Den foreslåtte protokollen inneholder retningslinjer for hvordan man kan unngå forurensning med endotoksin under isolering av ekstracellulære vesikler fra cellekultursupernatanter, og hvordan man skal evaluere dem riktig.
Ekstracellulære vesikler (EV) er en heterogen populasjon av membranvesikler frigjort av celler in vitro og in vivo. Deres allestedsnærvær og betydelige rolle som bærere av biologisk informasjon gjør dem til spennende studieobjekter, og krever pålitelige og repeterende protokoller for deres isolasjon. Det er imidlertid vanskelig å realisere sitt fulle potensiale, da det fortsatt er mange tekniske hindringer knyttet til deres forskning (som riktig oppkjøp). Denne studien presenterer en protokoll for isolering av små EV (i henhold til MISEV 2018-nomenklaturen) fra kultursupernatanten av tumorcellelinjer basert på differensialsentrifugering. Protokollen inneholder retningslinjer for hvordan man kan unngå forurensning med endotoksiner under isolering av elbiler og hvordan man skal evaluere dem riktig. Endotoksinforurensning av elbiler kan betydelig hindre påfølgende eksperimenter eller til og med maskere deres sanne biologiske effekter. På den annen side kan den oversette tilstedeværelsen av endotoksiner føre til feil konklusjoner. Dette er spesielt viktig når det refereres til celler i immunsystemet, inkludert monocytter, fordi monocytter utgjør en populasjon som er spesielt følsom for endotoksinrester. Derfor anbefales det sterkt å screene EV for endotoksinforurensning, spesielt når du arbeider med endotoksinfølsomme celler som monocytter, makrofager, myeloidederiverte suppressorceller eller dendrittiske celler.
Ekstracellulære vesikler (EV), ifølge MISEV 2018-nomenklaturen, er et samlebegrep som beskriver ulike subtyper av celleutskillede membranøse vesikler som spiller avgjørende roller i mange fysiologiske og patologiske prosesser 1,2. Videre viser EV løfte som nye biomarkører for ulike sykdommer, samt terapeutiske midler og legemiddelleveringsbiler. Det er imidlertid vanskelig å realisere sitt fulle potensiale, da det fortsatt er mange tekniske hindringer knyttet til oppkjøpet3. En slik utfordring er isoleringen av endotoksinfrie elbiler, som har blitt neglisjert i mange tilfeller. En av de vanligste endotoksinene er lipopolysakkarid (LPS), som er en viktig komponent i gramnegative bakterielle cellevegger og kan forårsake en akutt inflammatorisk respons på grunn av frigjøring av et stort antall inflammatoriske cytokiner av forskjellige celler 4,5. LPS induserer en respons ved binding til LPS-bindende protein, etterfulgt av interaksjon med CD14/TLR4/MD2-komplekset på myeloide celler. Denne interaksjonen fører til aktivering av MyD88- og TRIF-avhengige signalveier, som igjen utløser nukleærfaktoren kappa B (NFkB). Translokasjon av NFkB til kjernen initierer produksjonen av cytokiner6. Monocytter og makrofager er svært følsomme for LPS, og deres eksponering for LPS resulterer i frigjøring av inflammatoriske cytokiner og kjemokiner (f.eks. IL-6, IL-12, CXCL8 og TNF-α) 7,8. CD14-strukturen muliggjør binding av forskjellige LPS-arter med lignende affinitet og fungerer som en co-reseptor for andre toll-lignende reseptorer (TLR) (TLR1, 2, 3, 4, 6, 7 og 9) 6. Antall studier som utføres på effekten av elbiler på monocytter/makrofager øker fortsattmed 9,10,11. Spesielt fra perspektivet om å studere funksjonene til monocytter, deres underpopulasjoner og andre immunceller, er tilstedeværelsen av endotoksin og til og med deres maskerte tilstedeværelse i EV av stor betydning12. Den oversette forurensningen av elbiler med endotoksiner kan føre til misvisende konklusjoner og skjule deres sanne biologiske aktivitet. Med andre ord, arbeid med monocytiske celler krever tillit i fravær av endotoksinforurensning13. Potensielle kilder til endotoksiner kan være vann, kommersielt oppnådde medier og sera, mediekomponenter og tilsetningsstoffer, laboratorieglass og plastvarer 5,14,15.
Derfor hadde denne studien som mål å utvikle en protokoll for isolering av lavendotoksinholdige EVer. Protokollen gir enkle tips om hvordan man kan unngå endotoksinsmitte under isolasjon av elbiler i stedet for å fjerne endotoksiner fra elbiler. Tidligere har mange protokoller blitt presentert for hvordan man fjerner endotoksiner fra for eksempel konstruerte nanopartikler som brukes i nanomedisin; Ingen av dem er imidlertid nyttige for biologiske strukturer som elbiler. Den effektive depyrogeneringen av nanopartikler kan utføres ved etanol eller eddiksyre skylling, oppvarming ved 175 ° C i 3 timer, γ bestråling eller triton X-100 behandling; Disse prosedyrene fører imidlertid til ødeleggelse av elbiler16,17.
Den presenterte protokollen er en banebrytende studie fokusert på å unngå endotoksin urenheter i EV, i motsetning til tidligere studier på effekten av EV på monocytter9. Bruk av foreslåtte prinsipper i laboratoriepraksis kan bidra til å oppnå pålitelige forskningsresultater, noe som kan være avgjørende når man vurderer potensiell bruk av elbiler som terapeutiske midler i klinikken12.
I løpet av de siste årene har metoder for riktig isolering av elbiler blitt stadig viktigere, noe som muliggjør ytterligere pålitelige analyser, for eksempel i sammenheng med å skaffe pålitelig omikk og funksjonelle data24. Basert på tidligere forskningserfaring ser det ut til at ikke bare typen isolasjonsmetode, men også andre forhold under denne prosedyren kan være viktige. Bruken av EV-utarmet FBS er allment anerkjent som en nødvendighet25,26<sup cla…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av National Science Centre, Polen, stipendnummer 2019/33/B/NZ5/00647. Vi vil gjerne takke professor Tomasz Gosiewski og Agnieszka Krawczyk fra Institutt for molekylær medisinsk mikrobiologi, Jagiellonian University Medical College for deres uvurderlige hjelp i påvisning av bakterielt DNA i elbiler.
Alix (3A9) Mouse mAb | Cell Signaling Technology | 2171 | |
1250ul Filter Universal Pipette Tips, Clear, Polypropylene, Non-Pyrogenic | GoogLab Scientific | GBFT1250-R-NS | |
BD FACSCanto II Flow Cytometr | BD Biosciences | ||
CBA Human Th1/Th2 Cytokine Kit II | BD Biosciences | 551809 | |
CD9 (D8O1A) Rabbit mAb | Cell Signaling Technology | 13174 | |
ChemiDoc Imaging System | Bio-Rad Laboratories, Inc. | 17001401 | |
DMEM (Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium) | Corning | 10-013-CV | |
ELX800NB, Universal Microplate Reader | BIO-TEK INSTRUMENTS, INC | ||
Fetal Bovine Serum | Gibco | 16000044 | |
Fetal Bovine Serum South America Ultra Low Endotoxin | Biowest | S1860-500 | |
Gentamicin, 50 mg/mL | PAN – Biotech | P06-13100 | |
Goat anti-Mouse IgG- HRP | Santa Cruz Biotechnology | sc-2004 | |
Goat anti-Rabbit IgG- HRP | Santa Cruz Biotechnology | sc-2005 | |
Immun-Blot PVDF Membrane | Bio-Rad Laboratories, Inc. | 1620177 | |
LPS from Salmonella abortus equi S-form (TLRGRADE) | Enzo Life Sciences, Inc. | ALX-581-009-L002 | |
Mini Trans-Blot Electrophoretic Transfer Cell | Bio-Rad Laboratories, Inc. | 1703930 | |
Nanoparticle Tracking Analysis | Malvern Instruments Ltd | ||
NuPAGE LDS Sample Buffer (4X) | Invitrogen | NP0007 | |
NuPAGE Sample Reducing Agent (10x) | Invitrogen | NP0004 | |
Parafilm | Sigma Aldrich | P7793 | transparent film |
Perfect 100-1000 bp DNA Ladder | EURx | E3141-01 | |
PierceTM Chromogenic Endotoxin Quant Kit | Thermo Scientific | A39552 | |
PP Oak Ridge Tube with sealing caps | Thermo Scientific | 3929, 03613 | |
RPMI 1640 | RPMI-1640 (Gibco) | 11875093 | |
SimpliAmp Thermal Cycler | Applied Biosystem | A24811 | |
Sorvall wX+ ULTRA SERIES Centrifuge with T-1270 rotor | Thermo Scientific | 75000100 | |
Sub-Cell GT Horizontal Electrophoresis System | Bio-Rad Laboratories, Inc. | 1704401 | |
SuperSignal West Pico PLUS Chemiluminescent Substrate | Thermo Scientific | 34577 | |
SW480 cell line | American Type Culture Collection(ATCC) | ||
SW480 cell line | American Type Culture Collection (ATCC) | ||
Syringe filter 0.22 um | TPP | 99722 | |
Trans-Blot SD Semi-Dry Transfer Cell | Bio-Rad Laboratories, Inc. | 1703940 | Transfer machine |
Transfer pipette, 3.5 mL | SARSTEDT | 86.1171.001 |