Nel sistema di cocoltura dei gangli della radice dorsale e delle cellule di Schwann, può essere studiata la mielinizzazione del sistema nervoso periferico. Questo modello offre opportunità sperimentali per osservare e quantificare la mielinizzazione periferica e per studiare gli effetti dei composti di interesse sulla guaina mielinica.
Il processo di mielinizzazione è essenziale per consentire una rapida e sufficiente trasduzione del segnale nel sistema nervoso. Nel sistema nervoso periferico, i neuroni e le cellule di Schwann si impegnano in una complessa interazione per controllare la mielinizzazione degli assoni. I disturbi di questa interazione e la rottura della guaina mielinica sono segni distintivi delle neuropatie infiammatorie e si verificano secondariamente nei disturbi neurodegenerativi. Qui, presentiamo un modello di cocoltura di espianti di ganglio di radice dorsale e cellule di Schwann, che sviluppa una robusta mielinizzazione degli assoni periferici per studiare il processo di mielinizzazione nel sistema nervoso periferico, studiare le interazioni assone-cellule di Schwann e valutare separatamente i potenziali effetti degli agenti terapeutici su ciascun tipo di cellula. Metodologicamente, i gangli delle radici dorsali di ratti embrionali (E13.5) sono stati raccolti, dissociati dal tessuto circostante e coltivati come espianti interi per 3 giorni. Le cellule di Schwann sono state isolate da ratti adulti di 3 settimane e i nervi sciatici sono stati digeriti enzimaticamente. Le cellule di Schwann risultanti sono state purificate mediante selezione cellulare attivata magneticamente e coltivate in condizioni arricchite di neuregulina e forskolina. Dopo 3 giorni di coltura dell’espianto del ganglio della radice dorsale, 30.000 cellule di Schwann sono state aggiunte a un espianto di ganglio della radice dorsale in un mezzo contenente acido ascorbico. I primi segni di mielinizzazione sono stati rilevati il giorno 10 della cocoltura, attraverso segnali sparsi per la proteina basica della mielina nella colorazione immunocitochimica. Dal giorno 14 in poi, le guaine mieliniche si sono formate e propagate lungo gli assoni. La mielinizzazione può essere quantificata dalla colorazione delle proteine basiche della mielina come rapporto tra l’area di mielinizzazione e l’area assone, per tenere conto delle differenze nella densità assonale. Questo modello offre opportunità sperimentali per studiare vari aspetti della mielinizzazione periferica in vitro, che è cruciale per comprendere la patologia e le possibili opportunità di trattamento per la demielinizzazione e la neurodegenerazione nelle malattie infiammatorie e neurodegenerative del sistema nervoso periferico.
Nel sistema nervoso periferico (PNS), la rapida trasduzione dell’informazione è mediata da assoni avvolti dalla mielina. La mielinizzazione degli assoni è essenziale per consentire la rapida propagazione degli impulsi elettrici, poiché la velocità di conduzione delle fibre nervose è correlata al diametro dell’assone e allo spessore della mielina1. La segnalazione sensoriale dalla periferia al sistema nervoso centrale (SNC) si basa sull’attivazione di neuroni sensoriali di primo ordine che risiedono negli allargamenti della radice dorsale, chiamati gangli della radice dorsale (DRG). Per la formazione e il mantenimento della mielina, la comunicazione continua tra assoni e cellule di Schwann, che sono le cellule della glia mielinica nel PNS, è obbligatoria2.
Molte malattie del PNS disturbano la trasduzione delle informazioni da parte di danni assonali primari o demielinizzanti, con conseguente ipestesia o disestesia. I neuroni sensoriali di primo ordine hanno la capacità di rigenerarsi in una certa misura dopo il danno neuronale, da una complessa interazione tra il neurone e le cellule di Schwann circostanti3. In questo caso, le cellule di Schwann possono subire una riprogrammazione cellulare per eliminare i detriti assonale e mielinico e promuovere la rigenerazione assonale, con conseguente rimielinizzazione4. Comprendere i meccanismi della mielinizzazione nella salute e nella malattia è importante, al fine di trovare possibili opzioni di trattamento per i disturbi demielinizzanti del PNS. La mielina può anche essere danneggiata da neurotraumi acuti e gli approcci per promuovere la mielinizzazione per far avanzare il recupero funzionale dopo la lesione del nervo periferico sono in fase di indagine5.
La nostra conoscenza della mielinizzazione periferica ha beneficiato in gran parte delle cocolture mieliniche di cellule di Schwann e neuroni sensoriali. Da quando sono stati applicati i primi approcci 6,7,8, la mielinizzazione è stata studiata intensamente con l’uso di diversi sistemi di cocoltura 9,10,11. Qui, forniamo un protocollo rapido e semplice per la mielinizzazione in vitro robusta degli assoni del ganglio della radice dorsale. Il protocollo per la preparazione delle cellule di Schwann si basa sul protocollo di Andersen et al.12, precedentemente pubblicato su Pitarokoili et al.13. Utilizziamo cellule di Schwann derivate da ratti giovani e colture embrionali di espianti DRG per la cocoltura, in cui la mielinizzazione si verifica intorno al giorno 14. L’obiettivo del metodo è quello di fornire un sistema per studiare la formazione di mielina come risultato dell’interazione diretta assone-cellule di Schwann e di studiare i modulatori della mielinizzazione PNS. Rispetto alle colture cellulari neuronali dissociate, gli espianti di DRG sono più anatomicamente conservati e formano lunghi processi assonali. La quantificazione dell’area dell’assone mielinica fornisce una lettura sufficiente per la mielinizzazione nella cocoltura. Il metodo è uno strumento prezioso per lo screening dei composti terapeutici per il loro potenziale effetto sulla mielinizzazione PNS e può anche essere utilizzato in aggiunta agli studi in vivo in modelli animali14.
Qui, presentiamo un protocollo rapido e facile per la generazione di mielinizzazione in vitro fondendo due colture di tipo cellulare separate, cellule di Schwann e espianti di ganglio della radice dorsale.
Un passaggio critico del protocollo è la coltivazione di espianti DRG, soprattutto nei primi giorni di coltura. I DRG sono molto fragili prima che venga costruita una forte rete assonale e devono essere maneggiati con molta attenzione, ad esempio, quando vengono estratti dall’incub…
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo il Prof. Dr. Ralf Gold e il PD Dr. Gisa Ellrichmann per i loro consigli e supporto.
Anti-MBP, rabbit | Novus Biologicals, Centannial, USA | ABIN446360 | |
Anti-ßIII-tubulin, mouse | Biolegend, San Diego, USA | 657402 | |
Ascorbic acid | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | A4403-100MG | |
B27-supplement | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 17504-044 | |
Biosphere Filter Tip, 100 µL | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 70760212 | |
Biosphere Filter Tip, 1250 µL | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 701186210 | |
Biosphere Filter Tip, 20 µL | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 701114210 | |
Biosphere Filter Tip, 300 µL | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 70765210 | |
Bovine serum albumin | Carl Roth, Karlsruhe, Germany | 8076.4 | |
Cell strainer, 100 µM | BD Bioscience, Heidelberg, Germany | 352360 | |
Centrifuge 5810-R | Eppendorf AG, Hamburg, Germany | 5811000015 | |
CO2 Incubator Heracell | Heraeus Instruments, Hanau, Germany | 51017865 | |
Coverslips 12 mm | Carl Roth, Karlsruhe, Germany | P231.1 | |
Curved fine forceps | Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany | 11370-42 | |
DAPI fluoromount-G(R) | Biozol, Eching, Germany | SBA-0100-20 | |
Dispase II | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | 4942078001 | |
Distilled water (Water Purification System) | Millipore, Molsheim, France | ZLXS5010Y | |
DMEM/F-12, GlutaMAX | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 31331093 | |
DPBS (no Ca2+ and no Mg2+) | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | D8537-6X500ML | |
Ethanol | VWR, Radnor, USA | 1009862500 | |
FCS | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | F7524 | FCS must be tested for Schwann cell culture |
Fine forceps (Dumont #5) | Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany | 11252-20 | |
Forceps | Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany | 11370-40 | |
Forskolin | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | F6886-10MG | |
Gelatin | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | G1393-20ML | |
Gentamycin | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 5710064 | |
Goat anti-mouse IgG Alexa Fluor 488 | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | A11036 | |
Goat anti-rabbit IgG Alexa Fluor 568 | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | A11001 | |
HBSS (no Ca2+ and no Mg2+) | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 14170138 | |
HERAcell Incubator | Heraeus Instruments, Hanau, Germany | 51017865 | |
Heraguard ECO 1.2 | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 51029882 | |
Horse serum | Pan-Biotech, Aidenbach, Germany | P30-0712 | |
Image J Software | HIH, Bethesda, USA | ||
Laminin | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | L2020-1MG | |
Leibovitz´s L-15 Medium | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 11415064 | |
L-Glutamine 200 mM | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 25030024 | |
MACS Multistand | Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Germany | 130042303 | |
Microscissors | Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany | 15000-08 | |
Microscope | Motic, Wetzlar, Germany | Motic BA 400 | |
Microscope Axio observer 7 | Zeiss, Oberkochen, Germany | 491917-0001-000 | |
Microscope slide | VWR, Radnor, USA | 630-1985 | |
MiniMACS separator | Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Germany | 130091632 | |
MS columns | Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Germany | 130-042-201 | |
Neubauer counting chamber | Assistant, Erlangen, Germany | 40441 | |
Neuregulin | Peprotech, Rocky Hill, USA | 100-03 | |
Neurobasal medium | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 21103049 | |
NGF | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | N1408 | |
Normal goat serum | Biozol, Eching, Germany | S-1000 | |
Nunclon Δ multidishes, 4 well | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | D6789 | |
Paraformaldehyde | Acros Organics, New Jersey, USA | 10342243 | |
Penicillin/Streptomycin | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 15140-122 | |
Pipetboy | Eppendorf AG, Hamburg, Germany | 4430000018 | |
Pipettes | Eppendorf AG, Hamburg, Germany | 2231300004 | |
Poly-D-Lysin | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | P6407-5MG | |
Poly-L-Lysin | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | P4707-50ML | |
Reaction tubes, 15 mL | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 62554502 | |
Reaction tubes, 50 mL | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 62547254 | |
Reaction vessels, 1.5 mL | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 72690001 | |
Safety Cabinet S2020 1.8 | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 51026640 | |
Scissors | Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany | 14083-08 | |
Serological pipette, 10 mL | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 861254025 | |
Serological pipette, 25 mL | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 861685001 | |
Serological pipette, 5 mL | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 861253001 | |
Spatula | Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany | 10094-13 | |
Stereomicroscope Discovery.V8 | Zeiss, Oberkochen, Germany | 495015-0012-000 | |
Surgical scissors | Fine Science Tools GmbH, Heidelberg, Germany | 14007-14 | |
TC dish 100, cell + | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 833902300 | |
TC dish 35, cell + | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 833900300 | |
TC dish 60, cell + | Sarstedt, Nümbrecht, Germany | 833901300 | |
Thy-1 Microbeads (MACS Kit) | Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Germany | 130-094-523 | |
Triton X-100 | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | X100-500ML | |
Trypan Blue Solution 0.4% | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 15250061 | |
Trypsin (2.5%), no phenol red | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 15090-046 | |
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red | Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany | 25300-054 | |
Type I Collagenase | Sigma Aldrich GmbH, Steinheim, Germany | C1639 | |
Water bath type 1008 | GFL, Burgwedel, Germany | 4285 |