Summary

Immunfärgningsbaserad detektion av dynamiska förändringar i röda blodkroppsproteiner

Published: March 17, 2023
doi:

Summary

Att fånga dynamiska förändringar i proteinaktiveringen av enukleerade röda blodkroppar innebär metodologiska utmaningar, som bevarande av dynamiska förändringar i akuta stimuli för senare bedömning. Det presenterade protokollet beskriver provberednings- och färgningstekniker som möjliggör bevarande och analys av relevanta proteinförändringar och efterföljande detektion.

Abstract

Antikroppsmärkning av röda blodkroppar (RBC) proteiner är en vanligt använd, semikvantitativ metod för att upptäcka förändringar i det totala proteininnehållet eller akuta förändringar i proteinaktiveringstillstånd. Det underlättar bedömningen av RBC-behandlingar, karakterisering av skillnader i vissa sjukdomstillstånd och beskrivning av cellulära koherencies. Detektion av akut förändrad proteinaktivering (t.ex. genom mekanotransduktion) kräver adekvat provberedning för att bevara annars tillfälliga proteinmodifieringar. Grundprincipen innefattar immobilisering av målbindningsställena för de önskade RBC-proteinerna för att möjliggöra initial bindning av specifika primära antikroppar. Provet bearbetas vidare för att garantera optimala förhållanden för bindning av den sekundära antikroppen till motsvarande primära antikropp. Valet av icke-fluorescerande sekundära antikroppar kräver ytterligare behandling, inklusive koppling av biotin-avidin och applicering av 3,3-diaminobensidintetrahydroklorid (DAB) för att utveckla färgningen, som måste kontrolleras i realtid under ett mikroskop för att stoppa oxidationen och därmed färgningsintensiteten i tid. För färgningsintensitetsdetektering tas bilder med ett vanligt ljusmikroskop. Vid en modifiering av detta protokoll kan en fluoresceinkonjugerad sekundär antikropp appliceras istället, vilket har fördelen att inget ytterligare utvecklingssteg är nödvändigt. Denna procedur kräver emellertid ett fluorescensmål fäst vid ett mikroskop för färgningsdetektering. Med tanke på dessa metoders semikvantitativa karaktär är det absolut nödvändigt att tillhandahålla flera kontrollfläckar för att ta hänsyn till icke-specifika antikroppsreaktioner och bakgrundssignaler. Här presenterar vi både färgningsprotokoll och motsvarande analytiska processer för att jämföra och diskutera respektive resultat och fördelar med de olika färgningsteknikerna.

Introduction

Röda blodkroppar (RBC) passerar hjärt-kärlsystemet i 70 till 140 dagar, med en genomsnittlig RBC-ålder på cirka 115 dagar 1,2. Senescenta eller skadade röda blodkroppar avlägsnas från cirkulationen genom erytrofagocytos, en effektiv clearingprocess som drivs av makrofager3. Den förutbestämda livslängden för dessa celler är en konsekvens av att cellorganellerna överlämnas, inklusive kärnan, mitokondrierna och ribosomerna, under differentiering och mognad4. Således saknar cirkulerande RBC ett translationellt maskineri, vilket utesluter syntesen av nya proteiner3. Det följer att dynamiska, posttranslationella modifieringar av befintliga proteiner representerar den enda livskraftiga mekanismen för akut, biokemisk reglering som svar på extracellulära och intracellulära stressfaktorer som verkar på RBC5.

Mekaniska krafter verkar vara de viktigaste extracellulära signalerna som orsakar aktivering eller modulering av biokemiska vägar inom RBC. Upptäckten av det mekanokänsliga proteinet, Piezo1, i RBC-membran6 inspirerade flera forskningslinjer som undersökte mekaniskt aktiverad signalering i dessa celler7. Till exempel har de senaste framstegen visat att de fysikaliska egenskaperna hos RBC aktivt regleras av akuta och dynamiska förändringar av proteiner8, vilket inkluderar posttranslationell fosforylering och ubiquitinering9. Eftersom dessa normala modifieringar skiljer sig åt i vissa sjukdomar 9,10,11, verkar det vara av vetenskapligt och kliniskt intresse att bestämma aktiveringstillståndet för RBC-proteiner, särskilt i förhållande till mekanobiologiska processer.

Bestämningen av akuta förändringar i RBC-proteinaktiveringstillstånd innebär vissa metodologiska utmaningar. Till exempel kräver lagring av RBC-prover för senare analys bevarande av de modifierade RBC-proteinerna, eftersom posttranslationella modifieringar inte är hållbara. Dessutom är klassiska proteindetekteringsmetoder (t.ex. western blotting) notoriskt svåra att standardisera i RBC på grund av det låga överflödet av proteiner i förhållande till hemoglobin, vilket står för ~ 98% av proteininnehållet i dessa celler12. Således har antikroppsbaserad färgning av kemiskt bevarade röda blodkroppar varit den valda metoden vid undersökning av akuta modifieringar av viktiga RBC-proteiner, såsom den RBC-specifika isoformen av kväveoxidsyntas (RBC-NOS)13,14. RBC-NOS har visat sig enzymatiskt producera kväveoxid (NO), vilket verkar oumbärligt för väsentliga RBC-egenskaper, inklusive RBC-deformerbarhet15,16,17. Posttranslationella modifieringar av RBC-NOS reglerar katalytisk enzymaktivitet, där fosforylering av serin 1177-återstoden beskrivs för att öka enzymaktiviteten, medan fosforylering av resterna serin 114 eller treonin 495 har kopplats till minskad RBC-NOS-aktivitet18,19.

Sammantaget bidrar tillfälliga modifieringar av RBC-proteiner till viktig cellulär funktion, och standardiserade protokoll som möjliggör detektion av dessa modifierade proteiner är av högt värde. Här presenterar vi två distinkta protokoll som utnyttjar specifika antikroppar för att underlätta detektion av RBC-NOS-proteinaktivering och diskuterar rekommendationer för dataanalys och tolkning.

Prestanda för de beskrivna protokollen bedömdes genom mätning av den välrapporterade ökningen av fosforyleringen av RBC-NOS vid serin 1177-återstoden som svar på mekaniska krafter som återspeglar de som förekommer i den humana vaskulaturen (5 Pa).

Protocol

Protokollen som beskrivs här är i linje med Helsingforsdeklarationen och godkändes av etikkommittéerna vid det tyska idrottsuniversitetet i Köln (9/16/2013) och Griffith University (2019/808). Volontärer screenades för att säkerställa frånvaron av relevanta patologier och gav skriftligt informerat samtycke. 1. Färgning av RBC-proteiner med hjälp av immunhistokemiska protokoll OBS: En detaljerad lista över nödvändiga kemikalier och mater…

Representative Results

Det presenterade protokollet, som beskriver metoder som underlättar detektion av akuta förändringar i RBC-proteiner, testades på en välkänd mekaniskt känslig proteinförändring: fosforylering av RBC-NOS vid serin 1177-resten. Helblod erhölls från friska frivilliga och delades därefter upp i två separata alikvoter. Ett givet blodprov utsattes för mekanisk skjuvspänning av fysiologisk storlek (5 Pa) i 300 s, vilket tidigare visat sig framkalla RBC-NOS-fosforylering vid serin 117714. Om…

Discussion

Ny litteratur tyder starkt på att RBC-NOS-proteinet är av avgörande betydelse för regleringen av RBC-deformerbarhet 15,22,23, vilket i sin tur underlättar deras passage genom smala kapillärer 24. Proteinaktiviteten beror i hög grad på posttranslationella proteinmodifieringar, särskilt fosforylering av vissa rester18. Fokus ligger på fosforyleringsstället 1177, som relat…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

LK erkänner stödet från ett stipendium från Australian Government Research Training Program.

Materials

3,3′-Diaminobenzidin -tetrahydrochloride Hydrate Sigma/Merck D5637 DAB
Ammoniumchloride  Merck /Millipore 101145 NH4Cl
Centrifuge 5427 R  Eppendorf 5409000010
Coverslips VWR 631-0147 
di-sodium Hydrogen Phosphate Dihydrate  Merck /Millipore 106580 Na2HPO4. 2 H2O
Disposable transfer pipettes VWR 612-6803
Entellan Merck /Millipore 107961 rapid mounting medium for microscopy
Ethanol denaturated using 1 % methyl ethyl ketone (MEK) Hofmann 642
Glucose-Oxidase Sigma/Merck G2133
Grease pencil  Dako S 2002
Horse-radish peroxidase/ExtrAvidin−Peroxidase Sigma/Merck E-2886 HRP
Hydrochloric acid  Merck /Millipore 109057 HCl
Hydrogen peroxide, 30% Merck /Millipore 107203 H2O2
ImageJ Software Freeware
Laser-assisted optical rotational cell analyser (LORCA) RR Mechatronics Ektacytometer instrument used for shearing
Methanol Merck /Millipore 106009
Microscope slides VWR 630-1985
Nickel(II)-sulfate Hexahydrate  Sigma/Merck N4882 NiSO4.6H2O
Normal Goat serum Agilent/DAKO X0907 NGS
Paraformaldehyde Merck /Millipore 818715 PFA
Pipettes Eppendorf Reference 2 VWR 613-5836/ 613-5839
Rabbit Anti-phospho eNOS Antibody (Ser1177) Merck/Millipore 07-428-I Primary Antibody
Reaction tubes, 2ml Eppendorf 30120094
Secondary Antibody goat anti rabbit Agilent/DAKO E0432 Secondary Antibody
Skim milk powder Bio-Rad 170-6404
Sodium chloride  Merck /Millipore 106404 NaCl
Sodium Dihydrogen Phosphate Monohydrate Merck /Millipore 106346 NaH2PO4.H2O
Sodium hydroxide, 1 M Merck /Millipore 150706 NaOH
Tris(hydroxymethyl)-aminomethane Merck /Millipore 108382 Tris
Trypsin Sigma/Merck T7409
Tween20  Merck /Millipore 822184
Whatman Glas microfiber filter, quality GF/F Merck /Millipore WHA1825047
Xylol VWR Chemicals 2,89,73,465
ß-D-Glucose monohydrate Merck /Millipore 14431-43-7

References

  1. Cohen, R. M., et al. Red cell life span heterogeneity in hematologically normal people is sufficient to alter HbA1c. Blood. 112 (10), 4284-4291 (2008).
  2. Mock, D. M., et al. Red blood cell (RBC) survival determined in humans using RBCs labeled at multiple biotin densities. Transfusion. 51 (5), 1047-1057 (2011).
  3. Thiagarajan, P., Parker, C. J., Prchal, J. T. How do red blood cells die?. Frontiers in Physiology. 12, 655393 (2021).
  4. Moras, M., Lefevre, S. D., Ostuni, M. A. From erythroblasts to mature red blood cells: organelle clearance in mammals. Frontiers in Physiology. 8, 1076 (2017).
  5. Pretini, V., et al. Red blood cells: chasing interactions. Frontiers in Physiology. 10, 945 (2019).
  6. Cahalan, S. M., et al. Piezo1 links mechanical forces to red blood cell volume. eLife. 4, e07370 (2015).
  7. Kuck, L., Peart, J. N., Simmonds, M. J. Piezo1 regulates shear-dependent nitric oxide production in human erythrocytes. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 323 (1), H24-H37 (2022).
  8. Kuck, L., Peart, J. N., Simmonds, M. J. Active modulation of human erythrocyte mechanics. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 319 (2), C250-C257 (2020).
  9. Strader, M. B., et al. Post-translational modification as a response to cellular stress induced by hemoglobin oxidation in sickle cell disease. Scientific Reports. 10 (1), 14218 (2020).
  10. Pecankova, K., Majek, P., Cermak, J., Dyr, J. E. Posttranslational modifications of red blood cell ghost proteins as "signatures" for distinguishing between low- and high-risk myelodysplastic syndrome patients. Turkish Journal of Haematology. 34 (1), 111-113 (2017).
  11. Grau, M., et al. High red blood cell nitric oxide synthase activation is not associated with improved vascular function and red blood cell deformability in sickle cell anaemia. British Journal of Haematology. 168 (5), 728-736 (2015).
  12. Sae-Lee, W., et al. The protein organization of a red blood cell. Cell Reports. 40 (3), 111103 (2022).
  13. Suhr, F., et al. Moderate exercise promotes human RBC-NOS activity, NO production and deformability through Akt kinase pathway. PLoS One. 7 (9), e45982 (2012).
  14. Kuck, L., Grau, M., Bloch, W., Simmonds, M. J. Shear stress ameliorates superoxide impairment to erythrocyte deformability with concurrent nitric oxide synthase activation. Frontiers in Physiology. 10, 36 (2019).
  15. Grau, M., et al. RBC-NOS-dependent S-nitrosylation of cytoskeletal proteins improves RBC deformability. PLoS One. 8 (2), e56759 (2013).
  16. Simmonds, M. J., Detterich, J. A., Connes, P. Nitric oxide, vasodilation and the red blood cell. Biorheology. 51 (2-3), 121-134 (2014).
  17. Bor-Kucukatay, M., Wenby, R. B., Meiselman, H. J., Baskurt, O. K. Effects of nitric oxide on red blood cell deformability. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 284 (5), H1577-H1584 (2003).
  18. Suhr, F., et al. Intensive exercise induces changes of endothelial nitric oxide synthase pattern in human erythrocytes. Nitric Oxide: Biology and Chemistry. 20 (2), 95-103 (2009).
  19. Grau, M., et al. Regulation of red blood cell deformability is independent of red blood cell-nitric oxide synthase under hypoxia. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 63 (3), 199-215 (2016).
  20. Grau, M., Kuck, L., Dietz, T., Bloch, W., Simmonds, M. J. Sub-fractions of red blood cells respond differently to shear exposure following superoxide treatment. Biologie. 10 (1), 47 (2021).
  21. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  22. Ozüyaman, B., Grau, M., Kelm, M., Merx, M. W., Kleinbongard, P. RBC NOS: regulatory mechanisms and therapeutic aspects. Trends in Molecular Medicine. 14 (7), 314-322 (2008).
  23. Kleinbongard, P., et al. Red blood cells express a functional endothelial nitric oxide synthase. Blood. 107 (7), 2943-2951 (2006).
  24. McMahon, T. J. Red blood cell deformability, vasoactive mediators, and adhesion. Frontiers in Physiology. 10, 1417 (2019).
  25. Bizjak, D. A., Brinkmann, C., Bloch, W., Grau, M. Increase in red blood cell-nitric oxide synthase dependent nitric oxide production during red blood cell aging in health and disease: a study on age dependent changes of rheologic and enzymatic properties in red blood cells. PLoS One. 10 (4), 0125206 (2015).
  26. Di Pietro, N., et al. Nitric oxide synthetic pathway and cGMP levels are altered in red blood cells from end-stage renal disease patients. Molecular and Cellular Biochemistry. 417 (1-2), 155-167 (2016).
  27. Grau, M., et al. Even patients with mild COVID-19 symptoms after SARS-CoV-2 infection show prolonged altered red blood cell morphology and rheological parameters. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 26 (10), 3022-3030 (2022).
  28. Mozar, A., et al. Red blood cell nitric oxide synthase modulates red blood cell deformability in sickle cell anemia. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 64 (1), 47-53 (2016).
  29. Ulker, P., Gunduz, F., Meiselman, H. J., Baskurt, O. K. Nitric oxide generated by red blood cells following exposure to shear stress dilates isolated small mesenteric arteries under hypoxic conditions. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 54 (4), 357-369 (2013).
  30. Nader, E., et al. Hydroxyurea therapy modulates sickle cell anemia red blood cell physiology: Impact on RBC deformability, oxidative stress, nitrite levels and nitric oxide synthase signalling pathway. Nitric Oxide: Biology and Chemistry. 81, 28-35 (2018).
  31. Fischer, U. M., Schindler, R., Brixius, K., Mehlhorn, U., Bloch, W. Extracorporeal circulation activates endothelial nitric oxide synthase in erythrocytes. The Annals of Thoracic Surgery. 84 (6), 2000-2003 (2007).
  32. Horobin, J. T., Sabapathy, S., Kuck, L., Simmonds, M. J. Shear stress and RBC-NOS Serine1177 Phosphorylation in humans: a dose response. Life. 11 (1), 36 (2021).
  33. Kuck, L., Grau, M., Simmonds, M. J. Recovery time course of erythrocyte deformability following exposure to shear is dependent upon conditioning shear stress. Biorheology. 54 (5-6), 141-152 (2018).
  34. Grau, M., et al. Effect of acute exercise on RBC deformability and RBC nitric oxide synthase signalling pathway in young sickle cell anaemia patients. Scientific Reports. 9 (1), 11813 (2019).
  35. Feelisch, M. . Methods in Nitric Oxide Research. , (1998).
  36. Cortese-Krott, M. M., et al. Human red blood cells at work: identification and visualization of erythrocytic eNOS activity in health and disease. Blood>. 120 (20), 4229-4237 (2012).
check_url/fr/64843?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Grau, M., Kuck, L. Immunostaining-Based Detection of Dynamic Alterations in Red Blood Cell Proteins. J. Vis. Exp. (193), e64843, doi:10.3791/64843 (2023).

View Video