Summary

רומן in vivo טכניקות הדמיה טומוגרפיה מיקרו-ממוחשבת להערכת ההתקדמות של מחלת כבד שומני לא אלכוהולי

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

באמצעות מודל עכבר של מחלת כבד שומני לא אלכוהולי (NAFLD) הנגרמת על ידי דיאטה, אנו מתארים את השימוש בטכניקות הדמיה מיקרו-ממוחשבות חדשניות in vivo כשיטה לא פולשנית להערכת שלבי ההתקדמות של NAFLD, תוך התמקדות בעיקר ברשת כלי הדם בכבד בשל מעורבותה המשמעותית בחוסר ויסות כבד הקשור ל- NAFLD.

Abstract

מחלת כבד שומני לא אלכוהולי (NAFLD) היא בעיה בריאותית עולמית הולכת וגדלה, וההשפעה של NAFLD מורכבת על ידי היעדר טיפולים יעילים כיום. גורמים מגבילים ניכרים המעכבים אבחון מדויק ועדכני (כולל דירוג) וניטור של NAFLD, כמו גם פיתוח טיפולים פוטנציאליים, הם הליקויים הנוכחיים באפיון מבנה המיקרו-סביבה בכבד ובניקוד שלב המחלה באופן מרחבי-זמני ולא פולשני. באמצעות מודל עכבר NAFLD המושרה על ידי דיאטה, חקרנו את השימוש בטכניקות הדמיה של טומוגרפיה מיקרו-ממוחשבת in vivo (CT) כשיטה לא פולשנית להערכת שלבי ההתקדמות של NAFLD, תוך התמקדות בעיקר ברשת כלי הדם בכבד בשל מעורבותה המשמעותית בחוסר ויסות בכבד הקשור ל- NAFLD. מתודולוגיית הדמיה זו מאפשרת ניתוח אורך של סטאטוזיס בכבד וספיגת רקמות תפקודיות, כמו גם הערכה של נפח הדם היחסי, קוטר הווריד הפורטלי וצפיפות רשת כלי הדם. הבנת ההתאמות של רשת כלי הדם בכבד במהלך התקדמות NAFLD וקורלציה זו עם דרכים אחרות לאפיון התקדמות המחלה (סטאטוזיס, דלקת, פיברוזיס) באמצעות השיטה המוצעת יכולה לסלול את הדרך לקראת הקמת גישות חדשות, יעילות יותר וניתנות לשחזור לחקר NAFLD בעכברים. פרוטוקול זה צפוי גם לשדרג את ערכם של מודלים פרה-קליניים בבעלי חיים לחקר פיתוח טיפולים חדשניים נגד התקדמות המחלה.

Introduction

מחלת כבד שומני לא אלכוהולי (NAFLD) היא מחלה מטבולית המשפיעה על כ -25% מהאוכלוסייה ו ->80% מהאנשים הסובלים מהשמנת יתר חולנית1. על פי הערכות, שליש מהאנשים הללו מתקדמים לסטאטוהפטיטיס לא אלכוהולית (NASH), המאופיינת בסטאטוזיס כבד, דלקת ופיברוזיס2. NASH הוא שלב מחלה עם סיכון גבוה משמעותית להתפתחות שחמת הכבד וקרצינומה הפטוצלולרית (HCC)3,4. מסיבה זו, NASH הוא כיום הגורם השני בשכיחותו להשתלת כבד, והוא גם צפוי להפוך בקרוב למנבא החשוב ביותר להשתלת כבד 5,6,7. למרות שכיחותו וחומרתו, אין טיפול ספציפי למחלה זמין עבור NAFLD, והטיפולים הקיימים נועדו רק להתמודד עם פתולוגיות הקשורות למחלה כגון עמידות לאינסולין והיפרליפידמיה 5,6.

בשנים האחרונות, התפקיד הפתופיזיולוגי וההתאמות של האנדותל, ובכלל, של רשת כלי הדם של רקמות מטבוליות, כגון רקמת השומן והכבד, צוברים חשיבות רבה יותר במחקר, במיוחד במהלך השמנת יתר וחוסר ויסות מטבולי 7,8. האנדותל הוא חד-שכבה תאית המרפדת את רשת כלי הדם באופן פנימי, ופועלת כמחסום תפקודי ומבני. הוא גם תורם לתהליכים פיזיולוגיים ופתולוגיים שונים, כגון פקקת, הובלת מטבוליטים, דלקת ואנגיוגנזה 9,10. במקרה של הכבד, רשת כלי הדם מאופיינת בין היתר בנוכחות של תאים מיוחדים מאוד, המוגדרים כתאי אנדותל סינוסואידים בכבד (LSECs). תאים אלה חסרים קרום מרתף ויש להם fenestrae מרובים, המאפשר העברה קלה יותר של מצעים בין הדם ואת parenchyma הכבד. בשל מיקומם האנטומי הייחודי ומאפייניהם, סביר להניח של-LSECs יש תפקיד מכריע בתהליכים הפתופיזיולוגיים של הכבד, כולל התפתחות דלקת כבד ופיברוזיס במהלך NAFLD/NASH. ואכן, ההתאמות הפתולוגיות, המולקולריות והתאיות שעוברות LSECs במהלך NAFLD תורמות להתקדמות המחלה11. באופן ספציפי, אנגיוגנזה בכבד תלוית LSEC המתרחשת במהלך NAFLD קשורה באופן משמעותי עם התפתחות דלקת והתקדמות המחלה ל- NASH או אפילו HCC12. חוץ מזה, NAFLD מוקדם הקשור להשמנת יתר מאופיין בהתפתחות עמידות לאינסולין ב- LSECs, אשר מקדימה את התפתחות דלקת הכבד או סימני NAFLD מתקדמים אחרים13.

בנוסף, LSECs התגלו לאחרונה כרגולטורים מרכזיים של זרימת הדם בכבד והתאמות רשת כלי הדם במהלך מחלת כבד של מספר אטיולוגיות14,15. ואכן, מחלת כבד כרונית מאופיינת בהתכווצות כלי דם תוך כבדית בולטת ובהתנגדות מוגברת לזרימת הדם, התורמות להתפתחות יתר לחץ דם פורטלי16. במקרה של NAFLD, מספר מנגנונים הקשורים ל-LSEC תורמים לתופעה זו. לדוגמה, תנגודת לאינסולין ספציפית ל-LSEC, כפי שהוזכר לעיל, קשורה להרחבת כלי דם מופחתת תלוית אינסולין של כלי הדם בכבד13. חוץ מזה, במהלך המחלה, כלי הדם בכבד הופך רגיש יותר vasoconstrictors, תורם עוד יותר לפגיעה בזרימת הדם בכבד ומוביל את הופעתה של מתח גזירה, אשר שניהם לגרום לשיבוש של microcirculation סינוסואידלי17. עובדות אלה מצביעות על כך שכלי הדם הם יעד מרכזי במחלות כבד. עם זאת, גורמים מגבילים המעכבים את האבחון והניטור בזמן של NAFLD/NASH, כמו גם את הפיתוח של טיפולים פוטנציאליים, הם הליקויים באפיון עקבי של מיקרו-סביבה בכבד ומבנה (מיקרו) כלי דם, כמו גם הניקוד של שלב המחלה באופן מרחבי-זמני ולא פולשני.

הדמיית טומוגרפיה מיקרו-ממוחשבת (CT) היא כיום שיטת ההדמיה הלא פולשנית הסטנדרטית לתיאור מדויק של מידע אנטומי בתוך אורגניזם חי. מיקרו-CT ו-MRI מייצגים שתי שיטות הדמיה משלימות שיכולות לכסות מגוון רחב של פתולוגיות ולספק רזולוציה ופירוט יוצאי דופן במבנים וברקמות המודמיים. מיקרו-CT, בפרט, הוא כלי מהיר ומדויק מאוד המשמש לעתים קרובות לחקר פתולוגיות כגון מחלות עצם ושינויים הקשורים לפני השטח של העצם18, הערכת התקדמות פיברוזיס ריאתי לאורך זמן19, אבחון סרטן ריאות והיערכות20, או אפילו בחינת פתולוגיות שיניים21, ללא כל הכנה מיוחדת (או הרס) של הדגימות להיות דמות.

טכנולוגיית ההדמיה של מיקרו-CT מבוססת על תכונות ההנחתה השונות של איברים שונים מבחינת האינטראקציה של קרני רנטגן עם חומר. איברים המציגים הבדלי הנחתה גבוהים בקרני רנטגן מתוארים בניגודיות גבוהה בתמונות CT (כלומר, הריאות נראות כהות והעצמות בהירות). איברים בעלי תכונות הנחתה דומות מאוד (רקמות רכות שונות), מאתגרים להבחנה בתמונות CT22. כדי להתמודד עם מגבלה זו, חומרי ניגוד מיוחדים המבוססים על יוד, זהב וביסמוט נחקרו בהרחבה לשימוש in vivo . חומרים אלה משנים את תכונות ההנחתה של הרקמות שבהן הם מצטברים, מנוקים לאט ממחזור הדם, ומאפשרים אופסיפיקציה אחידה ויציבה של מערכת כלי הדם כולה או רקמות נבחרות23.

באבחון אנושי, הדמיית CT וטכניקות דומות, כגון מקטע שומן צפיפות פרוטונים הנגזר מ- MRI, כבר נמצאות בשימוש לקביעת תכולת שומן בכבד24,25. בהקשר של NAFLD, ניגודיות גבוהה של רקמות רכות חיונית להבחנה מדויקת בין נגעים פתולוגיים או כלי דם קטנים. למטרה זו נעשה שימוש בחומרי ניגוד המספקים ניגודיות משופרת של מאפייני רקמת הכבד. כלים וחומרים כאלה מאפשרים לחקור מאפייני כבד מרובים וביטויים פתולוגיים אפשריים, כגון ארכיטקטורה וצפיפות של רשת כלי הדם, שקיעת שומנים/סטאטוזיס וספיגת רקמה תפקודית/העברת שומנים (כילומיקרון) בכבד. בנוסף, ניתן להעריך גם את נפח הדם היחסי בכבד ואת קוטר הווריד הפורטלי. בזמן סריקה קצר מאוד, כל הפרמטרים הללו מספקים מידע שונה ומשלים על הערכה והתקדמות של NAFLD, אשר יכול לשמש לפיתוח אבחנה לא פולשנית ומפורטת.

במאמר זה, אנו מספקים פרוטוקול שלב אחר שלב לשימוש בטכניקות הדמיה מיקרו-CT חדשניות in vivo כשיטה לא פולשנית להערכת שלבי ההתקדמות של NAFLD. באמצעות פרוטוקול זה, ניתוח אורך של סטאטוזיס בכבד וספיגת רקמות תפקודיות, כמו גם הערכה של נפח הדם היחסי, קוטר הווריד הפורטלי וצפיפות רשת כלי הדם, ניתן לבצע וליישם במודלים עכבריים של מחלת כבד.

Protocol

כל ההליכים בוצעו על ידי אנשי ביומטק בהתאם לתקנות הרווחה האירופיות והלאומיות ואושרו על ידי הרשויות הלאומיות (מספר רישיון: EL 25, BIOexp 45/PN 49553, 21/01/20). כל הניסויים תוכננו ודווחו בהתאם להנחיות ARRIVE26. העכברים נרכשו ממכון פסטר ההלני, אתונה, יוון. הערה: בעלי החיים שוכנו בקבוצ…

Representative Results

במחקר מייצג זה, הדמיית מיקרו-CT ללא כל חומר ניגוד הצביעה על אחוז גבוה יותר של שומן בכבד בעכברים עם NAFLD בהשוואה לבקרות (טבלה 2), ואישרה את הפתולוגיה. באמצעות חומר הניגוד ExiTron וארכיטקטורת רשת כלי הדם בכבד וניתוח הצפיפות שתוארו לעיל, צפיפות הנפח הכוללת של רשת כלי הדם בכבד נמצאה גבוהה יות?…

Discussion

השיטה המומלצת כיום לאבחון והיערכות NAFLD בבני אדם היא ביופסיית כבד, הטומנת בחובה סיכון לדימום מורכב, כמו גם לאי דיוקי דגימה40. להיפך, במודלים של בעלי חיים, אבחון כזה מבוצע על ידי היסטולוגיה לאחר המוות, אם כי פרוטוקולים לביופסיה של כבד שרידות זמינים כיום ומומלצים כאשר תכנון המחקר מ…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

איור 1 נוצר באמצעות BioRender.com. עבודה זו נתמכה על ידי הקרן ההלנית למחקר וחדשנות (#3222 עד A.C). אנה חג’יהמבי ממומנת על ידי מכון רוג’ר ויליאמס להפטולוגיה, הקרן לחקר הכבד.

Materials

eXIA160 Binitio Biomedical, Inc. https://www.binitio.com/?Page=Products
High fat diet with 60% of kilocalories from fat Research Diets, New Brunswick, NJ, USA D12492
High-fructose corn syrup  Best flavors, CA hfcs-1gallon
Lacrinorm ophthalmic ointment  Bausch & Lomb
Normal diet with 10% of kilocalories from fat  Research Diets, New Brunswick, NJ, USA D12450
Viscover ExiTron nano 12000  Milteny Biotec, Bergisch Gladbach, Germany 130-095-698
VivoQuant Invicro
X-CUBE  Molecubes, Belgium https://www.molecubes.com/systems/

References

  1. Lazarus, J. V., et al. Advancing the global public health agenda for NAFLD: A consensus statement. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 19 (1), 60-78 (2022).
  2. Takahashi, Y., Fukusato, T. Histopathology of non-alcoholic fatty liver disease/non-alcoholic steatohepatitis. World Journal of Gastroenterology. 20 (42), 15539-15548 (2014).
  3. Huang, D. Q., El-Serag, H. B., Loomba, R. Global epidemiology of NAFLD-related HCC: Trends, predictions, risk factors and prevention. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 18 (4), 223-238 (2021).
  4. Niederseer, D., Wernly, B., Aigner, E., Stickel, F., Datz, C. NAFLD and cardiovascular diseases: Epidemiological, mechanistic and therapeutic considerations. Journal of Clinical Medicine. 10 (3), 467 (2021).
  5. Lefere, S., et al. Differential effects of selective- and pan-PPAR agonists on experimental steatohepatitis and hepatic macrophages. Journal of Hepatology. 73 (4), 757-770 (2020).
  6. Chrysavgis, L., Papatheodoridi, A. M., Chatzigeorgiou, A., Cholongitas, E. The impact of sodium glucose co-transporter 2 inhibitors on non-alcoholic fatty liver disease.Journal of Gastroenterology and Hepatology. Journal of Gastroenterology and Hepatology. 36 (4), 893-909 (2021).
  7. Li, M., Qian, M., Xu, J. Vascular endothelial regulation of obesity-associated insulin resistance. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 4, 51 (2017).
  8. Pi, X., Xie, L., Patterson, C. Emerging roles of vascular endothelium in metabolic homeostasis. Circulation Research. 123 (4), 477-494 (2018).
  9. Chiu, J. J., Chien, S. Effects of disturbed flow on vascular endothelium: Pathophysiological basis and clinical perspectives. Physiological Reviews. 91 (1), 327-387 (2011).
  10. Koyama, Y., Brenner, D. A. Liver inflammation and fibrosis. The Journal of Clinical Investigation. 127 (1), 55-64 (2017).
  11. Nasiri-Ansari, N., et al. Endothelial cell dysfunction and non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD): A concise review. Cells. 11 (16), 2511 (2022).
  12. Lefere, S., et al. Angiopoietin-2 promotes pathological angiogenesis and is a therapeutic target in murine non-alcoholic fatty liver disease. Hepatology. 69 (3), 1087-1104 (2019).
  13. Pasarin, M., et al. Insulin resistance and liver microcirculation in a rat model of early NAFLD. Journal of Hepatology. 55 (5), 1095-1102 (2011).
  14. Hammoutene, A., Rautou, P. E. Role of liver sinusoidal endothelial cells in non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 70 (6), 1278-1291 (2019).
  15. Sun, X., Harris, E. N. New aspects of hepatic endothelial cells in physiology and non-alcoholic fatty liver disease. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 318 (6), C1200-C1213 (2020).
  16. Iwakiri, Y., Shah, V., Rockey, D. C. Vascular pathobiology in chronic liver disease and cirrhosis – current status and future directions. Journal of Hepatology. 61 (4), 912-924 (2014).
  17. Baffy, G. Origins of portal hypertension in non-alcoholic fatty liver disease. Digestive Diseases and Sciences. 63 (3), 563-576 (2018).
  18. Ruhli, F. J., Kuhn, G., Evison, R., Muller, R., Schultz, M. Diagnostic value of micro-CT in comparison with histology in the qualitative assessment of historical human skull bone pathologies. American Journal of Physical Anthropology. 133 (4), 1099-1111 (2007).
  19. Rodt, T., et al. Micro-computed tomography of pulmonary fibrosis in mice induced by adenoviral gene transfer of biologically active transforming growth factor-beta1. Respiratory Research. 11 (1), 181 (2010).
  20. Deng, L., Xiao, S. M., Qiang, J. W., Li, Y. A., Zhang, Y. Early lung adenocarcinoma in mice: Micro-computed tomography manifestations and correlation with pathology. Translational Oncology. 10 (3), 311-317 (2017).
  21. Feng, J., et al. Abnormalities in the enamel in bmp2-deficient mice. Cells, Tissues, Organs. 194 (2-4), 216-221 (2011).
  22. Kagadis, G. C., Loudos, G., Katsanos, K., Langer, S. G., Nikiforidis, G. C. In vivo small animal imaging: current status and future prospects. Medical Physics. 37 (12), 6421-6442 (2010).
  23. Starosolski, Z., et al. Ultra high-resolution in vivo computed tomography imaging of mouse cerebrovasculature using a long circulating blood pool contrast agent. Scientific Reports. 5, 10178 (2015).
  24. Caussy, C., Reeder, S. B., Sirlin, C. B., Noninvasive Loomba, R. quantitative assessment of liver fat by MRI-PDFF as an endpoint in NASH trials. Hepatology. 68 (2), 763-772 (2018).
  25. Lubura, M., et al. Non-invasive quantification of white and brown adipose tissues and liver fat content by computed tomography in mice. PLoS One. 7 (5), e37026 (2012).
  26. Perciedu Sert, N., et al. The ARRIVE guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research. PLoS Biology. 18 (7), e3000410 (2020).
  27. Tetri, L. H., Basaranoglu, M., Brunt, E. M., Yerian, L. M., Neuschwander-Tetri, B. A. Severe NAFLD with hepatic necroinflammatory changes in mice fed trans fats and a high-fructose corn syrup equivalent. American Journal of Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 295 (5), G987-G995 (2008).
  28. Machado, M. V., et al. Mouse models of diet-induced non-alcoholic steatohepatitis reproduce the heterogeneity of the human disease. PLoS One. 10 (5), 0127991 (2015).
  29. Jensen, T., et al. Fructose and sugar: A major mediator of non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 68 (5), 1063-1075 (2018).
  30. Nevzorova, Y. A., Boyer-Diaz, Z., Cubero, F. J., Gracia-Sancho, J. Animal models for liver disease – A practical approach for translational research. Journal of Hepatology. 73 (2), 423-440 (2020).
  31. De Rudder, M., et al. Automated computerized image analysis for the user-independent evaluation of disease severity in preclinical models of NAFLD/NASH. Laboratory Investigation. 100 (1), 147-160 (2020).
  32. Willekens, I., et al. Time-course of contrast enhancement in spleen and liver with Exia 160, Fenestra LC, and VC. Molecular Imaging and Biology. 11 (2), 128-135 (2009).
  33. Das, N. M., et al. In vivo quantitative microcomputed tomographic analysis of vasculature and organs in a normal and diseased mouse model. PLoS One. 11 (2), e0150085 (2016).
  34. Ehling, J., et al. CCL2-dependent infiltrating macrophages promote angiogenesis in progressive liver fibrosis. Gut. 63 (12), 1960-1971 (2014).
  35. Zhang, J., et al. Gamna-Gandy bodies of the spleen detected with susceptibility weighted imaging: maybe a new potential non-invasive marker of esophageal varices. PLoS One. 8 (1), e55626 (2013).
  36. Chen, Y., Li, J., Zhou, Q., Lyu, G., Li, S. Detection of liver and spleen stiffness in rats with portal hypertension by two-dimensional shear wave elastography. BMC Medical Imaging. 22 (1), 68 (2022).
  37. Lessa, A. S., et al. Ultrasound imaging in an experimental model of fatty liver disease and cirrhosis in rats. BMC Veterinary Research. 6, 6 (2010).
  38. Abikhzer, G., Alabed, Y. Z., Azoulay, L., Assayag, J., Rush, C. Altered hepatic metabolic activity in patients with hepatic steatosis on FDG PET/CT. AJR. American Journal of Roentgenology. 196 (1), 176-180 (2011).
  39. Newman, E. M., Rowland, A. A physiologically based pharmacokinetic model to predict the impact of metabolic changes associated with metabolic associated fatty liver disease on drug exposure. International Journal of Molecular Sciences. 23 (19), 11751 (2022).
  40. Tsai, E., Lee, T. P. Diagnosis and evaluation of non-alcoholic fatty liver disease/non-alcoholic steatohepatitis, including noninvasive biomarkers and transient elastography. Clinics in Liver Disease. 22 (1), 73-92 (2018).
  41. Oldham, S., Rivera, C., Boland, M. L., Trevaskis, J. L. Incorporation of a survivable liver biopsy procedure in mice to assess non-alcoholic steatohepatitis (NASH) resolution. Journal of Visualized Experiments. 146, e59130 (2019).
  42. Boll, H., et al. Comparison of Fenestra LC, ExiTron nano 6000, and ExiTron nano 12000 for micro-CT imaging of liver and spleen in mice. Academic Radiology. 20 (9), 1137-1143 (2013).
  43. Ashton, J. R., West, J. L., Badea, C. T. In vivo small animal micro-CT using nanoparticle contrast agents. Frontiers in Pharmacology. 6, 256 (2015).
  44. Rothe, J. H., et al. Time course of contrast enhancement by micro-CT with dedicated contrast agents in normal mice and mice with hepatocellular carcinoma: Comparison of one iodinated and two nanoparticle-based agents. Academic Radiology. 22 (2), 169-178 (2015).
  45. Toczek, J., et al. Computed tomography imaging of macrophage phagocytic activity in abdominal aortic aneurysm. Theranostics. 11 (12), 5876-5888 (2021).
  46. Mannheim, J. G., et al. Comparison of small animal CT contrast agents. Contrast Media & Molecular Imaging. 11 (4), 272-284 (2016).
check_url/fr/64838?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Hadjihambi, A., Velliou, R., Tsialios, P., Legaki, A., Chatzigeorgiou, A., Rouchota, M. G. Novel In Vivo Micro-Computed Tomography Imaging Techniques for Assessing the Progression of Non-Alcoholic Fatty Liver Disease. J. Vis. Exp. (193), e64838, doi:10.3791/64838 (2023).

View Video