Summary

Nya in vivo mikrodatortomografiavbildningstekniker för att bedöma progressionen av icke-alkoholisk fettleversjukdom

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

Med hjälp av en dietinducerad icke-alkoholisk fettleversjukdom (NAFLD) musmodell beskriver vi användningen av nya in vivo mikrodatortomografiavbildningstekniker som en icke-invasiv metod för att bedöma progressionsstadierna av NAFLD, med övervägande fokus på det hepatiska vaskulära nätverket på grund av dess betydande engagemang i NAFLD-relaterad leverdysreglering.

Abstract

Icke-alkoholisk fettleversjukdom (NAFLD) är ett växande globalt hälsoproblem, och effekterna av NAFLD förvärras av den nuvarande bristen på effektiva behandlingar. Avsevärda begränsande faktorer som hindrar snabb och korrekt diagnos (inklusive gradering) och övervakning av NAFLD, liksom utvecklingen av potentiella terapier, är de nuvarande bristerna i karakteriseringen av leverns mikromiljöstruktur och poängsättningen av sjukdomsstadiet på ett spatiotemporalt och icke-invasivt sätt. Med hjälp av en dietinducerad NAFLD-musmodell undersökte vi användningen av in vivo mikrodatortomografi (CT) avbildningstekniker som en icke-invasiv metod för att bedöma progressionsstadierna av NAFLD, med övervägande fokus på det hepatiska vaskulära nätverket på grund av dess betydande involvering i NAFLD-relaterad leverdysreglering. Denna avbildningsmetodik möjliggör longitudinell analys av leversteatos och funktionellt vävnadsupptag, samt utvärdering av den relativa blodvolymen, portvendiametern och densiteten i det vaskulära nätverket. Att förstå anpassningarna av det hepatiska vaskulära nätverket under NAFLD-progression och korrelera detta med andra sätt att karakterisera sjukdomsprogressionen (steatos, inflammation, fibros) med hjälp av den föreslagna metoden kan bana väg för etableringen av nya, mer effektiva och reproducerbara metoder för NAFLD-forskning på möss. Detta protokoll förväntas också uppgradera värdet av prekliniska djurmodeller för att undersöka utvecklingen av nya terapier mot sjukdomsprogression.

Introduction

Icke-alkoholisk fettleversjukdom (NAFLD) är en metabol sjukdom som drabbar cirka 25 % av befolkningen och >80 % av sjukligt överviktiga personer1. Uppskattningsvis en tredjedel av dessa individer utvecklar till icke-alkoholisk steatohepatit (NASH), som kännetecknas av leversteatos, inflammation och fibros2. NASH är ett sjukdomsstadium med en signifikant högre risk för utveckling av cirros och hepatocellulärt karcinom (HCC)3,4. Av denna anledning är NASH för närvarande den näst vanligaste orsaken till levertransplantation, och den förväntas också snart bli den viktigaste prediktorn för levertransplantation 5,6,7. Trots dess förekomst och svårighetsgrad finns ingen sjukdomsspecifik behandling tillgänglig för NAFLD, och de befintliga behandlingarna syftar endast till att ta itu med sjukdomsassocierade patologier som insulinresistens och hyperlipidemi 5,6.

Under de senaste åren har endotelets patofysiologiska roll och anpassningar och i allmänhet det vaskulära nätverket av metaboliska vävnader, såsom fettvävnaden och levern, fått allt större betydelse i forskningen, särskilt vid fetma och metabol dysreglering 7,8. Endotelet är ett cellulärt monolager som fodrar det vaskulära nätverket internt och fungerar som en funktionell och strukturell barriär. Det bidrar också till olika fysiologiska och patologiska processer, såsom trombos, metabolittransport, inflammation och angiogenes 9,10. När det gäller levern kännetecknas det vaskulära nätverket bland annat av närvaron av högspecialiserade celler, definierade som leverns sinusformade endotelceller (LSEC). Dessa celler saknar ett basalmembran och har flera fenestrae, vilket möjliggör en enklare överföring av substrat mellan blodet och leverparenkymet. På grund av deras distinkta anatomiska läge och egenskaper har LSEC sannolikt en avgörande roll i leverns patofysiologiska processer, inklusive utvecklingen av leverinflammation och fibros under NAFLD/NASH. Faktum är att de patologiska, molekylära och cellulära anpassningar som LSEC genomgår under NAFLD bidrar till sjukdomsprogressionen11. Specifikt är den LSEC-beroende leverangiogenesen som äger rum under NAFLD signifikant associerad med utvecklingen av inflammation och progressionen av sjukdomen till NASH eller till och med HCC12. Dessutom kännetecknas fetmarelaterad tidig NAFLD av utvecklingen av insulinresistens i LSEC, som föregår utvecklingen av leverinflammation eller andra avancerade NAFLD-tecken13.

Dessutom har LSEC nyligen dykt upp som centrala regulatorer för leverns blodflöde och vaskulära nätverksanpassningar under leversjukdom av flera etiologier14,15. Faktum är att kronisk leversjukdom kännetecknas av framträdande intrahepatisk vasokonstriktion och ökad motståndskraft mot blodflödet, vilket bidrar till utvecklingen av portal hypertension16. När det gäller NAFLD bidrar flera LSEC-relaterade mekanismer till detta fenomen. Till exempel är LSEC-specifik insulinresistens, som nämnts ovan, förknippad med minskad insulinberoende vasodilatation av leverns kärl13. Dessutom blir leverns kärl under sjukdomsförloppet känsligare för vasokonstriktorer, vilket ytterligare bidrar till försämring av blodflödet i levern och leder till uppkomsten av skjuvspänning, vilket båda resulterar i en störning av den sinusformade mikrocirkulationen17. Dessa fakta tyder på att kärlen är ett viktigt mål vid leversjukdom. Begränsande faktorer som hindrar snabb diagnos och övervakning av NAFLD/NASH, liksom utvecklingen av potentiella terapier, är dock bristerna i den konsekventa karakteriseringen av leverns mikromiljö och (mikro)vaskulära struktur, samt poängsättningen av sjukdomsstadiet på ett spatiotemporalt och icke-invasivt sätt.

Mikrodatortomografi (CT) är för närvarande den gyllene standarden för icke-invasiv avbildningsmetod för att exakt avbilda anatomisk information i en levande organism. Mikro-CT och MRT representerar två kompletterande avbildningsmetoder som kan täcka ett brett spektrum av patologier och ge exceptionell upplösning och detaljrikedom i de avbildade strukturerna och vävnaderna. Micro-CT, i synnerhet, är ett mycket snabbt och exakt verktyg som ofta används för att studera patologier som bensjukdomar och tillhörande förändringar på benytan18, bedöma utvecklingen av lungfibros över tid19, diagnostisera lungcancer och dess stadieindelning20, eller till och med undersöka tandpatologier21, utan någon speciell förberedelse (eller förstörelse) av proverna som avbildas.

Avbildningstekniken för mikro-CT är baserad på de olika dämpningsegenskaperna hos olika organ när det gäller röntgenstrålars interaktion med materia. Organ som uppvisar stora skillnader i röntgendämpning avbildas med hög kontrast i CT-bilder (dvs. lungorna ser mörka ut och benen ljusa). Organ som uppvisar mycket likartade dämpningsegenskaper (olika mjukvävnader) är svåra att urskilja på CT-bilder22. För att ta itu med denna begränsning har specialiserade kontrastmedel baserade på jod, guld och vismut undersökts i stor utsträckning för in vivo-användning . Dessa medel förändrar dämpningsegenskaperna hos de vävnader i vilka de ackumuleras, rensas långsamt från cirkulationen och möjliggör en enhetlig och stabil opacifiering av hela kärlsystemet eller utvalda vävnader23.

Inom humandiagnostik används redan datortomografi och jämförbara tekniker, t.ex. MRT-härledd fettfraktion med protondensitet, för bestämning av leverfetthalt24,25. I samband med NAFLD är hög mjukvävnadskontrast avgörande för att korrekt särskilja patologiska lesioner eller små kärl. För detta ändamål används kontrastmedel som ger ökad kontrast av levervävnadens egenskaper. Sådana verktyg och material gör det möjligt att studera flera leveregenskaper och möjliga patologiska uttryck, såsom kärlnätverkets arkitektur och densitet, lipidavsättning/steatos och funktionellt vävnadsupptag/lipidöverföring (kylomikron) i levern. Dessutom kan leverns relativa blodvolym och portvendiameter också utvärderas. På mycket kort skanningstid ger alla dessa parametrar olika och kompletterande information om utvärdering och progression av NAFLD, som kan användas för att utveckla en icke-invasiv och detaljerad diagnos.

I den här artikeln tillhandahåller vi ett steg-för-steg-protokoll för användning av nya in vivo mikro-CT-avbildningstekniker som en icke-invasiv metod för att bedöma progressionsstadierna av NAFLD. Med hjälp av detta protokoll kan den longitudinella analysen av leversteatos och funktionellt vävnadsupptag, samt utvärderingen av den relativa blodvolymen, portvendiametern och densiteten i det vaskulära nätverket, utföras och tillämpas i musmodeller av leversjukdom.

Protocol

Alla procedurer utfördes av BIOEMTECHs personal i enlighet med europeiska och nationella djurskyddsbestämmelser och godkändes av nationella myndigheter (licensnummer EL 25, BIOexp 45/PN 49553 21/01/20). Alla experiment utformades och rapporterades i enlighet med ARRIVE-riktlinjerna26. Mössen köptes från Hellenic Pasteur Institute i Aten, Grekland. OBS: Djuren inhystes i individuellt ventilerade burar berikade med skenor och papprör i ett rum vid 20-22 °C, med en…

Representative Results

I denna representativa studie indikerade mikro-CT-avbildning utan kontrastmedel en högre andel leverfett hos möss med NAFLD jämfört med kontroller (tabell 2), vilket bekräftar patologin. Med hjälp av kontrastmedlet ExiTron och den vaskulära nätverksarkitekturen och densitetsanalysen i levern som beskrivs ovan, visade sig den totala volymtätheten i det hepatiska vaskulära nätverket vara högre hos möss med NAFLD jämfört med friska kontroller (Figur 6, ta…

Discussion

Den för närvarande rekommenderade metoden för NAFLD-diagnos och stadieindelning på människor är leverbiopsi, som medför risk för blödningskomplexitet, samt provtagningsfelaktigheter40. Tvärtom, i djurmodeller utförs sådan diagnos genom histologi post-mortem, även om protokoll för överlevnadsbar leverbiopsi nu finns tillgängliga och rekommenderas när studiedesignen tillåter41. Användningen av histologi efter döden innebär att ett stort antal djur krävs …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Figur 1 skapades med BioRender.com. Detta arbete stöddes av Hellenic Foundation for Research and Innovation (#3222 till A.C.). Anna Hadjihambi är finansierad av Roger Williams Institute of Hepatology, Foundation for Liver Research.

Materials

eXIA160 Binitio Biomedical, Inc. https://www.binitio.com/?Page=Products
High fat diet with 60% of kilocalories from fat Research Diets, New Brunswick, NJ, USA D12492
High-fructose corn syrup  Best flavors, CA hfcs-1gallon
Lacrinorm ophthalmic ointment  Bausch & Lomb
Normal diet with 10% of kilocalories from fat  Research Diets, New Brunswick, NJ, USA D12450
Viscover ExiTron nano 12000  Milteny Biotec, Bergisch Gladbach, Germany 130-095-698
VivoQuant Invicro
X-CUBE  Molecubes, Belgium https://www.molecubes.com/systems/

References

  1. Lazarus, J. V., et al. Advancing the global public health agenda for NAFLD: A consensus statement. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 19 (1), 60-78 (2022).
  2. Takahashi, Y., Fukusato, T. Histopathology of non-alcoholic fatty liver disease/non-alcoholic steatohepatitis. World Journal of Gastroenterology. 20 (42), 15539-15548 (2014).
  3. Huang, D. Q., El-Serag, H. B., Loomba, R. Global epidemiology of NAFLD-related HCC: Trends, predictions, risk factors and prevention. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 18 (4), 223-238 (2021).
  4. Niederseer, D., Wernly, B., Aigner, E., Stickel, F., Datz, C. NAFLD and cardiovascular diseases: Epidemiological, mechanistic and therapeutic considerations. Journal of Clinical Medicine. 10 (3), 467 (2021).
  5. Lefere, S., et al. Differential effects of selective- and pan-PPAR agonists on experimental steatohepatitis and hepatic macrophages. Journal of Hepatology. 73 (4), 757-770 (2020).
  6. Chrysavgis, L., Papatheodoridi, A. M., Chatzigeorgiou, A., Cholongitas, E. The impact of sodium glucose co-transporter 2 inhibitors on non-alcoholic fatty liver disease.Journal of Gastroenterology and Hepatology. Journal of Gastroenterology and Hepatology. 36 (4), 893-909 (2021).
  7. Li, M., Qian, M., Xu, J. Vascular endothelial regulation of obesity-associated insulin resistance. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 4, 51 (2017).
  8. Pi, X., Xie, L., Patterson, C. Emerging roles of vascular endothelium in metabolic homeostasis. Circulation Research. 123 (4), 477-494 (2018).
  9. Chiu, J. J., Chien, S. Effects of disturbed flow on vascular endothelium: Pathophysiological basis and clinical perspectives. Physiological Reviews. 91 (1), 327-387 (2011).
  10. Koyama, Y., Brenner, D. A. Liver inflammation and fibrosis. The Journal of Clinical Investigation. 127 (1), 55-64 (2017).
  11. Nasiri-Ansari, N., et al. Endothelial cell dysfunction and non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD): A concise review. Cells. 11 (16), 2511 (2022).
  12. Lefere, S., et al. Angiopoietin-2 promotes pathological angiogenesis and is a therapeutic target in murine non-alcoholic fatty liver disease. Hepatology. 69 (3), 1087-1104 (2019).
  13. Pasarin, M., et al. Insulin resistance and liver microcirculation in a rat model of early NAFLD. Journal of Hepatology. 55 (5), 1095-1102 (2011).
  14. Hammoutene, A., Rautou, P. E. Role of liver sinusoidal endothelial cells in non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 70 (6), 1278-1291 (2019).
  15. Sun, X., Harris, E. N. New aspects of hepatic endothelial cells in physiology and non-alcoholic fatty liver disease. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 318 (6), C1200-C1213 (2020).
  16. Iwakiri, Y., Shah, V., Rockey, D. C. Vascular pathobiology in chronic liver disease and cirrhosis – current status and future directions. Journal of Hepatology. 61 (4), 912-924 (2014).
  17. Baffy, G. Origins of portal hypertension in non-alcoholic fatty liver disease. Digestive Diseases and Sciences. 63 (3), 563-576 (2018).
  18. Ruhli, F. J., Kuhn, G., Evison, R., Muller, R., Schultz, M. Diagnostic value of micro-CT in comparison with histology in the qualitative assessment of historical human skull bone pathologies. American Journal of Physical Anthropology. 133 (4), 1099-1111 (2007).
  19. Rodt, T., et al. Micro-computed tomography of pulmonary fibrosis in mice induced by adenoviral gene transfer of biologically active transforming growth factor-beta1. Respiratory Research. 11 (1), 181 (2010).
  20. Deng, L., Xiao, S. M., Qiang, J. W., Li, Y. A., Zhang, Y. Early lung adenocarcinoma in mice: Micro-computed tomography manifestations and correlation with pathology. Translational Oncology. 10 (3), 311-317 (2017).
  21. Feng, J., et al. Abnormalities in the enamel in bmp2-deficient mice. Cells, Tissues, Organs. 194 (2-4), 216-221 (2011).
  22. Kagadis, G. C., Loudos, G., Katsanos, K., Langer, S. G., Nikiforidis, G. C. In vivo small animal imaging: current status and future prospects. Medical Physics. 37 (12), 6421-6442 (2010).
  23. Starosolski, Z., et al. Ultra high-resolution in vivo computed tomography imaging of mouse cerebrovasculature using a long circulating blood pool contrast agent. Scientific Reports. 5, 10178 (2015).
  24. Caussy, C., Reeder, S. B., Sirlin, C. B., Noninvasive Loomba, R. quantitative assessment of liver fat by MRI-PDFF as an endpoint in NASH trials. Hepatology. 68 (2), 763-772 (2018).
  25. Lubura, M., et al. Non-invasive quantification of white and brown adipose tissues and liver fat content by computed tomography in mice. PLoS One. 7 (5), e37026 (2012).
  26. Perciedu Sert, N., et al. The ARRIVE guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research. PLoS Biology. 18 (7), e3000410 (2020).
  27. Tetri, L. H., Basaranoglu, M., Brunt, E. M., Yerian, L. M., Neuschwander-Tetri, B. A. Severe NAFLD with hepatic necroinflammatory changes in mice fed trans fats and a high-fructose corn syrup equivalent. American Journal of Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 295 (5), G987-G995 (2008).
  28. Machado, M. V., et al. Mouse models of diet-induced non-alcoholic steatohepatitis reproduce the heterogeneity of the human disease. PLoS One. 10 (5), 0127991 (2015).
  29. Jensen, T., et al. Fructose and sugar: A major mediator of non-alcoholic fatty liver disease. Journal of Hepatology. 68 (5), 1063-1075 (2018).
  30. Nevzorova, Y. A., Boyer-Diaz, Z., Cubero, F. J., Gracia-Sancho, J. Animal models for liver disease – A practical approach for translational research. Journal of Hepatology. 73 (2), 423-440 (2020).
  31. De Rudder, M., et al. Automated computerized image analysis for the user-independent evaluation of disease severity in preclinical models of NAFLD/NASH. Laboratory Investigation. 100 (1), 147-160 (2020).
  32. Willekens, I., et al. Time-course of contrast enhancement in spleen and liver with Exia 160, Fenestra LC, and VC. Molecular Imaging and Biology. 11 (2), 128-135 (2009).
  33. Das, N. M., et al. In vivo quantitative microcomputed tomographic analysis of vasculature and organs in a normal and diseased mouse model. PLoS One. 11 (2), e0150085 (2016).
  34. Ehling, J., et al. CCL2-dependent infiltrating macrophages promote angiogenesis in progressive liver fibrosis. Gut. 63 (12), 1960-1971 (2014).
  35. Zhang, J., et al. Gamna-Gandy bodies of the spleen detected with susceptibility weighted imaging: maybe a new potential non-invasive marker of esophageal varices. PLoS One. 8 (1), e55626 (2013).
  36. Chen, Y., Li, J., Zhou, Q., Lyu, G., Li, S. Detection of liver and spleen stiffness in rats with portal hypertension by two-dimensional shear wave elastography. BMC Medical Imaging. 22 (1), 68 (2022).
  37. Lessa, A. S., et al. Ultrasound imaging in an experimental model of fatty liver disease and cirrhosis in rats. BMC Veterinary Research. 6, 6 (2010).
  38. Abikhzer, G., Alabed, Y. Z., Azoulay, L., Assayag, J., Rush, C. Altered hepatic metabolic activity in patients with hepatic steatosis on FDG PET/CT. AJR. American Journal of Roentgenology. 196 (1), 176-180 (2011).
  39. Newman, E. M., Rowland, A. A physiologically based pharmacokinetic model to predict the impact of metabolic changes associated with metabolic associated fatty liver disease on drug exposure. International Journal of Molecular Sciences. 23 (19), 11751 (2022).
  40. Tsai, E., Lee, T. P. Diagnosis and evaluation of non-alcoholic fatty liver disease/non-alcoholic steatohepatitis, including noninvasive biomarkers and transient elastography. Clinics in Liver Disease. 22 (1), 73-92 (2018).
  41. Oldham, S., Rivera, C., Boland, M. L., Trevaskis, J. L. Incorporation of a survivable liver biopsy procedure in mice to assess non-alcoholic steatohepatitis (NASH) resolution. Journal of Visualized Experiments. 146, e59130 (2019).
  42. Boll, H., et al. Comparison of Fenestra LC, ExiTron nano 6000, and ExiTron nano 12000 for micro-CT imaging of liver and spleen in mice. Academic Radiology. 20 (9), 1137-1143 (2013).
  43. Ashton, J. R., West, J. L., Badea, C. T. In vivo small animal micro-CT using nanoparticle contrast agents. Frontiers in Pharmacology. 6, 256 (2015).
  44. Rothe, J. H., et al. Time course of contrast enhancement by micro-CT with dedicated contrast agents in normal mice and mice with hepatocellular carcinoma: Comparison of one iodinated and two nanoparticle-based agents. Academic Radiology. 22 (2), 169-178 (2015).
  45. Toczek, J., et al. Computed tomography imaging of macrophage phagocytic activity in abdominal aortic aneurysm. Theranostics. 11 (12), 5876-5888 (2021).
  46. Mannheim, J. G., et al. Comparison of small animal CT contrast agents. Contrast Media & Molecular Imaging. 11 (4), 272-284 (2016).
check_url/fr/64838?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Hadjihambi, A., Velliou, R., Tsialios, P., Legaki, A., Chatzigeorgiou, A., Rouchota, M. G. Novel In Vivo Micro-Computed Tomography Imaging Techniques for Assessing the Progression of Non-Alcoholic Fatty Liver Disease. J. Vis. Exp. (193), e64838, doi:10.3791/64838 (2023).

View Video