Summary

Ekspresjon av transgener i naturlig blære urotel ved bruk av adenovirusmediert transduksjon

Published: October 06, 2022
doi:

Summary

Metoder er beskrevet for generering av store mengder rekombinante adenovirus, som deretter kan brukes til å transducere det opprinnelige gnagerurotelet som muliggjør ekspresjon av transgener eller nedregulering av endogene genprodukter.

Abstract

I tillegg til å danne en høy motstandsbarriere, er urotelet som fôrer nyrebekkenet, urinlederne, blæren og proksimale urinrøret hypoteset for å fornemme og overføre informasjon om miljøet til det underliggende vevet, fremme tømmingsfunksjon og oppførsel. Forstyrrelse av urotelbarrieren, eller dens sensoriske / transduserfunksjon, kan føre til sykdom. Å studere disse komplekse hendelsene hindres av mangel på enkle strategier for å endre gen- og proteinuttrykk i urotelet. Metoder er beskrevet her som gjør det mulig for etterforskere å generere store mengder høytiter adenovirus, som deretter kan brukes til å transdusere gnagerurotel med høy effektivitet, og på en relativt enkel måte. Både cDNA og små forstyrrende RNA kan uttrykkes ved hjelp av adenoviral transduksjon, og virkningen av transgen ekspresjon på urotelfunksjonen kan vurderes 12 timer til flere dager senere. Disse metodene har bred anvendelighet for studier av normal og unormal urotelbiologi ved bruk av muse- eller rottedyrmodeller.

Introduction

Urotelet er det spesialiserte epitelet som strekker nyrebekkenet, urinlederne, blæren og det proksimale urinrøret1. Den består av tre lag: et lag av svært differensierte og polariserte ofte bi-nukleate paraplyceller, hvis apikale overflater er badet i urin; et mellomliggende cellelag med en populasjon av bi-nukleate transittforsterkende celler som kan gi opphav til overfladiske paraplyceller som svar på deres akutte tap; og et enkelt lag av basale celler, en delmengde som fungerer som stamceller som kan regenerere hele urotelet som respons på kronisk skade. Paraplyceller er hovedsakelig ansvarlige for å danne den høyresistente urotelbarrieren, hvorav komponenter inkluderer en apikal membran (rik på kolesterol og cerebrosider) med lav permeabilitet for vann og løsemidler, og et apikalt krysskompleks med høy motstand (bestående av tette kryss, adherenskryss, desmosomer og en tilhørende aktomyosinring)1 . Både den apikale overflaten av paraplycellen og dens kryssring utvides under blærefylling og går raskt tilbake til sin ferdigfylte tilstand etter tømming 1,2,3,4,5. I tillegg til sin rolle i barrierefunksjon, er urotelet også antatt å ha sensoriske og transduserfunksjoner som gjør det mulig å oppdage endringer i det ekstracellulære miljøet (f.eks. Stretch) og overføre denne informasjonen via frigjøring av mediatorer (inkludert ATP, adenosin og acetylkolin) til underliggende vev, inkludert suburoteliale afferente nerveprosesser 6,7,8 . Nyere bevis på denne rollen er funnet hos mus som mangler uroteluttrykk for både Piezo1 og Piezo2, noe som resulterer i endret vannlatingsfunksjon9. I tillegg utvikler rotter som overuttrykker det poredannende proteinet CLDN2 i paraplycellelaget betennelse og smerte som er analog med det som ses hos pasienter med interstitiell cystitt10. Det er en hypotese at forstyrrelse av urotelial sensorisk/transduser eller barrierefunksjon kan bidra til flere blærelidelser 6,11.

En bedre forståelse av urotelets biologi i normale og sykdomstilstander avhenger av tilgjengeligheten av verktøy som gjør det mulig for etterforskere å lett nedregulere endogent genuttrykk eller tillate ekspresjon av transgener i det opprinnelige vevet. Mens en tilnærming til å nedregulere genuttrykk er å generere betingede urotelial knockoutmus, avhenger denne tilnærmingen av tilgjengeligheten av mus med floxed alleler, er arbeidsintensiv og kan ta måneder til år å fullføre12. Ikke overraskende da har forskere utviklet teknikker for å transfektere eller transducere urotelet, noe som kan føre til resultater på kortere tidsskala. Publiserte metoder for transfeksjon inkluderer bruk av kationiske lipider13, anti-sense fosforothioated oligodeoxynucleotides 14, eller antisense nukleinsyrer bundet til HIV TAT protein penetrerende 11-mer peptid15. Imidlertid er fokuset i denne protokollen på bruk av adenoviral-mediert transduksjon, en godt studert metodikk som er effektiv ved genlevering til et bredt spekter av celler, har blitt testet i en rekke kliniske studier, og ble nylig brukt til å levere cDNA som koder for COVID-19-kapsidproteinet til mottakere av en variant av COVID-19-vaksinen16, 17. For en grundigere beskrivelse av adenovirusets livssyklus, adenovirale vektorer og kliniske anvendelser av adenovirus, henvises leseren til referanse17.

En viktig milepæl i bruken av adenovirus for å transducere urotelet, var en rapport fra Ramesh et al. som viste korte forbehandlinger med vaskemidler, inkludert N-dodecyl-β-D-maltoside (DDM) dramatisk forbedret transduksjon av urotelet av et adenovirus som koder for β-galaktosidase18. Ved å bruke denne proof-of-principle-studien som en veiledning, har adenoviral-mediert transduksjon av urotelet nå blitt brukt til å uttrykke en rekke proteiner, inkludert Rab-familie GTPaser, guanin-nukleotidutvekslingsfaktorer, myosinmotoriske fragmenter, poredannende tette kryssassosierte klaudiner og ADAM17 10,19,20,21,22 . Den samme tilnærmingen ble tilpasset for å uttrykke små forstyrrende RNA (siRNA), hvis effekter ble reddet ved å uttrykke siRNA-resistente varianter av transgen22. Protokollen beskrevet her inkluderer generelle metoder for å generere store mengder høykonsentrert adenovirus, et krav til disse teknikkene, samt tilpasninger av metodene til Ramesh et al.18 for å uttrykke transgener i urotelet med høy effektivitet.

Protocol

Eksperimenter som involverer generering av adenovirus, som krever BSL2-sertifisering, ble utført under godkjenning fra University of Pittsburgh Environmental Health and Safety kontorer og Institutional Biosafety Committee. Alle dyreforsøk som ble utført, inkludert adenoviral transduksjon (som krever ABSL2-sertifisering), ble gjort i samsvar med relevante retningslinjer / forskrifter i Public Health Service Policy on Humane Care and Use of Laboratory Animals og dyrevelferdsloven, og under godkjenning av University of P…

Representative Results

Virus forberedelseEt eksempel på virusrensing ved sentrifugering av tetthetsgradient er vist i figur 1A. Det lysrosa båndet, som finnes ved grensesnittet mellom det lastede cellematerialet og 1,25 g/ml CsCl-laget, består hovedsakelig av forstyrrede celler og deres rusk (se magenta pil i figur 1A). Den henter sin rosa farge fra den lille mengden kulturmedium som overføres fra trinn 1.5 i protokollen. Viruspartiklene av interesse, som vise…

Discussion

Mens Ramesh et al. var fokusert på å utvikle strategier for å bruke adenoviral transduksjon i behandlingen av blærekreft 18, har nyere rapporter vist nytten av disse teknikkene i å studere normal urotelbiologi / fysiologi og patofysiologi 10,18,19,20,21 . De viktige funksjonene i denne tilnærmingen inkluderer følgende: (i) I hele…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av en pilotprosjektpris gjennom P30DK079307 (til M.G.D.), NIH grant R01DK119183 (til GA og MDC), NIH grant R01DK129473 (til GA), en American Urology Association Career Development award og et Winters Foundation-stipend (til NM), av Cell Physiology and Model Organisms Kidney Imaging Cores fra Pittsburgh Center for Kidney Research (P30DK079307), og av S10OD028596 (til GA), som finansierte innkjøpet av konfokalsystemet som ble brukt til å fange noen av bildene som presenteres i dette manuskriptet.

Materials

10 mL pipette Corning Costar (Millipore Sigma) CLS4488 sterile, serological pipette, individually wrapped
12 mL ultracentrifuge tube ThermoFisher 06-752 PET thinwall ultracentrifuge tube
15 mL conical centrifuge tube Falcon (Corning) 352097 sterile
18 G needle BD  305196 18 G x 1.5 in needle
20 mL pipette Corning Costar (Millipore Sigma) CLS4489 sterile, serological pipette, individually wrapped
50 mL conical centrifuge tube Falcon (Corning) 352098 sterile
5 mL pipette Corning Costar (Millipore Sigma) CLS4487 sterile, serological pipette, individually wrapped
Cavicide Henry Schein 6400012 Anti-viral solution
Cell culture dish – 15 cm Falcon (Corning) 353025 sterile, tissue-culture treated  (150 mm x 25 mm dish)
Cell scraper Sarstedt 893.1832 handle length 24 cm, blade length 1.7 cm
CsCl Millipore Sigma C-4306 Molecular Biology grade ≥ 98%
DMEM culture medium (high glucose) Gibco (ThermoFisher) 11965092 with 4.5 g/L glucose + L-glutamine + phenol red
EDTA Millipore Sigma EDS Bioiultra grade ≥ 99%
Fetal bovine serum  Hyclone (Cytiva) SH30070.03 defined serum
Glass pipette Fisher Scientific 13-678-20A 5.75 in glass pipette, autoclaved
Glycerol Millipore Sigma G-5516 Molecular Biology grade ≥ 99%
HEK293 cells ATCC CRL-3216 HEK293T cells are a variant of HEK293 cells that express the SV40 large T-antigen
Isoflurane Covetrus 29405
IV catheter – mouse Smith Medical Jelco 3063 24 G x 3/4 in Safety IV catheter  radiopaque
IV catheter – rat Smith Medical Jelco 3060 22 G x 1 in Safety IV catheter radiopaque
KCl Millipore Sigma P-9541 Molecular Biology grade ≥ 99%
KH2PO4 Millipore Sigma P5655 Cell culture grade  ≥ 99%
Na2HPO4•7 H2O Millipore Sigma 431478  ≥ 99.99%
NaCl Millipore Sigma S3014 Molecular Biology grade ≥ 99%
N-dodecyl-β-D-maltoside  Millipore Sigma D4641  ≥ 98%
Nose cone for multiple animals custom designed commercial options include one from Parkland Scientific (RES3200)
PD-10 column  GE Healthcare 17-085-01 Prepacked columns filled ith Sephadex G-25M
Penicillin/streptomycin antibiotic (100x) Gibco (ThermoFisher) 15070063 100x concentrated solution
Spectrophotometer Eppendorf  BioPhotometer
Stand and clamp Fisher Scientific 14-679Q and 05-769-8FQ available from numerous suppliers
Sterile filter unit Fisher Scientific (Nalgene) 09-740-65B 0.2 µm rapid-flow filter unit (150 mL)
Sterile filter unit 0.2 µm (syringe) Fisher Scientific  SLGV004SL Millipore Sigma Milex 0.22 µm filter unit that attaches to syringe
Super speed centrifuge Eppendorf  5810R with Eppendorf F34-6-38 fixed angle rotor (12,000 rpm)
Syringe (1 mL) BD  309628 1-mL syringe Luer-lok tip – sterile
Syringe (3 mL) BD  309656 3-mL syringe slip tip – sterile
Table-top centrifuge (low speed) Eppendorf  5702 with swinging bucket rotor
Transfer pipettes Fisher Scientific 13-711-9AM polyethylene 3.4 mL transfer pipette
Tris-base Millipore Sigma 648310-M Molecular Biology grade 
TrypLE select protease solution Gibco (ThermoFisher) 12604013 TrypLE express enzyme (1x), no phenol red
Ultracentrifuge Beckman Coulter Optima L-80 XP with Beckman SW41 rotor (41,000 rpm)
Vaporizer  General Anesthetic Services, Inc. Tec 3 Isoflurane vaporizer
Vortex Mixer VWR 10153-838 analog vortex mixer

References

  1. Dalghi, M. G., Montalbetti, N., Carattino, M. D., Apodaca, G. The Urothelium: Life in a liquid environment. Physiological Reviews. 100 (4), 1621-1705 (2020).
  2. Truschel, S. T., et al. Stretch-regulated exocytosis/endocytosis in bladder umbrella cells. Molecular Biology of the Cell. 13 (3), 830-846 (2002).
  3. Lewis, S. A., de Moura, J. L. C. Incorporation of cytoplasmic vesicles into apical membrane of mammalian urinary bladder epthelium. Nature (London). 297 (5868), 685-688 (1982).
  4. Eaton, A. F., et al. Expansion and contraction of the umbrella cell apical junctional ring in response to bladder filling and voiding. Molecular Biology of the Cell. 30 (16), 2037-2052 (2019).
  5. Yu, W., Khandelwal, P., Apodaca, G. Distinct apical and basolateral membrane requirements for stretch-induced membrane traffic at the apical surface of bladder umbrella cells. Molecular Biology of the Cell. 20 (1), 282-295 (2009).
  6. Birder, L., Andersson, K. E. Urothelial signaling. Physiological Reviews. 93 (2), 653-680 (2013).
  7. Birder, L. A. Urinary bladder, cystitis and nerve/urothelial interactions. Autonomic Neuroscience. 182, 89-94 (2014).
  8. Apodaca, G., Balestreire, E., Birder, L. A. The uroepithelial-associated sensory web. Kidney International. 72 (9), 1057-1064 (2007).
  9. Dalghi, M. G., et al. Functional roles for PIEZO1 and PIEZO2 in urothelial mechanotransduction and lower urinary tract interoception. Journal of Clinical Investigation Insight. 6 (19), 152984 (2021).
  10. Montalbetti, N., et al. Increased urothelial paracellular transport promotes cystitis. American Journal of Physiology: Renal Physiology. 309 (12), 1070-1081 (2015).
  11. Keay, S. K., Birder, L. A., Chai, T. C. Evidence for bladder urothelial pathophysiology in functional bladder disorders. BioMed Research International. 2014, 865463 (2014).
  12. Friedel, R. H., Wurst, W., Wefers, B., Kuhn, R. Generating conditional knockout mice. Methods in Molecular Biology. 693, 205-231 (2011).
  13. Kashyap, M., et al. Down-regulation of nerve growth factor expression in the bladder by antisense oligonucleotides as new treatment for overactive bladder. Journal of Urology. 190 (2), 757-764 (2013).
  14. Bolenz, C., et al. Cellular uptake and ex vivo urothelial penetration by oligodeoxynucleotides for optimizing treatment of transitional cell carcinoma. Analytical and Quantitative Cytology and Histology. 30 (5), 265-273 (2008).
  15. Tyagi, P., et al. Intravesical antisense therapy for cystitis using TAT-peptide nucleic acid conjugates. Molecular Pharmaceutics. 3 (4), 398-406 (2006).
  16. Sadoff, J., et al. Interim results of a phase 1-2a trial of Ad26.COV2.S Covid-19 vaccine. New England Journal of Medicine. 384 (19), 1824-1835 (2021).
  17. Lee, C. S., et al. Adenovirus-mediated gene delivery: Potential applications for gene and cell-Based therapies in the new era of personalized medicine. Genes & Diseases. 4 (2), 43-63 (2017).
  18. Ramesh, N., et al. Identification of pretreatment agents to enhance adenovirus infection of bladder epithelium. Molecular Therapy. 10 (4), 697-705 (2004).
  19. Khandelwal, P., et al. Rab11a-dependent exocytosis of discoidal/fusiform vesicles in bladder umbrella cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (41), 15773-15778 (2008).
  20. Khandelwal, P., Ruiz, W. G., Apodaca, G. Compensatory endocytosis in bladder umbrella cells occurs through an integrin-regulated and RhoA- and dynamin-dependent pathway. The European Molecular Biology Organization journal. 29 (12), 1961-1975 (2010).
  21. Khandelwal, P., et al. A Rab11a-Rab8a-Myo5B network promotes stretch-regulated exocytosis in bladder umbrella cells. Molecular Biology of the Cell. 24 (7), 1007-1019 (2013).
  22. Prakasam, H. S., et al. A1 adenosine receptor-stimulated exocytosis in bladder umbrella cells requires phosphorylation of ADAM17 Ser811 and EGF receptor transactivation. Molecular Biology of the Cell. 25 (24), 3798-3812 (2014).
  23. Gallo, L. I., et al. RAB27B requirement for stretch-induced exocytosis in bladder umbrella cells. American Journal of Physiology Cell Physiology. 314 (3), 349-365 (2018).
  24. Amasheh, S., et al. Claudin-2 expression induces cation-selective channels in tight junctions of epithelial cells. Journal of Cell Science. 115, 4969-4976 (2002).
  25. Yu, A. S., et al. Molecular basis for cation selectivity in claudin-2-based paracellular pores: identification of an electrostatic interaction site. The Journal of General Physiology. 133 (1), 111-127 (2009).
  26. Kasahara, H., Aoki, H. Gene silencing using adenoviral RNAi vector in vascular smooth muscle cells and cardiomyocytes. Methods in Molecular Medicine. 112, 155-172 (2005).
  27. Bolognesi, B., Lehner, B. Reaching the limit. eLife. 7, 39804 (2018).
  28. Atasheva, S., Shayakhmetov, D. M. Cytokine responses to adenovirus and adenovirus vectors. Viruses. 14 (5), 888 (2022).
  29. Sanchez Freire, V., et al. MicroRNAs may mediate the down-regulation of neurokinin-1 receptor in chronic bladder pain syndrome. American Journal of Pathology. 176 (1), 288-303 (2010).
check_url/fr/64584?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Ruiz, W. G., Clayton, D. R., Dalghi, M. G., Montalbetti, N., Carattino, M. D., Apodaca, G. Expression of Transgenes in Native Bladder Urothelium Using Adenovirus-Mediated Transduction. J. Vis. Exp. (188), e64584, doi:10.3791/64584 (2022).

View Video