Summary

Ikke-invasiv intratrakeal lipopolysakkarid instillasjon hos mus

Published: March 31, 2023
doi:

Summary

Her foreslår vi en protokoll for intratrakeal lipopolysakkarid (LPS) levering via ikke-invasiv orofaryngeal endotrakeal intubasjon. Denne metoden minimerer traumer av den kirurgiske prosedyren for dyret og leverer nøyaktig LPS til luftrøret og deretter til lungene.

Abstract

Den akutte lungeskade (ALI) musemodellen indusert av lipopolysakkarid (LPS) eller endotoksin er fortsatt blant de mest brukte modellene i dyrestudier av akutt lungeskade eller akutt betennelse. De mest brukte metodene i musemodeller for akutt lungeskade er intraperitoneal injeksjon av LPS og trakeostomi for trakealinfusjon av LPS. Den førstnevnte metoden mangler imidlertid lungemålretting og skader andre organer, og sistnevnte metode induserer operativt traume, infeksjonsrisiko og lav overlevelse. Her anbefaler vi en ikke-invasiv orofaryngeal endotrakeal intubasjonsmetode for LPS-instillasjon hos mus. I denne metoden blir LPS ikke-invasivt introdusert i luftrøret gjennom orofaryngealhulen som skal innsettes i lungen ved hjelp av et apparat for endotrakeal intubasjon. Denne metoden sikrer ikke bare lungemålretting, men unngår også skade og risiko for død hos dyrene. Vi forventer at denne tilnærmingen vil bli mye brukt innen akutt lungeskade.

Introduction

Akutt lungeskade (ALI) er et vanlig klinisk syndrom. Under en rekke patogene faktorer fører forstyrrelsen av den fysiologiske barrieren til lungeepitelceller og vaskulære endotelceller til økt alveolær permeabilitet, og derved forårsaker nedsatt lungeoverensstemmelse, lungeødem og alvorlig hypoksemi1. Akutt lungesviktsyndrom (ARDS) er den mest alvorlige formen for ALI. Ukontrollert betennelse og oksidativ stressskade anses å være hovedårsakene til ALI og den mer alvorlige ARDS2. Når alveolære epitelceller blir direkte skadet på grunn av traumer, aktiveres den inflammatoriske responskjeden av alveolære makrofager, noe som fører til betennelse i lungen3. Globalt er det mer enn 3 millioner pasienter med akutt ARDS per år, og de står for omtrent 10% av intensivinnleggelsene; I tillegg er dødeligheten i alvorlige tilfeller så høy som 46%4,5,6. Derfor er det behov for å etablere en egnet dyremodell av ALI for å studere patogenesen. Musen er det mest brukte eksperimentelle dyret i studien av ALI, siden luftveiene kan simulere menneskets luftveier godt for ALI-studier. Videre manifesterer ALI seg som massiv inflammatorisk celleinfiltrasjon, økt pulmonal vaskulær permeabilitet og lungeødem. Endringene i inflammatoriske cytokiner i serum og forholdet mellom tørr og våt vekt i lungene gjenspeiler graden av ALI7.

For tiden inkluderer de viktigste metodene for modellering av LPS-indusert ALI hos mus intranasal og kirurgisk trakeal intubasjon 8,9. Her foreslår vi en ny metode for å levere LPS inn i luftrøret via ikke-invasiv orofaryngeal intubasjon. Denne metoden bruker en opplyst intubator for å finne luftrøret til musen og leverer deretter LPS inn i luftrøret og lungen. Denne metoden leverer LPS til lungene mer nøyaktig enn den intranasale leveringsmetoden. Sammenlignet med kirurgisk trakeal intubasjon, krever denne metoden ikke kirurgi, unngår å forårsake sår og reduserer smerte hos mus10. Derfor kan denne metoden brukes til å etablere en mer overbevisende musemodell av ALI.

Protocol

Dyreforsøksprotokollen ble gjennomgått og godkjent av styringskomiteen ved Chengdu University of Traditional Chinese Medicine (Record No. 2021-11). Mannlige C57/BL-mus (20-25 g, 6-8 uker gamle) ble brukt i denne studien. Musene ble holdt i et dyrekammer og var fri til å drikke og spise under forsøket. 1. Forberedelse Forsikre deg om at intubasjonsplattformen består av en base, en stigerør, en binders, to gummibånd og noen strenger. Ta en streng, før strengen …

Representative Results

Den foreslåtte metoden for LPS-instillasjon hos mus ble verifisert ved å evaluere ekspresjonen av det inflammatoriske cytokinet TNF-α og lungetørr-våtvektforholdet 12 timer etter LPS-instillasjon. Det var fire grupper i forsøket: blank kontroll (uten behandling), kirurgisk intubasjon16, intranasal17,18 og ikke-invasiv orofaryngeal intubasjon (n = 6). Sammenliknet med den tomme kontrollgruppen var TNF-…

Discussion

Først så vi inn i munnhulen for å finne plasseringen av luftrøret19. Under denne prosessen oppdaget vi imidlertid at luftrøret til C57/BL-mus er smalt, noe som gjør det vanskelig å finne riktig plassering ved denne metoden uten hjelp av utstyr som endoskop20. Ved nærmere undersøkelser fant vi ut at lyset fra intubatorlampen kunne trenge gjennom overflaten av kroppen, slik at operatøren kunne bestemme posisjonen til kanylen21.

<p class="…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av National Natural Science Foundation of China (nr.: 81903902), China Postdoctoral Science Foundation (nr.: 2019M663457), Sichuan Science and Technology Program (nr.: 2020YJ0172), og Xinglin Scholar Research Premotion Project ved Chengdu University of TCM (nr.: QJRC2022053).

Materials

Lipopolysaccharide MERK L4130 LPS
Microliter Syringes SHANGHAI GAOGE INDUSTRY AND TRADE CO., LTD 10028505008124 To deliver LPS
Mouse cannula RWD Life Science 803-03008-00 Mouse cannula
Mouse intubation kit RWD Life Science 903-03027-00 Including a base, a riser, a intubator, a surgical forceps and some strings
Pasteur pipette Biosharp life science BS-XG-03 To verify the success of intubation
Pentobarbital sodium Beijing Chemical Co., China 20220918 To anesthetize mice

References

  1. Xia, Y., et al. Protective effect of human amnion epithelial cells through endotracheal instillation against lipopolysaccharide-induced acute lung injury in mice. Xi Bao Yu Fen Zi Mian Yi Xue Za Zhi. 33 (1), 7-11 (2017).
  2. Butt, Y., Kurdowska, A., Allen, T. C. Acute lung injury: A clinical and molecular review. Archives of Pathology and Lab Medicine. 140 (4), 345-350 (2016).
  3. Ware, L. B., Matthay, M. A. The acute respiratory distress syndrome. The New England Journal of Medicine. 342 (18), 1334-1349 (2000).
  4. Fan, E., Brodie, D., Slutsky, A. S. Acute respiratory distress syndrome: Advances in diagnosis and treatment. JAMA. 319 (7), 698-710 (2018).
  5. Meyer, N. J., Gattinoni, L., Calfee, C. S. Acute respiratory distress syndrome. Lancet. 398 (10300), 622-637 (2021).
  6. An, N., Yang, T., Zhang, X. X., Xu, M. X. Bergamottin alleviates LPS-induced acute lung injury by inducing SIRT1 and suppressing NF-κB. Innate Immunity. 27 (7-8), 543-552 (2021).
  7. Liu, L., et al. Comparative study of trans-oral and trans-tracheal intratracheal instillations in a murine model of acute lung injury. The Anatomical Record. 295 (9), 1513-1519 (2012).
  8. Virag, J. A., Lust, R. M. Coronary artery ligation and intramyocardial injection in a murine model of infarction. Journal of Visualized Experiments. (52), e2581 (2011).
  9. Li, J., et al. Panaxydol attenuates ferroptosis against LPS-induced acute lung injury in mice by Keap1-Nrf2/HO-1 pathway. Journal of Translational Medicine. 19 (1), 96 (2021).
  10. Zhou, Y., et al. Soluble epoxide hydrolase inhibitor attenuates lipopolysaccharide-induced acute lung injury and improves survival in mice. Shock. 47 (5), 638-645 (2017).
  11. Nosaka, N., et al. Optimal tube length of orotracheal intubation for mice. Laboratory Animals. 53 (1), 79-83 (2019).
  12. Cicero, L., Fazzotta, S., Palumbo, V. D., Cassata, G., Lo Monte, A. I. Anaesthesia protocols in laboratory animals used for scientific purposes. Acta Bio-Medica: Atenei Parmensis. 89 (3), 337-342 (2018).
  13. Ehrentraut, H., Weisheit, C. K., Frede, S., Hilbert, T. Inducing acute lung injury in mice by direct intratracheal lipopolysaccharide instillation. Journal of Visualized Experiments. (149), e59999 (2019).
  14. Yang, H., et al. STAT6 inhibits ferroptosis and alleviates acute lung injury by regulating P53/SLC7A11 pathway. Cell Death & Disease. 13 (6), 530 (2022).
  15. Aramaki, O., et al. Induction of operational tolerance and generation of regulatory cells after intratracheal delivery of alloantigen combined with nondepleting anti-CD4 monoclonal antibody. Transplantation. 76 (9), 1305-1314 (2003).
  16. Lan, W. Activation of mammalian target of rapamycin (mTOR) in a murine model of lipopolysaccharide (LPS) -induced acute lung injury (ALI). Peking Union Medical College. , (2010).
  17. Lv, H., et al. Tenuigenin ameliorates acute lung injury by inhibiting NF-κB and MAPK signalling pathways. Respiratory Physiology & Neurobiology. 216, 43-51 (2015).
  18. Yang, H., Lv, H., Li, H., Ci, X., Peng, L. Oridonin protects LPS-induced acute lung injury by modulating Nrf2-mediated oxidative stress and Nrf2-independent NLRP3 and NF-κB pathways. Cell Communication and Signaling. 17 (1), 62 (2019).
  19. Im, G. H., et al. Improvement of orthotopic lung cancer mouse model via thoracotomy and orotracheal intubation enabling in vivo imaging studies. Laboratory Animals. 48 (2), 124-131 (2014).
  20. Hamacher, J., et al. Microscopic wire guide-based orotracheal mouse intubation: description, evaluation and comparison with transillumination. Laboratory Animals. 42 (2), 222-230 (2008).
  21. Nelson, A. M., Nolan, K. E., Davis, I. C. Repeated orotracheal intubation in mice. Journal of Visualized Experiments. (157), e60844 (2020).
  22. Zhang, S., et al. Microvesicles packaging IL-1β and TNF-α enhance lung inflammatory response to mechanical ventilation in part by induction of cofilin signaling. International Immunopharmacology. 63, 74-83 (2018).
  23. Feng, Z. Comparative study of different intratracheal instillation in acute lung injury model of mice. Jilin University. , (2010).
  24. Chen, J. H., et al. Comparison of acute lung injury mice model established by intranasal and intratracheal instillation of lipopolysaccharide. Pharmacology and Clinics of Chinese Materia Medica. 38 (02), 222-227 (2022).
  25. Luckow, B., Lehmann, M. H. A simplified method for bronchoalveolar lavage in mice by orotracheal intubation avoiding tracheotomy. BioTechniques. 71 (4), 534-537 (2021).
  26. Cai, Y., Kimura, S. Noninvasive intratracheal intubation to study the pathology and physiology of mouse lung. Journal of Visualized Experiments. (81), e50601 (2013).

Play Video

Citer Cet Article
Yu, P., Lin, B., Li, J., Luo, Y., Zhang, D., Sun, J., Meng, X., Hu, Y., Xiang, L. Noninvasive Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation in Mice. J. Vis. Exp. (193), e65151, doi:10.3791/65151 (2023).

View Video