17-03 50 mL Polypropylene centrifuge tubes with cap
5mL polysterene flow tubes Corning 352052
5mL syringe BD syringe 309646 plunger only is used sheith is discarded
70uM filter Greiner bio1 542070
aCD3 (17A2) Biolegend 100202
AKC lysis Buffer Gibco A1049201
Aurora Spectral Flowcytometer https://cytekbio.com/pages/aurora
Bath Beads coleparmer Item # UX-06274-52
CD19 PE Tonbo 50-0193-U100
CD1d Tetramer APC NIH
CD25 PECy7 ebioscience 15-0251
CD4 APC Cy7 Tonbo 25-0042-U100
CD8a FITC ebioscience 11-0081-85
Cell Incubator Formal Scientific
Dissection Tools forceps McKesson #487593 Tissue Forceps McKesson Adson 4-3/4 Inch Length Office Grade Stainless Steel NonSterile NonLocking Thumb Handle 1 X 2 Teeth
Dissection Tools Scissors McKesson #970135 Operating Scissors McKesson Argent™ 4-1/2 Inch Surgical Grade Stainless Steel Finger Ring Handle Straight Sharp Tip / Sharp Tip
DPBS 1x Gibco 14190-136 DPBS 
EGTA Fisher NC1280093
FBS Hyclond SH30071.03 lot AE29165301
FlowJo Software https://www.flowjo.com/
Indo1-AM Ester Dye ebioscience 65-085-39 Calcium Loading Dye 
ionomycin Millipore 407951-1mg
Live/Dead Ghost 540 Tonbo 13-0879-T100
Microcentrifuge tubes 1.7mL Light Labs A-7001
Penicillin/Streptomycin/L-Glutamine Gibco 10378-016
PRN694 Med Chem Express Hy-12688
Purified Anti-Mouse CD16/CD32 (FC Shield) (2.4G2) Tonbo 70-0161-M001 FC Block
RPMI Gibco 1875093  + phenol red
RPMI phenol free Gibco 11835030  -phenol red
Table top centrifuge Beckman Coulter Allegra612
TCRβ PerCP Cy5.5 ebioscience 45-5961-82
TCRγ/δ Pe Cy5 ebioscience 15-5961-82
Vi-Cell Blu Reagent Pack Product No: C06019 Includes Tripan
Vi-Cell Blu Beckman Coulter
Waterbath Fisher Brand Dry bath

References

  1. Weiss, A., Imboden, J., Shoback, D., Stobo, J. Role of T3 surface molecules in human T-cell activation: T3-dependent activation results in an increase in cytoplasmic free calcium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 81 (13), 4169-4173 (1984).
  2. Huang, G. N. Cell calcium mobilization study (flow cytometry). Bio-Protocol. 2 (9), 171 (2012).
  3. June, C. H., Moore, J. S. Measurement of intracellular ions by flow cytometry. Current Protocols in Immunology. , (2004).
  4. Posey, A. D., Kawalekar, O. U., June, C. H. Measurement of intracellular ions by flow cytometry. Current Protocols in Cytometry. 72, 1-21 (2015).
  5. Grynkiewicz, G., Poenie, M., Tsien, R. Y. A new generation of Ca2+ indicators with greatly improved fluorescence properties. The Journal of Biological Chemistry. 260 (6), 3440-3450 (1985).
  6. McKinnon, K. M. Flow cytometry: An overview. Current Protocols in Immunology. 120, 1-11 (2018).
  7. Nolan, J. P., Condello, D. Spectral flow cytometry. Current Protocols in Cytometry. , (2013).
  8. Bonilla, D. L., Reinin, G., Chua, E. Full spectrum flow cytometry as a powerful technology for cancer immunotherapy research. Frontiers in Molecular Biosciences. 7, 612801 (2021).
  9. Zhong, Y., et al. Targeting Interleukin-2-inducible T-cell Kinase (ITK) and Resting Lymphocyte Kinase (RLK) using a novel covalent inhibitor PRN694. The Journal of Biological Chemistry. 290 (10), 5960-5978 (2015).
  10. Gallagher, M. P., et al. Hierarchy of signaling thresholds downstream of the T-cell receptor and the Tec kinase ITK. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (35), 2025825118 (2021).
  11. Andreotti, A. H., Schwartzberg, P. L., Joseph, R. E., Berg, L. J. T-Cell signaling regulated by the tec family kinase, Itk. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2 (7), 002287 (2010).
  12. Nakamura, Y. EGTA can inhibit vesicular release in the nanodomain of single Ca2+ channels. Frontiers in Synaptic Neurosciene. 11, 26 (2019).
  13. Cytek Aurora Users Guide. Cytek Available from: https://depts.washington.edu/flowlab/Cell%20Analysis%20Facility/Aurora%20User%20Guide.pdf (2022)
  14. SpctroFlo Software. Cytek Available from: https://cytekbio.com/pages/spectro-flo (2022)
  15. FlowJo Software. Becton-Dickinson Available from: https://www.flowjo.com/solutions/flowjo (2022)
  16. Godfrey, D. I., Zlotnik, A. Control points in early T-cell development. Immunology Today. 14 (11), 547-553 (1993).
  17. Vossen, A. C., et al. Fc receptor binding of anti-CD3 monoclonal antibodies is not essential for immunosuppression, but triggers cytokine-related side effects. European Journal of Immunology. 25 (6), 1492-1496 (1995).
check_url/fr/64526?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Perrenoud, L., Conley, J., Berg, L. J. Analysis of T-cell Receptor-Induced Calcium Influx in Primary Murine T-cells by Full Spectrum Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (190), e64526, doi:10.3791/64526 (2022).

View Video